рогатого скота необходимо подходить дифференцированно, учитывая условия содержании, уровень продуктивности, состояние полового аппарата и течение послеродового периода.
Перерыв между отёлом и первым осеменением (случкой) должен определяться индивидуально для коровы или группы коров в зависимости от продуктивности в данную лактацию (начало производства молока) или предыдущей лактации (надой за лактацию). В связи с тем, что восстановление матки и слизистой оболочки продолжается около шести недель, первое осеменение после отёла не должно производиться раньше этого времени. В таблице 192 приведены рекомендации по осеменению коров с уровнем надоя 5 000-9 000 кг молока [29].
Таблица 192 – Осеменение молочных коров разного уровня продуктивности
| Показатели | Продуктивность | |||
|---|---|---|---|---|
| Суточный надой | 20 | 25–30 | 35–38 | 40 |
| Годовой надой, кг | 5 000 | 6 000–7 000 | 8 000–8 500 | 9 000 |
| Сроки осеменения | с 40-го дня после отёла | первая охота по- сле50 дней | вторая охота по- сле 50 дней | третья охота по- сле 50 дней (с 80-го дня) |
| Сервис-период, дн. | 50 | 60–85 | 95–106 | 115 |
| Межотельный пе- риод, дн. | 330 | 340–365 | 375–385 | до 400 |
| Индекс осемене- ния (при одноразовом осеменении) | 1 | 1 при 6 000 1–2 при 7 000 | 1-2 при 8 000 2 при 8 500 | 2 при 9 000 |
Принимая за основу индивидуальный подход в оценке репродуктивных качеств коровы, при разработке системы мероприятий по улучшению воспроизводства стада необходимо предусматривать также следующие общие организационно-технологические приёмы: улучшение кормления и содержания коров и тёлок; интенсивное выращивание; активный моцион зимой и пастбищное содержание летом стельных сухостойных коров; эффективную организацию выявления коров и тёлок в охоте с фиксированием времени (в часах) начала течки, качественное осеменение в оптимальные сроки; своевременную (через 45–70 дней после последнего осеменения) диагностику стельности и бесплодия; организацию систематического ветеринарного контроля за состоянием животных во все физиологические периоды, особенно в конце стельности и в послеродовой период; проведение отёлов в соответствующих гигиенических условиях; диспансеризацию новотельных коров и 268
интенсивное комплексное лечение послеродовых заболеваний в стационаре; стимулирование половых функций у трудно оплодотворяющихся коров; чёткую организацию учёта осеменений, запуска и отёлов, информацию о физиологическом состоянии коров; ежемесячный анализ состояния воспроизводства стада и устранение выявленных недостатков; материальное стимулирование работников животноводства за высокую эффективность и качество работы [74].
Эффективным решением проблем, связанных с активизацией репродуктивной функции коров, может быть комплексное применение передовых технологий содержания и современных биотехнологических приемов интенсификации воспроизводством стада.
Разработка методов разделения спермиев на фракции, содержащие Х- или Y-хромосому, представляет возможность ускоренного наращивания численности стада путём использования сексированного семени. Применение сексированной спермы позволяет увеличить выход телочек до 86,6-90 % [Шишкина, 2015: 56]. Коммерческое использование разделённой по полу спермы в зарубежных странах началось с 2000 года и к настоящему времени в мире получено более 2 млн телят [3]. В основном разделённую сперму быков используют для осеменения тёлок. Кроме того, биотехнологические методы воспроизводства, предусматривающие приёмы регуляции пола у сельскохозяйственных животных, способствуют ускорению генетического прогресса в селекционно-племенной работе [6].
Ускорить процесс тиражирования коров с высокими параметрами продуктивности в сжатые сроки позволяет метод трансплантации эмбрионов. Мировой опыт, а также результаты исследований отечественных учёных свидетельствуют, что трансплантация эмбрионов позволяет получать зародыши от одной самки 4-5 раз в год, вследствие чего очевидна реальная возможность ежегодного получения от коровы до 30 и более телят в год [136]. В то же время эмбриотрансплантация является сложным биотехнологическим приёмом, на эффективность которого влияет комплекс факторов [107].
Ряд исследователей считает необходимым проводить отбор животных для трансплантации эмбрионов с учётом критериев, отражающих гормональный статус и метаболическую активность потенциальных доноров [7, 21, 22, 39, 110].
Не менее важным фактором, определяющим успех пересадки, приживаемость эмбрионов, здоровье будущего новорождённого телёнка, является подбор реципиентов с учётом их репродуктивного здоровья оценки состояния метаболизма [123].
Более инновационным приёмом в трансплантации эмбрионов крупного рогатого скота может быть применение технологии прижизненной
аспирации ооцитов, позволяющей каждые две недели использования коровы-донора получать до 9-10 яйцеклеток от одной процедуры извлечения, дальнейшее культивирование которых в условиях in vitro приводит к получению 1-2 пригодных бластоцист [2, 107, 176]. По такой технологии ооциты могут извлекаться до двух раз в неделю независимо от стадии полового цикла. Их можно получать даже у стельных (до 3-х месяцев) животных, животных с патологиями репродуктивного тракта (за исключением яичников). Для получения ооцитов нет необходимости в гормональной стимуляции множественного роста фолликулов. При этом минимизируется влияние на яичники и их функциональную активность, а также на репродуктивную систему в целом [1, 4, 5, 107].
По данным Л.В. Голубца (2021), эффективность технологии in vitro, в пересчёте на месячную эмбриопродуктивность, превысила традиционную технологию трансплантации (in vivo) более чем в три раза [37].
На практике количество или качество тёлок-реципиентов, потенциально пригодных к пересадке, не всегда находится в оптимальном соотношении с количеством имеющихся эмбрионов. В таком случае возникает необходимость проводить криоконсервацию эмбриоматериала с хранением в жидком азоте и оттаиванием при наличии пригодных реципиентов.
На устойчивость эмбрионов к переохлаждению помимо условий получения эмбриоматериала может оказывать существенное влияние выбор используемого криопротектора и его концентрация, а также способ насыщения и удаления, режим охлаждения и многие другие. Установлено, что в условиях in vitro зародыши при проведении витрификации отличаются более высокой приживляемостью по сравнению с традиционной криоконсервацией. Витрификация позволяет сократить длительность цикла криоконсервирования и свести к минимуму изменения объёма клеток на этапах замораживания и оттаивания.
Исследованиями белорусский учёных определены оптимальные концентрации растворов высококонцентрированных криопротекторов (этиленгликоля, глицерина, диметилсульфоксида и 1,2-пропандиола) при витрификации зародышей млекопитающих [121]. Результаты эффективности применения оптимальных концентраций различных криопротекторов при витрификации эмбрионов млекопитающих представлены в таблице 193. Установлено, что наибольшими протекторными свойствами обладает 30%-ный раствор этиленгликоля. Сохранность зародышей после их оттаивания характеризовалась максимально высоким значением среди всех исследуемых криопротекторов – 88,2 %, что на 5,8 п. п., 17,6 и 8,2 п. п. больше по сравнению с 30%-ным раствором глицерина, 20%-ным раствором диметилсульфоксидам (ДМСО) и 10%ным раствором 1,2-пропандиола соответственно. При этом выявлено,
