И.Г. Конопельцев с соавт. [109,110] рекомендуют при эндометритах озонированный рыбий жир, который обладает, по их данным, выраженным бактерицидным свойством в отношении микроорганизмов, присутствующих в матке при воспалении.
А.В. Андреева [5] применяла водно-спиртово-масляную эмульсию прополиса с 0,2 г этакридина лактатом внутриматочно в дозе 50 мл на 1 голову параллельно с иммуностимулирующим прополисным молочком в дозе 150-200 мл на 1 голову.
А.В. Петляковский [179] экспериментально обосновал экологический способ лечения и профилактики послеродовых эндометритов у коров, вызываемых условно-патогенной микрофлорой, путем вибромассажа пояснично-крестцовой рефлексогенной зоны аппаратом «Вэлмас» в течение 5-7 дней по 5-10 минут.
И.Х. Таов, Л.Д. Тимченко [232], предложили для восполнения иммунологической недостаточности применение следующих иммунокорректоров: биологически активные вещества, способствующие нормализации и активации обменных процессов, что обеспечивает улучшение деятельности иммунной системы; адаптогены – снижают иммунодепрессивное действие стресс-факторов и действуют непосредственно на систему иммунитета. Для одновременного повышения защитных механизмов всего организма и молочной железы лактирующим коровам В.И. Слободяник и соавт. [211] применяли иммуноглобулин аллогенный крупного рогатого скота интрацистернально и интраперитониально, молозивные иммуноглобулины подкожно, аллогенную иммунную сыворотку интраперитониально.
Н.И. Полянцев и В.В. Подберезный [186] для профилактики послеродового эндометрита предлагают проведение комплекса ветеринарных мероприятий, предусматривающего предупреждение накопления кетоновых тел путем коррекции рационов сухостойных коров по сахаропротеиновому отношению, инъекцию селенсодержащих препаратов пролонгированного действия (деполен и др.), вакцинацию коров в сухостойный период против колибактериоза, поддержание равновесия между колиформными бактериями и аутотрофной микрофлорой желудочно-кишечного тракта.
А.Г. Нежданов и другие [149] в качестве лечебного и профилактического средства, а также для повышения оплодотворяемости при искусственном осеменении рекомендуют введение утеротоника и утеротона в дозе 10 мл в первые 4-6 часов после родов, благодаря чему ускоряется отделение последа и инволюционные процессы в половых органах, снижается вероятность послеродовых заболеваний и бесплодие коров. А в дозе 5 мл за 15 минут до искусственного осеменения повышает оплодотворяемость.
О.В. Распутина [1944, 1955] при послеродовых эндометритах применяла оксилат подкожно в дозе 10-15 мл ежедневно в течение 5 дней. Терапевтическая эффективность составила 94,64 %, количество дней бесплодия сокращается в 1,7 раза.
Т.Е. Григорьева и др. [62, 63] у нетелей для профилактики нарушения обмена веществ, повышения воспроизводительной функции и молочной продуктивности коров применяли комплексный препарат пермамик в дозе 3 % к сухому веществу рациона ежедневно в течение 60 дней до родов.
М.А. Багманов, Р.Г. Сафиулов [12-14] для профилактики и лечения острых цервицитов, вагинитов и эндометритов использовали препарат ЭПЛ (экстракт плаценты и лещинника), оказывающий антимикробное, фунгицидное и иммуностимулирующее действие. С профилактической целью за 45-60 дней до отела коровам вводят 0,1 мл на 1 кг массы тела 4-5 раз с интервалом 24 часа. Курс лечения повторяют через 7 дней. Заболеваемость снизилась на 13,4 %, продолжительность бесплодия – на 35,2±1,4 дней.
При послеродовых заболеваниях коров (цервициты, вагиниты, эндометриты) матка обсеменяется различными патогенными бактериями и грибами [13, 251]. При этом использование химиотерапевтических и антибиотических препаратов приводит к раздражению слизистой матки. В процессе антибиотикотерапии (особенно при длительном применении) проявляются устойчивые формы микроорганизмов к данному антибиотику. Стоит также отметить, что лекарственные препараты, вводимые в полость матки, через 1-2 часа поступают в молоко, в результате на протяжении всего курса лечения и после его завершения длительное время (3-8 дней) молоко и молочные продукты не могут применяться в пищу человека [149].
Е.Ю. Смертина [212] экспериментально обосновала и апробировала способы применения аппаратной физиотерапии у коров при некоторых гинекологических заболеваниях и маститах, вызываемых условнопатогенной микрофлорой. В последние годы в системе воспроизводства рекомендуются вибростимулирующая технология при функциональных нарушениях репродуктивных органов коров [267, 268].
Таким образом, несмотря на достигнутые успехи, послеродовые эндометриты, снижающие репродуктивную способность и молочную продуктивность, приводящие к ранней выбраковке, продолжают широко наблюдаться на сельскохозяйственных предприятиях Российской Федерации. Поэтому разработка эффективных, безопасных методов и средств профилактики, лечения у коров послеродовых осложнений, связанных с нарушением микробиоценоза, остается актуальной.
ГЛАВА 2.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
При микробиологическом исследовании использованы общепринятые методы. Родовая и видовая идентификация выделенных микроорганизмов проводилась по «Определителю бактерий Берджи» (1997). При микологических исследованиях грибов, выделенных из влагалищно-цервикальной слизи, использованы «Методы исследования в ветеринарной микологии» [120].
Исследования по изучению уровня и структуры заболеваний молочной железы коров выполнены в базовых хозяйствах на основании документов учета, клинического исследования коров и лабораторного исследования секрета молочной железы с помощью быстрых диагностических тестов – пробы с 2 %-ным раствором мастидина.
Для определения МАФАнМ (общей бактериальной обсемененности) использован мясопептонный агар (МПА). Для выделения и количественного учета бактерий взяты следующие среды: MRS – для лактобактерий; ГМС – для учета бифидобактерий; среда с азидом натрия – для энтерококков; среда для псевдомоносов; скошенный МПА – для выделения протея по Щукевичу; среда Эндо – для выделения и дифференциации энтеробактерий; среда Чапека – для выделения микроскопических грибов; МПА (после прогрева до 80ºС в течение 15 минут) – для спорообразующих аэробных бактерий; среда с бромтимоловым синим – для выделения иерсиний; магниевая среда – для накопления патогенных энтеробактерий; питательная среда – для выделения стрептококков; элективный солевой агар – для выделения стафилококков. Подсчет выросших колоний проводился в счетчике колоний. Учет результатов посева проведен через 18-24 часа для бактерий, а для грибов – до 5 дней.
При гематологических исследованиях уровень общего белка определялся рефрактометрическим методом, общее количество эритроцитов и лейкоцитов подсчитано в камере Горяева пробирочным методом, содержание гемоглобина определено гемометром Сали. Рассчитана лизоцимная активность сыворотки крови по отношению к Micrococcus Lysodeicticus , бактерицидная активность по отношению к Escherichia coli – по методике, разработанной М.П. Неустроевым, В.И. Малышевой [167].
