67,4% сохранили эту реакцию до последующего обследования (3 мес. после вакцинации), а 32,6% реагировали в этот период отрицательно. Через 6 и 9 месяцев ряд животных положительно реагировали в РДСК (через 6 месяцев - 12 телок, через 9 мес. — 1 телка). У 26,7% животных показатели РСК во все сроки исследования были очень низкие (не выше разведение 1:5).
Таблица 12. Показатели специфического иммунного ответа у телок
после вакцинации
| Реакция | Показатели | |||
|---|---|---|---|---|
| интенсивности ре- акции | дней | через 45 дней | | через 3 меся- ца | |
| Розбенгал проба | 0 | 29,0 | 21,8 | 63,8 |
| (оценка в крестах) | + | 19,3 | 16,5 | 18,1 |
| ++ | 2,7 | 14,3 | 4,3 | |
| +++ | 7,6 | 16,6 | 10,2 | |
| ++++ : | 41,4 | 30,8 | 3,6 | |
| Реакция связывания | |0 | 64,6 | 28,4 | 50,8 |
| комплемента (разве- | |1:5 | 20,8 | 20,9 | 25,8 |
| дение сыворотки) | 1:10 | 13,1 | 23,6 | 18,0 |
| 1:20 | 1,5 | 18,9 | 4,6 | |
| 1:40 | - | 8,2 | 0,8 | |
| Реакция агглютина- | |0 | 0,7 | 18,2 | 46,5 |
| ции (м.е./мл) | до 100 | 20,1 | 74,2 | 51,2 |
| от 101 до 200 | 29,2 | 7,6 | 2,3 | |
| от 201 до 400 | 29,2 | - | - | |
| от 401 до 800 | 20,8 | - | : | |
| Уровень иммуногло- | |0 | 11,9 | 33,3 | 77,0 |
| булинов KnaccalgM_ | | go 100 | 55,2 | 63,0 | 20,6 |
| (м.с./мл) | от 101 до 200 | 23,8 | 3,7 | 2,4 |
| от 201 до 400 | 91 | - | - | |
| от 401 до 800 | : | - | - | |
| Уровень иммуногло- | |0 | 15,5 | 47,8 | 55,8 |
| булинов класса 126 | |до 100 | 31,0 | 48,7 | 43,3 |
| (м.с./мл) | от 101 до 200 | 20,4 | 3,5 | 0,9 |
| от 201 до 400 | 19,0 | - | - | |
| от 401 до 800 | 14,1 | - | : |
Наиболее выраженной оказалась реакция агглютинации. У 18,2% животных реакция агглютинации была слабой и ее отмечали только при исследовании через 15 дней после вакцинации. У 28,3% телок агглютинирующие антитела присутствовали в сыворотке крови до 45 дней после вакцинации, ау 53,% - в течении 3
месяцев. И только у одного животного РА не была выявлена при исследовании через 15 дней после вакцинации.
Первичный иммунный ответ, который характеризуется образованием специфических антител класса IgM, был наиболее интенсивен через 15 дней после вакцинации. Только у 7% животных антитела класса IgM отсутствовали в течение всего периода наблюдения, ау 21% эти антитела исчезли из крови раньше, чем антитела класса IgG.
Анализ содержания в сыворотке крови IgG показал весьма сходную картину. Только у трех животных иммуноглобулины этого класса отсутствовали в крови в течение всего опыта. У 8,1% животных IgG отсутствовали через 15 дней после вакцинации и были выявлены только при последующем исследовании (через 45 дней). У 42,7% телок IgG — раньше, чем IgM. В целом необхоAMMO отметить, что динамика IgG не дала ожидаемой картины в данном опыте.
В последующих опытах все реакции были более интенсивны, быстро нарастали и быстро исчезали. Более четкими были и соотношения обоих классов иммуноглобулинов. На наш взгляд, это объясняется тем, что только в первом опыте телки не были ранее вакцинированы против других болезней и обновление иммунной системы у них проходило медленнее. В первом и втором опытах не применялись иммуномодуляторы, поэтому до 30-35% животных, на наш взгляд, страдали иммунодефицитами в той или иной степени. У животных, обработанных иммуномодуляторами, количество животных с низким иммунным ответом резко снижалось. Поэтому основные иммуногенетические исследования были проведены на животных первых двух подопытных групп.
Изучение динамики показателей специфического иммунитета было важно для того, чтобы разделить животных по силе иммунного ответа на сильно- и слабоотвечающих. Такое разделение животных было проведено комиссионно, с учетом как результатов вакцинации, так и ревакцинации (табл. 13). Надо сразу отметить, что деление животных на группы по силе иммунного ответа является субъективным, несмотря на попытки беспристрастно относиться к результатам исследования каждого животного.
Не вдаваясь в детальный разбор данной таблицы, отметим только, что с иммунногенетической точки зрения наибольший интерес представляют группы М 1, 2, 5 и 6. В группах 5 и 6 мы надеемся, что здесь самое низкое влияние случайных факторов и самое высокое - генетической обусловленности.
Выявление связей силы иммунного ответа проводилось с эритроцитарными антигенами всех систем, с аллелями В-локуса, с полиморфными белковыми системами трансферринов.
В таблице 14 представлены результаты, полученные при исследовании эритроцитарных антигенов у телок с разным уровнем специфического иммунного ответа в опыте 1. По ряду антигенов эти различия достоверны, причем в таблице достоверность отмечена только там где она была одинаковой и равнонаправленной как в | и 2 группах, так и в 5 и 6 группах.
Таблица 13. Группировка подопытных телок по силе иммунного
| ответа (опыт №1 | |||
|---|---|---|---|
| Иммунизация | Характеристика силы | | №груп- | Относительное |
| иммунного ответа | пы | количество живот- | |
| Первичная | [Сильный | ОП | ных, 650 % | |
| Связь Реиммунизация | [слабый| | 653 | | |
| первич- ной и вторич- | Слабый-слабый | 6 | | 23 | |
| ной иммуниза- | Сильный-слабый | ||
| ций | Слабый-сильный | вв| |
A-cucmema: Частота встречаемости антигена А у животных со слабым иммунным ответом значительно выше, чем с сильным. Так, различия между 5 и 6 группами составляет 1:7 и высокодостоверны.
В-система: У животных с низким иммунным ответом частота встречаемости антигенов О, Г, Р’ достоверно выше, чем у телок с высоким иммунным ответом. В то же время у последних выше частота встречаемости антигенов С, У, Е’, С’. Частота встречаемости других антигенов, несмотря на имеющиеся различия между отдельными группами, не имеет определенной зако-
