Таблица 9
Сроки определения параметров развития плода с помощью ультразвуковой диагностики (Adapted from Currant et al., 1986)
| Отдельные характеристики плода | Средняя дата обнаружения, дни | Отклонения, дни |
|---|---|---|
| Наличие эмбриона | 20,3 | от 19 до 24 |
| Биение сердца | 20,9 | от 19 до 24 |
| Алантоис | 23,2 | от 22 до 25 |
| Спинная хорда | 29,1 | от 26 до 33 |
| Закладка передних конеч- ностей | 29,1 | от 28 до 31 |
| Амнион | 29,5 | от 28 до 33 |
| Глазные орбиты | 30,2 | от 29 до 33 |
| Закладка задних конечно- стей | 31,2 | от 30 до 33 |
| Плацента | 35,2 | от 33 до 38 |
| Наполнение живота | 44,6 | от 42 до 49 |
| Движение плода | 44,8 | от 42 до 50 |
| Ребра | 52,8 | от 51 до 53 |
Ультразвуковой метод диагностики стельности уменьшает интервал от осеменения до постановки точного диагноза на 25 и более дней, что позволяет сократить сервис-период по стаду за счет повторного осеменения выявленных бесплодных животных в более ранние сроки.
К числу отрицательных моментов применения УЗИ в широкой практике следует отнести довольно дорогостоящее оборудование. Работа с ультразвуковыми сканерами требует высокой квалификации.
Необходимы дальнейшие исследования для выяснения вопросов, которые возникают при использовании метода УЗИ.
Данный метод может быть использован в комплексе с другими методами, в частности, с ИФА содержания прогестерона в молоке или сыворотке крови.
ИФА уровня прогестерона в молоке и сыворотке крови
Уровень прогестерона в течение полового цикла изменяется в зависимости от стадии развития желтого тела. Максимальная концентрация наблюдается в середине полового цикла, когда желтое тело находится на максимуме развития. На рисунке 26 представлены усредненные данные уровня прогестерона в течение полового цикла (ГНУ ВИЖ, 2011 г.).
Рисунок 26
Уровень прогестерона в сыворотке крови коров в течении полового цикла (пмоль/л)
После наступления стельности желтое тело сохраняется, т.к. химические сигналы эмбриона блокируют выброс ПГF2α эндометрием. Этим обусловлено сохранение и увеличение уровня прогестерона у стельных коров в первые месяцы стельности. Принцип диагностики стельности на ранних сроках после осеменения, основанный на определении уровня прогестерона в сыворотке крови или молоке, может применяться через 20-24 дня после осеменения. При этом используется метод ИФА. Достоверность метода составляет 95-100% (Shearer J.K., 1992). Данный метод позволяет выявлять бесплодных животных на 7-15 дней раньше, чем метод УЗИ.
Практика показывает, что наиболее часто ошибка в постановке диагноза наблюдается у высокопродуктивных коров (низкий уровень прогестерона при наличии стельности) и при лютеальных кистах или персистенции желтого тела (высокий уровень прогестерона из-за секреторной активности лютеальной ткани). Кроме того, на более поздних стадиях развития стельности возможна гибель эмбриона. В связи с этим, нельзя полностью полагаться на результат данного метода. Разработана система применения данного способа диагностики стельности, когда уровень прогестерона определяется несколько раз (например, 20-й, 28-й, 42-й дни после осеменения), что позволяет выявлять коров, потерявших стельность после 20-го дня. В любом случае, коров, признанных бесплодными по результатам ИФА, следует обследовать ректально или с помощью УЗИ для подтверждения отсутствия в яичниках желтых тел. Если желтое тело присутствует, это может являться косвенным доказательством стельности.
Помимо диагностики стельности уровень прогестерона может служить дополнительным показателем при диагностике патологий яичников (фолликулярные и лютеальные кисты, гипофункция яичников).
Гликопротеины. Гликопротеины специфичные для стельных животных сложные молекулы, синтезируемые эпителиальными клетками в зоне взаимодействия хориона и трофобласта. Это видоспецифичные соединения, большинство которых синтезируется на ранних сроках стельности. Титр нарастает приблизительно с 15 до 35-го дня. Одновременно меняется соотношение данных гликопротеинов. Поэтому практическое использование
данного метода возможно не ранее 26-30 дней после осеменения (Humblot, 2001).
Точность метода довольно высока, но широкого распространения он пока не получил. Практическое его использование проводится в США, Канаде, Венгрии, Австралии, Великобритании.
5.1. Причины потери стельности. Ранняя эмбриональная смертность.
Причины потери стельности подразделяют на незаразные, инфекционные и инвазионные.
К незаразным причинам можно отнести генетически обусловленные аномалии зародыша, которые передаются родителями, интоксикацию организма матери, стрессы, нарушения физиологических норм и условий содержания, климатический фактор, травмы, и др.
Прерывание беременности может быть на ранней стадии (до 40 дней от момента оплодотворения), что считается эмбриональной смертностью, затем подразделяется на микроаборт и аборт. После формирования плода, основным фактором потери стельности или рождения нежизнеспособного потомства является плацентарная недостаточность, обусловленная неполноценным кормлением животных, высокой продуктивностью, факторами внешней среды (Kuhn C. et al., 2003; Kornmatitsuk B. et al., 2004; Lidfors L. et al., 2005).
Гибель эмбриона протекает практически бессимптомно, отмечается только пролонгация полового цикла, поэтому в практике чаще замечают аборты.
Аборты − это прерывание беременности с последующей резобцией, мумификацией, мацерацией или изгнанием из матки мертвого плода. Аборты осложняются заболеваниями половых органов, ведущими к бесплодию, понижению продуктивности и не исключаются случаи гибели животного.
Клинические признаки. У животного наблюдаются слабые потуги или их отсутствие, общее угнетение, тимпания или атония преджелудков. При этом шейка матки открыта и из половых путей идут выделения катарального, гнойно-катарального, ихорозного или геморрагического характера.
Профилактика абортов заключает в себя комплекс мероприятий, которые сводятся к созданию оптимальных условий кормления и содержания стельных животных. Это обеспечивает повышение резистентности организма и усиливает адаптационные способности его к воздействию разнообразных стрессовых факторов.
Необходимо постоянно контролировать качество кормов, определять их питательность, предупреждать недостаток в рационах питательных веществ, микро-макроэлементов и витаминов. Не следует использовать испорченные и мороженые корма и холодную воду для поения. Необходимо проводить правильный подбор родительских пар, не допуская близкородственного размножения.
Ветеринарная служба хозяйства должна проводить комплекс профилактических мероприятий с учетом сложившейся эпизоотической ситуации, контролировать микробную обсемененность спермы. Проводить токсикологический контроль кормов, своевременно лечить и профилактировать заболевания внутренних органов и т.д.
Эмбриональная смертность является одной из основных причин низкого уровня воспроизводства стада. Максимальный уровень гибели эмбрионов (до 20% от общего числа потерь стельности) приходится на первые 3 недели после осеменения (ранняя эмбриональная смертность). Гибель эмбрионов в более поздние сроки в первую очередь обусловлена высокой продуктивностью животных, вызывающей изменения метаболического и гормонального статуса. Установлено, что около 25% высокопродуктивных коров имели признаки ранней эмбриональной смертности, что возможно связано с морфологическими и биохимическими изменениями в цитоплазме клеток эмбрионов (Bage R. et al., 2003; Grimard
