Развиваем сельское хозяйство вместе С заботой о вашем хозяйстве
Товары, услуги и экспертная поддержка — в одном кабинетеУсловия и документы
← База знаний / Синхронизация

Использование простагландинов для направленной регуляции и коррекции нарушений функции размножения крупного рогатого скота

В. А. Анзоров, С. В. Морякина · 2016 · Россия · Россия

Текст исходного файла на русском языке. Историческое издание: сведения приведены по источнику 2016 года.

Войти и скачать PDF ↓

Продолжение · 6

Ginther O.J., [205] установил, что после удаления матки (эктомии) вместе с шейкой у коров происходила персистенция желтого тела, но если были оставлены шейка и часть тела матки или часть одного из рогов, то циклирование не прекращалось, хотя наблюдались нарушения регулярности циклов.

В 1966 году J.С. Babcock [146] было установлено, что концентрация простагландина F2α увеличивается в матке к концу полового цикла и вызывает лютеолиз желтого тела.

Это впоследствии было подтверждено многими исследователями.

Исследования L.R. Wilson [et al.], [270] показали, что простагландины появляются в крови маточных вен в период регрессии желтого тела.

Значительное увеличение концентрации простагландина F2α на 14-й день цикла по сравнению с другими днями подтверждает ключевое значение матки в регрессии желтого тела.

По данным W. Hansel [219], раздражение матки вызывает сокращение или удлинение полового цикла в зависимости от стадии цикла в момент нанесения раздражения.

Pharris B.B. [301] установил, что лютеолитическим действием обладают простагландины типа F2α.

Эти вещества секретируются тканями матки и через кровеносную систему яичников могут оказывать влияние на кровоснабжение желтых тел, что подтверждается инъекциями простагландина F2α крысам и кроликам, которые значительно уменьшали кровоснабжение матки и яичников.

Такие же инъекции беременным овцематкам снижают лютеальную функцию яичников и плаценты, вызывая аборт.

Позднее эти сведения подтвердили многие авторы [92; 343].

По-видимому, действие простагландинов обусловлено в основном воздействием на гладкие мышцы сосудов. Так, В.В. Ряженов, Т.А. Бабкина, Н.И. Романова [92] вводили ПГ F2α в вену крыс в дозе 2 мкг/кг, при этом наблюдалось снижение артериального давления на 10,2%, в дозе 5 мкг/кг – на 19,8%.

При этом, снижение давления наступало сразу после введения ПГ F2α и продолжалось 40 – 50 секунд. В дозе 10 мкг/кг ПГ F2α вызывал двухфазный эффект – сначала снижал артериальное давление на 20,6%, а затем повышал на 12,1%.

В исследованиях W.H. Tam, W.K. Beveridge, E.S.F. Tso [355], на морских свинках установлено, что в фолликулах присутствуют рецепторы ПГ F2α, которые участвуют в развитии фолликулов яичника.

Кроме того, простагландины участвуют в транспорте яйцеклетки в яйцеводе [366].

На положительную роль простагландинов в механизме оплодотворения указывают также S. Rustichelli, A. Chiappa, M. Mariatti [325].

Доказано участие простагландинов в стероидогенезе и передаче действия гормонов на клеточном уровне, сообшают А.М. Чомаев, Ю.Д. Клинский, Ч.Б. Колодиев [127].

Вызывая регрессию желтого тела и снижая концентрацию прогестерона в крови, ПГ F2α разблокирует гипоталамо-гипофизарную систему и, тем самым, способствует увеличению концентрации гонадотропных гормонов в крови [150].

Простагландин F2α из-за способности рассасывать желтые тела яичников нашел широкое использование во многих схемах синхронизации охоты и индукции овариальной функции коров.

Однако, применение только простагландинов нецелесообразно, так, как они воздействуют только на животных, имеющих желтые тела и оплодотворяемость при этом, не превышает 50% [275; 126; 266; 347].

3.5. Простагландины

Особое место в регуляции половых функций занимают простагландины (ПГ).

Простагландины не вполне соответствуют классическим определениям гормонов, к которым их часто относят [12; 136] и не имеют специального органа – продуцента, но они тесно входят в систему эндокринных регуляций и их причисляют к гормоноидам, гормоноподобным веществам.

Влияние простагландинов на организм разностороннее, они воздействуют не нервную, пищеварительную, дыхательную, сердечнососудистую, выделительную, эндокринную и репродуктивную системы.

ПГ модулируют активность многих биологически активных веществ, практически ни одно из физиологических явлений не осуществляется без ПГ [12; 226; 359].

Простагландины были обнаружены в 1930-х годах в семенной жидкости [263] и в простате человека и барана [193], было установлено, что они вызывают сокращение гладкой мускулатуры матки, понижают кровяное давление.

Elliasson R. [190] показал, что ПГ синтезируются в пузырьковых железах, но позднее они были обнаружены во многих тканях животных.

Так, ПГЕ и ПГF обнаружены почти во всех исследованных тканях [136; 314, 228].

Наиболее высоко содержание и разнообразие простагландинов в органах и тканях репродуктивной системы.

В отличие от гормонов, образование простагландинов не имеет строгой локализации.

Они синтезируются в микросомах клеток в матке, яичниках, почках, легких, кишечнике и других органах и тканях.

Предшественниками простагландинов в биосинтезе являются полиненасыщенные жирные кислоты: арахидиновая, декосатетраэнолатовая, декосапептаэнолатовая.

Простагландины содержат 20 атомов углерода.

Bergstrom S. [154] впервые получил очищенные препараты ПГЕ и ПГF1, в 1960 г. была определена их химическая структура, а в 1966 г. осуществлен химический синтез [308].

Из тканей животных выделено более 14 соединений, относящихся к простагландинам.

Их объединяют в 6 классов [162] и согласно Международной номенклатуре обозначают буквами А, В, С, Д, Е и F в зависимости от различий в структуре циклопентанового ядра.

Наиболее распространены ПГ классов А, В, Е и F. Число двойных связей в боковых цепях обозначают цифрами 1,2 или 3.

По конфигурации 9-ой гидроксильной группы выделяют подгруппы альфа и бета.

Физиологическое действие простагландинов определяется их высокой активностью, структурными различиями и большой распространенностью в организме.

Считают, что простагландины влияют на ткани и клетки непосредственно.

Важную роль играют простагландины в функциях эндокрин-ных желез, что подтверждается их наличием в щитовидной желе-зе, тимусе, надпочечниках, половых железах и других железах.

Простагландины стимулируют синтез соматотропина, про-лактина, прогестерона, оцитоцина, тироксина, кортикостероидов, уменьшают инкрецию лютропина и адреналина.

Простагландины участвуют в передаче нервных импульсов, оказывают влияние на деятельность сердца и тонус кровеносных сосудов.

Они стимулируют сокращения миокарда, суживают сосуды и влияют на кровяное давление.

Простагландины участвуют в регуляции обмена воды и электролитов. Они тесно взаимодействуют с гормонами в регуляции роста и дифференцировки тканей.

У самцов простагландины увеличивают объем эякулята и концентрацию в нем спермиев. В половых путях самок они улучшают подвижность спермиев.

Действие различных простагландинов может быть диаметрально противоположным, так ПГF2α стимулирует, а ПГЕ угнетает сократительную способность маточных труб [282].

Простагландины неустойчивы, быстро распадаются, они активны в ничтожных количествах.

За сутки в организме образуется около 1 мг ПГ. Действие ПГ осуществляется на уровне клетки через цАМФ, с одновременным высвобождением из клеточной мембраны Са++ и поступлением в клетку ионов натрия.

Для животноводства важность изучения и использования простагландинов связана с их влиянием на половые функции [311; 178; 325].

Есть данные, что простагландины участвуют в развитии фолликулов, овуляции, в оплодотворении [103; 48].

Tam W.H. с соавторами [350] обнаружили в фолликулах у морских свинок рецепторы к ПГF2α.

У коров и овец клопростенол (синтезированный аналог ПГF2α) стимулирует развитие только крупных фолликулов, причем в более выраженной форме на том яичнике, где произошла овуляция [327; 373; 200].

В исследованиях Y. Kobaydshi [еt аl.], [230] перфузия яичников крольчих с добавлением ПГF2α способствовала овуляции, но не влияла на созревание яйцеклеток.

Особое внимание исследователей привлекла способность ПГ вызывать рассасывание желтого тела.

Регрессия желтого тела наступает в результате сокращения кровеносных сосудов, обеспечивающих питание яичников [364] и нарушения работы ферментных систем, обеспечивающих синтез прогестерона.

Снижение уровня прогестерона приводит к выбросу лютеинизирующего гормона из гипофиза, что вызывает наступление охоты и овуляции [330; 285; 313].

Прежде чем подробно остановиться на роли простагландинов в животноводстве рассмотрим закономерности фолликуло - и овогенетических процессов в яичниках коров и телок.

ГЛАВА IV. ЗАКОНОМЕРНОСТИ ФОЛЛИКУЛО - И ОВОГЕНЕТИЧЕСКИХ ПРОЦЕССОВ В ЯИЧНИКАХ

ГЛАВА IV. ЗАКОНОМЕРНОСТИ ФОЛЛИКУЛО - И ОВОГЕНЕТИЧЕСКИХ ПРОЦЕССОВ В ЯИЧНИКАХ

КОРОВ И ТЕЛОК

Главным условием успешного применения в производственных условиях методов контроля репродуктивной активности является правильное понимание процессов фолликуло - и овогенеза и их эндокринной регуляции.

Без правильного понимания этих процессов не представляется возможным дальнейшее совершенствование всей биотехнологии воспроизводства [86; 91].

В процессах фолликулогенеза, развития и созревания яйцеклеток выделяют три периода.

Первый период характеризуют ростом фолликулов от стадии примординальных до стадии предполостных, в которых происходит увеличение размеров ооцитов.

Второй – ростом фолликулов от стадии крупных преантральных до стадии предовуляторных, в которых ооцит достигает дефинитивных размеров.

Третий – овуляцией фолликула, выходом зрелой яйцеклетки и формированием желтого тела цикла, а в случае оплодотворения – желтого тела беременности [46; 85; 86].

В процессе роста фолликулы популяции постоянно изменяют чувствительность к гонадотропным гормонам.

Степень чувствительности каждого фолликула определяется вариациями концентраций гонадотропных рецепторов в клетках их гранулезы.

В свою очередь, концентрация прогестерона, 17-β-эстрадиола и тестостерона в фолликулярной жидкости антральных фолликулов зависит от их размеров, приходящихся на каждый конкретный период полового цикла.

Фолликуло - овогенетические и эндокринные процессы в яичниках на протяжении половой зрелости самок претерпевают изменения и находят проявление в половом цикле.

Начало полового цикла соответствует дню охоты, обозначаемому нулевым днем цикла. На протяжении цикла яичник имеет последовательный функциональный ритм: волнообразное развитие и рост популяции антральных фолликулов – созревание доминирующего фолликула последней волны роста популяции – овуляция – образование и развитие желтого тела [130; 91].

Центральным явлением периодичности этих функциональных процессов является овуляция, которая разделяет фолликулярную и прогестативную фазы функциональных и морфологических изменений.

В соответствие в эндометрии функционально и морфологически чередуются пролиферативная и секреторная фазы.

При учете поведения самок, как реакции на комплекс внутриовариальных процессов, овуляция происходит в середине эструса, которому предшествует окончание проэструса.

После завершения овуляторного процесса и окончания эструса следует начало метэструса.

Рост популяции антральных фолликулов на протяжении полового цикла происходит волнообразно.

Возможны либо две, либо три волны роста, каждая из которых сопровождается развитием доминантного фолликула.

У коров с двухволновым ростом популяции продолжительность полового цикла равна в среднем 20 дням.

Созревание фолликулов первой волны начинается в день 0 (день овуляции), второй – на 10-й день цикла.

Первые клинически выраженные признаки регрессии желтого тела наблюдают на 15 день цикла, в то время как продолжительность регрессии равна 16,5 дней.

У коров с трехволновым ростом популяции продолжительность полового цикла равна в среднем 23 дня, созревание фолликулов первой волны начинается на 0,5 день, второй и третьей – на 9-й и 16-й дни цикла, соответственно.

У коров при трехволновом росте популяции первые признаки регрессии желтого тела можно наблюдать на 18 – 20 день, а в целом процесс регрессии продолжается 19,2 дня.

Считают, что возникновение третьей волны роста и созревания фолликулов связано с увеличенной продолжительностью лютеальной фазы, причем параллельно лютеолизису доминантный фолликул трансформируется в овуляторный фолликул [210; 86].

Фолликулярный рост последней волны, завершающейся овуляцией фолликула, отмечается на поздней лютеальной фазе цикла. Доминантные фолликулы предшествующих волн на соответствующих стадиях роста подвергаются регрессии и атрезии [133].

Растущие под комбинированным воздействием ФСГ и ЛГ фолликулы начинают выделять эстрогены, уровень которых достигает максимума незадолго до овуляции, непосредственно стимулируемой пиковой концентрацией ЛГ.

Временные и количественные параметры пика ЛГ являются главным явлением регуляции нормо-функциональной деятельности яичника, т.к. в случае их отклонения от нормы происходит нарушение овуляторного процесса в виде преждевременной или поздней овуляции либо ее отсутствием с последующим перерождением неовулировавшего фолликула.

При преждевременной или поздней овуляции происходит выход либо незрелой, либо персистентной яйцеклетки, что исключает возможность оплодотворяемости и развития зиготы [120; 29].

Кратко изложенные сведения о механизме развития и временных параметрах полового цикла и его отдельных стадий имеют исключительное значение для технологий его направленной регуляции.

Это обусловлено тем, что целесообразная эффективность воздействий гормональными препаратами возможна только на определенных стадиях цикла.

Данные о продолжительности полового цикла коров весьма противоречивы.

Исследования показывают, что половой цикл у коров и телок длится в пределах 14 – 28 дней, 12 – 28 дней, 16 – 26 дней [63].

По данным ряда зарубежных специалистов, диапазон колебаний длительности полового цикла составляет 16 – 28 дней.

Чэпмен и Косида установили, что он длится у 5% коров 16 и менее дней, у 60% – 17 – 28 и у 35% – 29 и более дней; Шмидт утверждает, что у 7,6% он продолжается 27 дней и менее, у 26% – 8 – 24 дня, и у остальных большие сроки; по Елленбергу и Лохману, у 30% коров половой цикл был короче или длиннее диапазона 17 – 25 дней [63; 130; 157; 39].

Кроме того, для конкретного животного продолжительность цикла – величина непостоянная и может широко варьировать. Минимальная вариабельность характерна для возраста коровы между 3 – 5 лактациями в период оптимума воспроизводительного статуса, когда воспроизводительная функция наиболее «точно отрегулирована».

Увеличение степени вариабельности наиболее выражено у молодых и старых животных [70].

Данные о сроках наступления пубертата и точно «отрегулированного» чередования половых циклов у телок также противоречивы.

При этом определенное значение имеет порода животных.

У европейских пород скота в возрасте 18 – 20 и более мес. до 30 – 40% телок могут оставаться неполовозрелыми, хотя у части телок половые циклы с правильным чередованием устанавливаются с 9 – 10 месячного возраста [300].

Тем не менее, принято считать, что средний возраст наступления пубертата у телок равен 300 дням при достижении живой массы 300 кг. В этих случаях фолликулярную активность регистрируют за 20 -40 дней до начала первой овуляции, причем разницы между длительностью первого и второго цикла не наблюдают [292].

Формирование половой функции у телок подразделяют на три стадии: 1) первичное появление половых рефлексов; 2) формирование полового цикла; 3) наступление половой зрелости. Проявление первых половых рефлексов опережает наступление таких феноменов, как течка и овуляция [51].

Независимо от породы механизм полового созревания у телок сводится к следующему: в период, предшествующий половому созреванию, активизируется образование гонадотропинов гипофизом, что приводит к росту фолликулов и продукции ими эстрогенов, которые накапливаются в крови и в соответствие принципу «плюс-минус» взаимодействия тормозят продукцию гонадотропинов, что блокирует продолжение роста фолликулов.

Для этой стадии характерна систематическая персистенция фолликулов.

У телок перед половым созреванием в течение 1 – 2-х месяцев обнаруживают в яичниках тонкостенные персистирующие фолликулы, вследствие чего желтых тел в таких яичниках не обнаруживают.

С возрастом инкреция эстрогенов нормализуется.

Становится адекватной гипоталамо-гипофизарная реакция на эстрогены, что приводит к оптимальной динамике секреции гонадотропинов с преовуляторным пиком ЛГ, предполагающим нормальную овуляцию [52].

Данные относительно вариабельности продолжительности фолликулярной и лютеальной фаз, как у коров, так и телок, указывают на более стабильный характер последней.

Стабильность продолжительности лютеальной фазы связывают с ее важнейшей ролью в подготовке организма к предстоящей стельности.

Однако на механизм регуляции стабильной продолжительности лютеальной фазы, которым можно было бы полностью объяснить эволюцию желтого тела, единой точки зрения нет.

Регуляция внутриовариальных процессов в значительной степени автономна, и, тем не менее, нормальная функциональная деятельность яичника невозможна без определенного влияния гонадотропных гормонов из-за необходимой степени гипофизарной поддержки функционирования желтого тела.

Общепризнанно, что для реализации лютеотропной функции необходимо обязательное присутствие ЛГ, тогда как неясно, может ли, так называемый, чистый ЛГ играть лютеотропную роль. Установлено, что в эксперименте для этой функции необходимо его постоянное введение в составе с пролонгатором (адъювант Фрейда) [68].

Цикличность функции яичника регулируется выделением гонадотропинов из гипофиза, деятельность которого осуществляется высшими нервными стимулами в рамках системы положительной обратной связи с гипоталамусом.

Основную роль здесь играет реакция гипофиза на гонадолиберин через посредство соотношения концентраций циркулирующих в крови стеролов, что рассматривают как сумму положительной и отрицательной связей, с одной стороны, прогестагенов, с другой – эстрогенов [70].

Важнейшим разделом научных исследований является вопрос о сроках начала нормоциклической деятельности яичников у коров после отела.

Непременным условием нормальной продолжительности цикла, а, следовательно, оплодотворения и эмбриогенеза является активное функционирование маточных желез и других гистохимических элементов эндометрия, морфологических и топографических параметров матки.

Измененные в результате стельности и родов указанные параметры инволюционируют постепенно и с определенной последовательностью. У 77% коров матка размеров небеременного состояния достигает к 28 – 30 дням.

Размеры шейки нормализуются на 35 – 40-й день.

Структуры, обеспечивавшие беременность отторгаются и вместе с лохиями элиминируются из организма за 9 – 10 дней. Регенерация покровного эпителия и маточных желез происходит через 3 – 4 недели после отела.

Еще 2 – 3 недели требуется для того, чтобы началось их нормальное функционирование. Освобождение матки от микробов происходит к концу 2 месяца после отела, ко времени 2-ой или 3-ей течки [39; 63].

Фолликулярная функция яичников после отела возобновляется быстрее: первые фолликулы созревают через 3 – 4 недели (что инициирует течку и половое возбуждение), происходит первая овуляция.

В случае раннего осеменения оплодотворенные яйцеклетки погибают, т.к. не находят в матке необходимых условий для развития.

Это объясняют сообщения, согласно которым лишь 17,8% коров из числа осемененных в первые 30 дней после отела становятся стельными, в то время как результативность осеменений возрастает по мере отсрочки осеменения после отела к 45 – 60 дню [210].

Решение проблемы более раннего плодотворного осеменения связано с увеличением эффективности реализации генетически детерминированных репродуктивных возможностей, что сопря-жено, во-первых, с детализацией причин, вызывающих снижение оплодотворяемости, во-вторых, с выявлением возможностей целенаправленных воздействий на эти механизмы с помощью биологически активных веществ и, таким образом, с разработкой высокоэффективной биотехнологии интенсивного воспроизводства.

Обобщая большое число наблюдений, приходят к выводу, что в среднем продолжительностью полового цикла у коров следует считать 21 день, у телок (к периоду случки) – 20 дней.

На протяжении цикла изменения функционального состояния яичников отражаются определенными изменениями гормонального статуса.

Определяя функциональное состояние яичников по гормональному статусу, можно эффективно управлять процессами воспроизведения [157; 58; 97].

В соответствующие периоды цикла имеют место отчетливые различия в изменениях соотношений концентраций ФСГ, ЛГ, прогестерона и эстрадиола.

Эта разница может служить оценкой таких важных процессов, как лютеолизис, развитие, созревание и овуляция фолликула, образование, развитие и регрессия желтого тела.

Учитывая, что воздействие гормональными препаратами многократно количественно и качественно изменяет спонтанно протекающий процесс [58; 69; 97], для гормональных обработок следует использовать животных, у которых половой процесс нормально функционирует.

Ключевым моментом, определяющим успех биотехнических мероприятий, является точная характеристика функционального состояния желтого тела.

Морфологическим критерием желтого тела, предполагающим возможность результативного начала обработки с целью вызвать охоту, является его размер (≈ 1,0 х 1,0 см) в середине полового цикла, определяемый на практике методом ректальной пальпации.

Однако оценка воспроизводительного статуса коров по состоянию желтого тела недостаточно точна. Правильный диагноз проэструса, эструса, метэструса и диэструса составляет 54,2; 60,0; 71,4 и 89,8%, соответственно, и в целом после одной ректальной пальпации не превышает 80% [280].

В этом отношении достаточно точен метод анализа изменений концентрации прогестерона в крови на протяжении полового цикла, который в значительной степени позволяет корректировать ошибки, допускаемые при ректальной диагностике.

Функциональное состояние яичников у коров после отела оценивают по профилю прогестерона, который определяют, начиная с 10 дня после отела до осеменения с 5-дневными интервалами [191; 99; 321].

Находят прямую связь между концентрацией прогестерона в крови и способностью коров положительно реагировать на гормональные обработки.

Установлена взаимосвязь между концентрацией прогестерона, приходящейся на день начала обработок, проявлением индуцированной охоты и оплодотворяемостью после осеменения [221].

Более того, начало нормального эмбриогенеза после оплодотворения в индуцированную охоту возможно лишь при определенных концентрациях прогестерона в плазме крови перед началом проведения гормональной обработки.

Значительное повышение концентрации прогестерона выше оптимальной, составляющей 2,05±0,5 – 3,1±0,5 мг/мл, равно как и низкие значения, негативно влияют на процессы оплодотворения и эмбриогенеза [158; 120].

Учитывая непременное выполнение условия правильного понимания механизмов естественной регуляции репродуктивной функции, для успеха при ее направленной корректировке мы регламентировали постановку экспериментов и анализ данных, получаемых в ходе их проведения, в соответствии с данными литературы по этому вопросу, изложенными в настоящей главе.

Теперь проследим за тем, в каких направлениях шло развитие направленной регуляции функции размножения у самок сельскохозяйственных животных.

ГЛАВА V. МЕТОДЫ ГОРМОНАЛЬНОЙ РЕГУЛЯЦИИ ФУНКЦИИ ВОСПРОИЗВЕДЕНИЯ У КРУПНОГО

ГЛАВА V. МЕТОДЫ ГОРМОНАЛЬНОЙ РЕГУЛЯЦИИ ФУНКЦИИ ВОСПРОИЗВЕДЕНИЯ У КРУПНОГО

РОГАТОГО СКОТА

Накопленные в последние годы, данные по нейроэндокринной регуляции половой функции у животных, создали научную основу для разработки эффективных методов управления процессом воспроизводства у самок сельскохозяйственных животных.

Познание закономерностей изменения гормонального баланса в организме животных позволило разрабатывать методы регулирования времени наступления охоты и овуляции. В настоящее время известны три метода регуляции половой функции самок сельскохозяйственных животных:

  1. Гормональный;
  2. Физический (изменение продолжительности светового дня, применение ультразвука, электростимуляция);
  3. Хирургический (энуклеация желтого тела).

В 1930-х годах эндокринология обогатилась важными открытиями в области регулирования половой функции.

Решающее значение имело открытие Цондека и Ашгейма [378], а также Смита и Ингла [341], установивших, что введение ткани гипофиза или экстракта из него, вызывает преждевременное половое созревание у инфантильных грызунов.

Ашгейм и Цондек обнаружили активное вещество «пролан» (по современной терминологии хорионический гонадотропин человека, ХГЧ) в моче беременных женщин.

Инъекция пролана вызывала овуляцию у крыс и крольчих.

Кол и Харт [170] открыли гонадостимулирующее вещество в сыворотке крови жеребых кобыл – ГСЖК.

В Советском Союзе была разработана широкая программа использования достижений эндокринологии для интенсификации воспроизводства. Другой подход к воздействию на половые функции возник из установления роли желтого тела в регуляции полового цикла.

Опыты по удалению желтого тела у циклирующих овец [35] и коров [36] показали, что через 24-96 часов после этого наступает овуляция. У 50-80% коров и телок охота наступает через 2-7 дней после удаления желтого тела, оплодотворяются из них 25-80% [90; 31; 1; 22; 324].

Цикличность восстанавливалась через 21-47 дней после удаления желтого тела, от первого осеменения оплодотворилось 77% коров [66].

Однако этот метод не получил практического применения из-за возникающих кровотечений, воспалительных процессов и периовариальных спаек [109; 107; 179; 131].

Физический метод в регуляции функции воспроизведения крупного рогатого скота применения не нашел.

Наиболее широкое распространение в практике животноводства получил гормональный метод воздействия на воспроизводительную функцию животных.

Пути введения гормональных препаратов в организме животного разнообразия: парентеральное, пероральное, интравагинальное введение пессариев или спиралей, имплантация под кожу полимерных пластинок или таблеток, и накожная аппликация масляного раствора препарата.

Был предложен метод бескровного выключения функции желтого тела при помощи окситоцина [215].

Впервые данные по торможению и синхронизации половой охоты у коров путем ежедневных инъекций прогестерона, опубликовали R.E. Christian, L.E. Gasida [166]: инъекция 50-100 мг прогестерона в течение 18-20 дней тормозили выделение ЛГ и наступление овуляции, а через 4-7 дней после прекращения блокады наступала течка, охота и овуляция; оплодотворяемость в 1-ю охоту была ниже, чем в спонтанную охоту в контроле (30-40%), а в следующий цикл, наступающий у неоплодотворившихся коров через нормальный срок (21-26 дней) была такой же, как в контроле. Аналогичные данные были получены в опытах на овцах [319; 265].

Экзогенный прогестерон, создавая в организме как бы лютеиновую фазу цикла, подавляет влияние эстрадиола на гипофиз и блокирует выброс ЛГ в кровь, а, следовательно, и овуляцию. Прекращение инъекций, снижение уровня экзогенного прогестерона приводит к предовуляторному выделению ЛГ в кровь.

Однако ежедневные инъекции прогестерона животным крайне трудоемки.

Синтез гестагенов орального действия позволил заменить трудоемкие инъекции скармливания препаратов.

Широкому испытанию путем орального применения были подвергнуты медроксипрогестерона ацетат (МАП, 17α-ацетокси-6α-метилпрегн-4-ен-3,20-дион), хлормадиона ацетат (КАП, 17α-ацетокси-Δ6хлорпрегн-4-ен-3,20-дион) и меленгестрола ацетат (МГА, 17α-ацетокси-6метил-16-метиленпрегна-4,6-диен-3,20-дион).

В 1960 году впервые была проведена успешная синхронизация охоты у телок герефордской породы путем скармливания им в течение 20 дней МАП [214].

Более активным прогестероном является КАП.

При скармливании КАП в дозе 10 мг в сутки в течение 18-24 дней [196] большинство коров проявляют охоту в первые 6-9 дней после прекращения скармливания.

В Советском Союзе широкому испытанию методом скармливания были подвергнуты аналог МГА, ацетат мегестрола (АМЦ, 17α-ацетокси-6-метилпрегна-4,6-диен-3,20-дион) [162;78; 47] и его производные амол и диамол.

Применение указанных препаратов оказалось эффективным и для возбуждения охоты и овуляции у коров с гипофункцией яичников.

Коровы приходят в охоту на протяжении нескольких дней после обработки, что не позволяет проводить осеменение без выборки животных в охоте.

Для улучшения синхронности по приходу в охоту испытывали эффективность комплексной обработки гестагенами с другими препаратами.

Для синхронизации охоты у телок рекомендуется скармливать им в течение 14-15 дней по 40 мг АЦМ. Через 48 часов после последнего применения АЦМ вводят по 2000 МЕД СЖК; в охоту приходит до 83-100% животных, оплодотворяются из них за два цикла 70% [45].

Этот способ синхронизации охоты у овец, коров и телок обеспечивает синхронный приход в охоту 80-90% животных в течение 3-4 дней, начиная с 3-4 дня после окончания скармливания, однако оплодотворяемость после первого осеменения на 10-15% ниже, чем в контроле.

Важным недостатком этого метода являются необходимость ежедневной дачи с кормом дозированного количества препарата. Поэтому в дальнейшем поиски были направлены на сокращение частоты введения гормонов путем применения пролонгаторов.

Хлормадион при парентеральном введении проявляет пролонгированное действие, поэтому B.M. Bindon, E.M. Roberts [239] испытали его на овцах однократной внутримышечной инъекцией. Авторы получили удовлетворительную синхронизацию охоты (у 9 из 10 овец) и оплодотворяемость (5 из 9).

Введение телкам путем однократной инъекции 560 мг прогестерона в крахмально-масляной эмульсии и через 16/5 дней 750-2140 ИЕ СЖК, вызывает охоту у 90% телок, однако оплодотворяемость в первую охоту составляет лишь 17% [293].

В аналогичных опытах других исследователей, приход телок в охоту в течен6ие 4-6-дневного периода, после обработки прогестагенами составлял 60-80%, а оплодотворяемость в первую охоту – 28-60% [373; 312; 102].

Этот метод также не лишен недостатков.

Прежде всего, это низкая оплодотворяемость от осеменения в первую охоту, которая, по-видимому, объясняется остаточным действием депонированных прогестагенов [82].

Введение прогестагенов с помощью внутривагинальных устройств или подкожных имплантатов исключило остаточное действие депонированных прогестагенов.

В 1964 году впервые овцам были введены губки, пропитанные прогестероном или прогестагеном кронолоном [320].

Синхронность прихода в охоту овец составила 93,2% и 98,0%, а оплодотворяемость в первую охоту 75,8% и 88,0% соответственно.

Применение кронолона, мегестрола ацетата и хлормадинола [57] синхронизировало приход в охоту в течение 3-х дней у 88-100% овец, при низкой оплодотворяемости от первого осеменения – 32-36%. После извлечения пессариев с кронолоном из влагалища телок, введенных на 18 дней, в течение трех суток пришло в охоту 55,5% из них, а оплодотворяемость в первую охоту составила 30% [164]. Аналогичные данные получены Hansel W., Schechter R.J. [217].

Одним из недостатков этого метода является потеря пессариев у части животных (до 20%).

Эта проблема была решена открытием того, что прогестероны могут выделяться в ткани животных из силастиковых имплантатов [184].

При использовании имплантата, содержащего МГА, в течение 6 дней пришло в охоту 87,5% телок, оплодотворяемость в первую охоту составила 39,3% [267].

Аналогичные данные получены S.M. Lokhande с соавторами [197].

Имплантаты в этих опытах хорошо сохранились, но вновь возникла проблема низкой оплодотворяемости в первую охоту [293].

Для преодоления этой проблемы были использованы различные сочетания гормональных препаратов в течение 9-12-дневной обработки.

Скармливание прогестагена в течение 9 дней, и однократная инъекция эстрадиола валерианата на 2-й день скармливания вызвали синхронный приход в охоту 95% телок, оплодотворяемость телок опытной и контрольной групп была одинакова – 52% [386].

Challab A.M. с соавторами [188] сообщают, что при внутримышечной инъекции 3 мг норгестомета или 5 мг эстрадиол валерианата телкам, получившим норгестомет в имплантатах, оплодотворяемость их составила 65,7%, в контроле – 51,5%.

После введения 0,5-1,0 мг эстрадиола-17β в момент удаления имплантата, содержащего 6 мг норгестомета, или 150 мкг гонадолиберина через 40 часов после удаления имплантата в течение пяти дней пришло в охоту 88,3% телок, а оплодотворяемость была такой же, как и в контрольной группе [174].

По данным М.В. Силаевой [101] внутримышечная инъекция телкам эстрадиола бензоата и хорионического гонадотропина на 18-20 день после подкожного введения оксипрогестерона капроната синхронизировала охоту у 78,9%, оплодотворяемость от первого осеменения составила 80,0% (в контроле – 72,7%).

Дополнительное введение различных гормональных препаратов после гестагенов несколько улучшает оплодотворяемость.

Однако метод остался трудоемким для производственного применения, и требовалось повысить эффективность его действия.

Понижение оплодотворяемости в первую охоту после окончания воздействия гестагена связано с непостоянством создаваемого гормонального фона, задержкой удаления из организма гестагена, что тормозит выделение ЛГ из гипофиза; ухудшение оплодотворяемости могло наступить и из-за неадекватности развития эндометрита матки под воздействием гестагенов [306; 81].

Таким образом, подход, основанный на стимулировании ЛГ удалением желтого тела, хирургическим методом, оказался неприемлемым из-за вызываемых осложнений (кровотечения, воспаления); применение гестагенных препаратов требует продолжительного воздействия, сроки синхронизированного наступления охоты и овуляции растягиваются на 4-7 дней, оплодотворяемость за I-й цикл ниже, чем в спонтанную охоту, сочетание гестагенов с другими препаратами не обеспечивает достаточного улучшения [82].

Оглавление

Текст, тема и отступы ↑

AgroSota всегда под рукой

Выберите своё приложение AgroSota

Один аккаунт на сайте и в приложении. Light и Full можно установить рядом.

Знакомый сайт в приложении. Для привычной работы с AgroSota.

Версия 1.1.4

Мобильные экраны и кабинеты клиента и агента.

Версия 1.2.7 · Тестовая

Для Android 10 и новее · Нужен интернет

Установка и обновления
  1. Скачайте выбранное приложение.
  2. Откройте APK в папке «Загрузки» и следуйте инструкциям Android.
  3. Войдите под своей учётной записью AgroSota.

Light обновляет прежнее приложение AgroSota. Оно проверяет обновления автоматически, скачивание и установка — с вашим подтверждением.

Full устанавливается отдельно. Это тестовая версия: проверка всех сценариев продолжается.

Для iPhone: откройте agrosota.ru в Safari → «Поделиться» → «На экран Домой».

ИИ-помощник AgroSotaПодбор товаров · связь с менеджером
Отвечает ИИ. Текст сообщений обрабатывается OpenAI. Контакты для звонка укажите в форме ниже.
Передать запрос менеджеру