Для патогистологического исследования от свежих трупов павших или вынужденно убитых животных из разных участков патологически измененных органов и тканей вырезают тонкие кусочки длиной и шириной 1-2 см, толщиной не более 1 см, помещают их в стеклянные банки с 10%-ным водным раствором формалина (10 мл продажного формалина на 90 мл воды). Объем раствора берут в 10 раз больше, чем объем взятого материала.
На посылаемый патологический материал в ветеринарную лабораторию по форме составляют сопроводительный документ.
В сопроводительном письме указывают вид, пол и возраст животного, от которого взят материал, его номер или кличку, количество банок с материалом, на какое исследование посылается, кратко описывают клинические признаки и патологоанатомические изменения. К письму могут быть приложены дополнительные сведения. Сопроводительный документ посылают вместе с патологическим материалом. При необходимости сопроводительный документ отправляют в лабораторию в запечатанном конверте.
2.4 ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА
Опытному ветеринарному специалисту, чтобы подозревать какую-либо болезнь, бывает достаточно эпизоотологических данных, клинической и патологоанатомической картины вскрытия, однако для постановки окончательного диагноза на инфекционные заболевания требуется подтверждение лабораторными исследованиями. Методические указания и наставления по лабораторной диагностике приводятся в специальной служебной и справочной литературе. Краткие сведения этого раздела помогут практикующему ветеринарному специалисту, сориентироваться какой патологический материал необходимо направлять в диагностическую лабораторию. Наряду с проведением вирусологических, бактериологических и серологических методов исследования (микроскопия, определение культуральных, ферментативных свойств возбудителей, иммунологических методов и серологических реакций [агглютинации (РА), непрямой гемагглютинации (РНГА), Кумбса (РК), кольцепреципитации (РКП), диффузной преципитации (РДП), иммуноэлектрофореза, реакции связывания комплемента (РСК), флюоресцирующих антител (МФА), иммуноферметного анализа (ИФА), реакции нейтрализации (рН)]. Применяются новые методы идентификации микроорганизмов, и в первую очередь, использование полимерной цепной реакции (ПЦР).
В таблице 11 приведены сведения о том, какие из описываемых возбудителей инфекционных болезней можно обнаружить, используя тест-системы на основе ПЦР.
Таблица 11 – Эффективность обнаружения методом ПЦР инфекционных агентов во внутренних органах свиней (ФГУ ВНИИЗЖ)
| Возбудитель | Миндалины | Региональные лимфатические узлы | Легкие | Селезенка | Почки | Плацента | Кишечник | Головной мозг |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 |
| Вирус КЧС | ++ | ++ | + | ++ | + | + | ||
| Вирус РРСС (респиратор ная форма) | + | ++ | ++ | + | ||||
| Вирус гриппа | + | ++ | ++ | |||||
| Аденовирус свиней | + | ++ | ++ | |||||
| Ротавирус свиней | + | +тонк | ||||||
| Энтеровирус свиней (кишечная патология) | + | +тонк | ||||||
| Коронавирусы а) вирус ТГС б) респираторный коронавирус свиней | + | + + | ++ ++ | ++ ++тон | ||||
| Вирус болезни Ауески | ++ | + | ++ |
