бактериальной взвеси, 0,1 млрд. микробных тел в 1 мл вывеси грибной культуры), которую равномерно распределяли по поверхности среды. Чашки подсушивали 30–40 мин в термостате. Затем в агаре пробивали луночки диаметром 5 мм, на дно которых вносили 1–2 капли расплавленного МПА, а затем одну каплю препарата. Учет вели через 24 ч и в последующее время после инкубирования в термостате, измеряя диаметр зоны задержки роста (ЗЗР) микробов (до 15 мм – слабая чувствительность микробов к препарату, 15– 25 мм – чувствительны, свыше 25 мм – высокая чувствительность).
Таблица 15 – Антимикробная активность противоэндометритного препарата
| Тест-микробы | МБсК (МФцК) препарата, мл (мг)/мл среды | МБсК (МФцК) препарата, мл (мг)/мл среды | ЗЗР мик- робов мм (диаметр) | Экспозиция бакте- рицидного или фун- гицидного эффекта, (мин) |
|---|---|---|---|---|
| 1. Стафилококки, 5 шт. | 0,0000075 (0,0073) | 0,000022 (0,02481) | 26 | 5–30 |
| 2. Стрептококки, 6 шт. | 0,000018 (0,0073) | 0,00004 (0,02481) | 25 | 15–40 |
| 3. Кишечная па- лочка, 4 шт. | 0,000057 (0,062) | 0,00011 (0,117) | 23 | 20–50 |
| 4. Протеи вуль- гарный, 3 шт. | 0,000028 (0,0303) | 0,000096 (0,1046) | 22 | 20–50 |
| 5. Синегнойная палочка, 3 шт. | 0,000071 (0,0772) | 0,000203 (0,20) | 20 | 25–60 |
| 6. Грибы из рода кандида, 3 шт. | 0,00008 (0,082) | 0,00025 (0,27) | 18 | 60–120 |
Анализ материалов, представленных в таблице 15, указывает на то, что препарат обладает достаточно высокой антимикробной активностью в отношении стафилококков, стрептококков, кишечной палочки, протея, синегнойной палочки и грибов. Перечисленные микробы оказались чувствительными или высокочувствительными к испытуемому препарату (зона задержки роста бактерий варьирует в пределах от 17–18 до 26–28 мм).
Минимальная бактериостатическая концентрация по отношению к стафилококкам, стрептококкам, кишечной палочке, протею, синегнойной палочке в наших опытах колебалась в пределах от 0,0000075 мл (0,0073 мг)/мл среды до 0,000071 мл (0,0772 мг)/мл среды.
Минимальная бактерицидная концентрация препарата к перечисленным выше микроорганизмам выявлена в диапазоне от 0,000022 мл (0,02481 мг)/мл среды до 0,000203 мл (0,20 мг)/мл среды.
В упомянутых минимальных бактерицидных концентрациях губительное действие препарата проявляется при экспозиции 10–60 мин. При более высоких концентрациях препарата (свыше 0,0005 мл, или 0,53 мг/мл среды) бактерицидный эффект проявляется в течении 2–5 мин.
Зона задержки роста бактерий на агаре под влиянием препарата варьирует (по средним показателям) в пределах 20–26 мм.
Мы установили, что в отношении перечисленных выше тест-микробов МБцК препарата варьирует в пределах 0,00032–0,042 мг/мл.
После 20–30 пассажей тест бактерий на МПБ с суббактериостатической концентрацией препарата чувствительность к препарату стафилококков, стрептококков, кишечной палочки, протея, синегнойной палочки не изменялась, что исключает возможность образования устойчивости у бактерий к препарату.
Минимальная фунгистатическая концентрация препарата в отношении гриба из рода Кандида равна в среднем 0,00008 мл, или 0,082 мг/мл среды, а минимальная фунгицидная концентрация – в среднем 0,00025 мл, или 0,27 мг/мл среды. При испытании чувствительности к препарату гриба из рода Кандида (Candidaalbicans) методом диффузии в агар диаметр зоны задержки роста тест культуры колеблется в пределах 15–24 мм. В зависимости от концентрации препарата, его губительное действие на грибы из рода Кандида проявляется при экспозиции от 1–2 до 6–12 ч. Полученные данные свидетельствуют о выраженном фунгистатическом и фунгицидном действии препарата.
Противовоспалительное действие. Сформировано 9 групп лабораторных животных, в каждой по 3 кролика-альбиноса и 3 морских свинки. Из них 3 опытных и 6 контрольных групп.
Животным 1-й опытной группы после депиляции в области спины нанесли 3 капли ксилола, который стеклянной палочкой в течение 2 мин втирали в кожу для вызывания дерматита. В этот же день спустя 1 ч и в последующие дни на кожу в зоне воздействия химического фактора наносили 2–3 капли препарата.
Животным 2-й опытной группы после депиляции в области спины вызывали термический ожог кожи (температура 60…70 °С, экспозиция 2 мин) диаметром 10 мм. После чего сразу же в этот и в последующие дни на пораженное место наносили 1–2 капли. Животным 3-й опытной группы подкожно в область ягодичных мышц, инъецировали 1,0–0,5 мл 10%-го раствора хлорида кальция. В этот же день (спустя 1 час) и в последующие дни на область поражения осуществляли аппликации на кожу с втиранием 0,5 мл препарата.
У животных 4-й и 7-й контрольных групп экспериментальное воспаление кожи вызывали так же, как и у животных 1-й опытной группы, а у животных и и 8-й
