Сразу же после этого на обожженную поверхность ушной раковины 3 кроликов опытной группы наносили с легким втиранием по 0,5 мл препарата, кроликов контрольной группы не лечили. В течение последующего времени за животными вели наблюдение, учитывая интенсивность воспаления (слабая +, средняя ++, сильная +++).
При этом установили следующее: у кроликов контрольной группы после ожога ушной раковины она почти сразу становится гиперемированной; при рассмотрении уха на свет обнаруживаются точечные кровоизлияния. В течение первых часов после ожога нарастает расширение мелких сосудов, появляется отек. В последующие 12 ч воспалительные явления прогрессируют, появляются различной величины серозные пузыри. Через сутки после нанесения ожога ухо свисает. В дальнейшем экссудативные явления спадают, на 3–5-й день в обожженной области обнаруживаются некротические участки.
У животных опытной группы, в сравнении с контролем, признаки воспаления были менее выражены и быстрее угасали. Образования пузырей инекротических участков не обнаружили.
С учетом изложенного можно сделать заключение о выраженном противовоспалительном действии препарата. Противоаллергическое действие изучали на 9 морских свинках, которым с целью сенсибилизации организма однократно инъецировали внутрибрюшинно 0,5 мл лошадиной сыворотки. Спустя 3 нед на выстриженный участок туловища животных наносили 1–2 капли лошадиной сыворотки, кожу скарифицировали через каплю сыворотки тупой иглой. Спустя 1 мин каплю сыворотки удаляли фильтрованной бумагой, после чего на место скарификации наносили: 3 морским свинкам (1-я опытная группа) препарат, 3 морским свинкам (2-я контрольная группа) – ИВСТ, 3
морским свинкам (3-я (контрольная группа) – берлицетин по 2 капли.
Результаты учета реакции: у всех контрольных животных через 10–15 мин на месте травматизации возникла типичная реакция (волдырь), достигавшая максимума через 1 ч, а затем постепенно исчезавшая у сенсибилизированных животных опытной группы феномен Артюса-Сахарова не проявлялся. Анализ результата опыта приведен в таблице 17.
Таблица 17 – Материалы изучения противоаллергического действия препарата
| Группы | Проявление аллергической реакции в сроки | ||||
|---|---|---|---|---|---|
| животных | 15 мин | 30мин. | 1ч | 3 ч | 6 ч |
| Контрольные | + | + + | +++ | + | - |
| Опытная | - | - | - | - | - |
Следовательно, препарат оказывает противоаллергическое действие.
4.3.1 Изучение действия препарата на течение регенеративных процессов
Влияние препарата на течение регенеративных процессов проводили в сравнительном аспекте на модели экспериментально воспроизведенных инфицированных кожно-мышечных ранах у 30 молодых белых крыс массой 80 г взятых из одних пометов и равномерно распределенных в опытные и контрольные группы. Им наносили кожномышечные раны без соблюдения правил асептики. На спине всех зафиксированных животных ножницами тщательно выстригали участок 2 x 2 см, трафаретом (острыми краями пробочного пробойника) намечали контуры раны диаметром 10 мм, а затем лоскут кожи и мышц вырезали глазными ножницами. 10 крысам опытной группы на раневую
поверхность наносили препарат, 10 крысам 1-й контрольной группы – основу препарата сложный полимерный разбавитель, а 10 крыс 2-й контрольной группы оставили без лечения. После этого раны покрывали марлевой салфеткой, сверх которой накладывали кусок марли, края которой приклеивали к шерсти животного густым коллодием. Для надежной фиксации повязки ее укрепляли бинтом. Перевязки проводили через день. О ходе заживления экспериментальных ран судили по следующим показателям:
Визуальным наблюдением определяли – время появления грануляций в ране, закрытие дна раны грануляциями, заполнение грануляциями полостираны, качество грануляций, ход эпителизации, состояние тканей вокруг раны. Наряду с этим изучали цитограмму окрашенных раневых мазковотпечатков, регистрировали изменения площади раны (исходная площадь – 100 %) наложением на нее целлофана с зарисовкой контура раны; площадь раны определяли с помощью миллиметровой бумаги. При сравнении сроков окончательного заживления ран животных разных групп учитывали не только число дней, составляющих разницу в быстроте заживления ран, но и укорочение срока заживления ран, рассчитываемое по формуле:
(Т – Т1) • 100 , , (10)
Т
где Т – время заживления ран контрольных групп животных; Т1 – время заживления ран у животных опытной групп.
Как показали наблюдения, у животных опытной группы заживление ран (заполнение их грануляцией, исчезновение гиперемии, отечности и боли, эпителизация с образованием рубца) происходило в среднем на 6 дней раньше, чем у животных 1-й контрольной группы (укорочение срока заживления – 50 %) и на 9 дн раньше, чем у животных 2-й контрольной группы (укорочение срока заживления – 60 %). В мазках – отпечатках раневой поверхности у животных
156
