интенсивное комплексное лечение послеродовых заболеваний в стационаре; стимулирование половых функций у трудно оплодотворяющихся коров; чёткую организацию учёта осеменений, запуска и отёлов, информацию о физиологическом состоянии коров; ежемесячный анализ состояния воспроизводства стада и устранение выявленных недостатков; материальное стимулирование работников животноводства за высокую эффективность и качество работы [74].
Эффективным решением проблем, связанных с активизацией репродуктивной функции коров, может быть комплексное применение передовых технологий содержания и современных биотехнологических приемов интенсификации воспроизводством стада.
Разработка методов разделения спермиев на фракции, содержащие Х- или Y-хромосому, представляет возможность ускоренного наращивания численности стада путём использования сексированного семени. Применение сексированной спермы позволяет увеличить выход телочек до 86,6-90 % [Шишкина, 2015: 56]. Коммерческое использование разделённой по полу спермы в зарубежных странах началось с 2000 года и к настоящему времени в мире получено более 2 млн телят [3]. В основном разделённую сперму быков используют для осеменения тёлок. Кроме того, биотехнологические методы воспроизводства, предусматривающие приёмы регуляции пола у сельскохозяйственных животных, способствуют ускорению генетического прогресса в селекционно-племенной работе [6].
Ускорить процесс тиражирования коров с высокими параметрами продуктивности в сжатые сроки позволяет метод трансплантации эмбрионов. Мировой опыт, а также результаты исследований отечественных учёных свидетельствуют, что трансплантация эмбрионов позволяет получать зародыши от одной самки 4-5 раз в год, вследствие чего очевидна реальная возможность ежегодного получения от коровы до 30 и более телят в год [136]. В то же время эмбриотрансплантация является сложным биотехнологическим приёмом, на эффективность которого влияет комплекс факторов [107].
Ряд исследователей считает необходимым проводить отбор животных для трансплантации эмбрионов с учётом критериев, отражающих гормональный статус и метаболическую активность потенциальных доноров [7, 21, 22, 39, 110].
Не менее важным фактором, определяющим успех пересадки, приживаемость эмбрионов, здоровье будущего новорождённого телёнка, является подбор реципиентов с учётом их репродуктивного здоровья оценки состояния метаболизма [123].
Более инновационным приёмом в трансплантации эмбрионов крупного рогатого скота может быть применение технологии прижизненной
аспирации ооцитов, позволяющей каждые две недели использования коровы-донора получать до 9-10 яйцеклеток от одной процедуры извлечения, дальнейшее культивирование которых в условиях in vitro приводит к получению 1-2 пригодных бластоцист [2, 107, 176]. По такой технологии ооциты могут извлекаться до двух раз в неделю независимо от стадии полового цикла. Их можно получать даже у стельных (до 3-х месяцев) животных, животных с патологиями репродуктивного тракта (за исключением яичников). Для получения ооцитов нет необходимости в гормональной стимуляции множественного роста фолликулов. При этом минимизируется влияние на яичники и их функциональную активность, а также на репродуктивную систему в целом [1, 4, 5, 107].
По данным Л.В. Голубца (2021), эффективность технологии in vitro, в пересчёте на месячную эмбриопродуктивность, превысила традиционную технологию трансплантации (in vivo) более чем в три раза [37].
На практике количество или качество тёлок-реципиентов, потенциально пригодных к пересадке, не всегда находится в оптимальном соотношении с количеством имеющихся эмбрионов. В таком случае возникает необходимость проводить криоконсервацию эмбриоматериала с хранением в жидком азоте и оттаиванием при наличии пригодных реципиентов.
На устойчивость эмбрионов к переохлаждению помимо условий получения эмбриоматериала может оказывать существенное влияние выбор используемого криопротектора и его концентрация, а также способ насыщения и удаления, режим охлаждения и многие другие. Установлено, что в условиях in vitro зародыши при проведении витрификации отличаются более высокой приживляемостью по сравнению с традиционной криоконсервацией. Витрификация позволяет сократить длительность цикла криоконсервирования и свести к минимуму изменения объёма клеток на этапах замораживания и оттаивания.
Исследованиями белорусский учёных определены оптимальные концентрации растворов высококонцентрированных криопротекторов (этиленгликоля, глицерина, диметилсульфоксида и 1,2-пропандиола) при витрификации зародышей млекопитающих [121]. Результаты эффективности применения оптимальных концентраций различных криопротекторов при витрификации эмбрионов млекопитающих представлены в таблице 193. Установлено, что наибольшими протекторными свойствами обладает 30%-ный раствор этиленгликоля. Сохранность зародышей после их оттаивания характеризовалась максимально высоким значением среди всех исследуемых криопротекторов – 88,2 %, что на 5,8 п. п., 17,6 и 8,2 п. п. больше по сравнению с 30%-ным раствором глицерина, 20%-ным раствором диметилсульфоксидам (ДМСО) и 10%ным раствором 1,2-пропандиола соответственно. При этом выявлено,
что применение разработанного протектора способствовало повышению уровня дробления эмбриоматериала после его оттаивания и культивирования в инкубаторе на 1,4-5,0 п. п. по сравнению другими оцениваемыми растворами высококонцентрированных криофилактиков [121]. Следовательно, наряду с применением традиционных методов воспроизводства стада, в настоящее время в республике всё большее значение приобретают инновационные способы ускоренного размножения высокоценных племенных животных, к которым относится технология трансплантации эмбрионов, в том числе полученных in vitro. Одним из главных её этапов является сохранение биополноценности полученных зародышей при их низкотемпературном криоконсервировании с применением высокоэффективных криофилактиков.
Таблица 193 – Сравнительная эффективность оптимальных концентраций раз- личных криопротекторов при витрификации зародышей млекопитающих
| Показатели | Группы эмбрионов | |||
|---|---|---|---|---|
| эти- ленгли- коль | глице- рин | ДМСО | 1,2-про- пандиол | |
| Заморожено эмбрионов, n/% | 17/100 | 17/100 | 17/100 | 15/100 |
| Оттаяно эмбрионов, n/% | 17/100 | 17/100 | 17/100 | 15/100 |
| Сохранность после оттаивания, n/% | 15/88,2 | 14/82,4 | 12/70,6 | 12/80,0 |
| Уровень дробления, n/% | 12/80,0 | 11/78,6 | 9/75,0 | 9/75,0 |
Сокращение непроизводительного выбытия молодняка . В современных условиях ведения отрасли животноводства интенсивными методами особое значение получает минимизация потерь животных на всех этапах их использования. Выращивание ремонтного молодняка в условиях ведения молочного скотоводства интенсивными методами основывается на промышленных принципах организации производства, предусматривающих групповое содержание при соответствующем возрастным периодам и планируемой продуктивности дифференцированном нормировании кормов.
При неблагоприятном воздействии внешних и внутренних факторов на организм животного возникают стрессовые состояния и снижение иммунобиологической реактивности организма. Многолетние разноплановые исследования по изучению резистентности организма молочного скота разных пород в условиях различных хозяйств показали, что естественные защитные силы животных являются динамичными показателями и определяются как их генетическими особенностями, так и воздействием различных факторов окружающей среды. Фактическая оценка естественной резистентности по комплексному показателю
