рых тканей организма. В целом за последние 15-20 лет спектр изученных полиморфных систем белков у крупного рогатого скота практически не расширился, т.к. для практического использования их в качестве генетических маркеров существующего набора белков вполне достаточно, а изучение функциональных особенностей тех или иных аллельных вариантов требует очень больших усилий. Большое число работ в последние годы посвящено исследованию генетической обусловленности аллельных и неаллельных вариантов отдельных ферментов и показано, что фенотипические изменения белков могут быть вызваны как заменой одного нуклеотида, в результате чего происходит незначительное изменение аминокислотного состава белка, так и изменений, затрагивающих до 30% триплетов и соответственно очень существенного изменения аминокислотного состава фермента.
Центральным вопросом в проблеме полиморфизма белков является изменение активности изоферментов, что может очень существенно отразиться на тех или иных физиологических процессах. Такие исследования проведены на трансферринах, церулоплазмине и амилазе. Выяснено, что медленно движущиеся фракции трансферрина (при электрофорезе) имеют больший положительный заряд. Полагают, что они лучше приспособлены к образованию комплекса Tf<>Fe, что способствует удалению избыточного железа из тканей. Трансферрины быстрого типа характеризуются большим отрицательным зарядом и они более склонны к диссоциации комплекса Tf¢>Fe, т.е. легче отдают железо тканям и тем самым способствуют его накоплению в тканях (Е.К.Меркурьева, 1977).У коров костромской породы самым насыщенным ионами железа был трансферрин генотипа ТЕОО. У черно-пестрого скота аналогичную роль играл TAD. В работе А.Д.Комиссаренко, Л.С.Жебровского и В.Л.Долгачева (1988) изучалась концентрация трансФеррина в зависимости от генотипа по локусу Tf. У коров айрширской породы наибольшую концентрацию трансферрина
| Таблица 2. Основные крупного рогатого | полиморфные скота (по | системы крови и молока Е.К.Меркурьевой, 1977) |
|---|---|---|
| Ковь | О | |
| Гемоглобин | | Hb | | A,B,C,D,X,Khi |
| Преальбумин | [Pal | |AB |
| крови | ||
| Постальбумин сыворотки крови | РА(Ра) | F,S |
| Aosta,H,N | ||
| Церулоплазмин | ||
| Амилаза. | A,B,C | |
| Кислая фосфотаза | Е | А,В |
| Карбоангидраза | ||
| Каталаза | ||
| крови | ||
| Эстераза эритроцитов | | Esc | | F,S |
| эритроцитов | РСМ | А,В |
| [Сукцинатдегидрогенаа | | | | A,B,C,D |
| дегидрогеназа | cee [ge Сра | | А,В |
| Лактатдегидрогеназа | ||
| Малатдегидрогеназа | |Ма| | |
| Молоко | О | НИ |
| лактоглобулин | ||
| -лактоглобулин | ||
| аз-казеин | ||
| казеин | ||
| -казеин | ||
| [пактоферрин | TT |
имеют генотипы ТЁАЕ (2,466 г%), самую низкую - животные с генотипом Tf£DD (1,158 г%). Коровы с генотипами TfAD и TfDE по уровню трансферрина незначительно уступали животным с генотипом TfAE. У черно-пестрого скота низкая концентрация трансферрина выявлена у коров с генотипом ТЁАА (1.276 г%). Несколько выше она в сыворотке животных с генотипом ТЯ)
Установлено, что неодинаковая активность церулоплазмина также обусловлена разными генотипами. Наиболее высокой эта активность была у генотипа СрВВ, низкая — у генотипа СрАА и промежуточная у генотипа CpAB. В сыворотке крови животных с генотипом СрАА содержалось больше меди, чем у животных с генотипом СрАВ. Гетерозиготы по локусу церулоплазмина обладают более высокой оксидазной активностью, чем гомозиготы. По другим данным самая высокая оксидазная активность была у животных с генотипом СрАА.
При изучении активности амилазы у швицкого скота разных генотипов по данному ферменту оказалось, что активность её во все сезоны года у коров с генотипом АтВВ выше, чем у животных с генотипом AmCC и АтВС. У коров гомозиготных генотипов содержание общего белка в сыворотке крови было выше, чем у гетерозигот AmBC.
Аналогичные данные получены при изучении активности щелочной фосфотазы. Животные с генотипом PpSO превосходили по активности фермента животных с генотипом PpSS. Материалов, подтверждающих связи отдельных аллелейи генотипов полиморфных белковых систем с устойчивостью к 60лезням не много. В основном они касаются устойчивости к маститу (Э.К.Бороздин, К.В.Клееберг, Г.Я.Зимин, 1993). Однако, имеются некоторые сообщения, касающиеся и других вопросов.
По данным Р.М.Шмидта и Г.И.Калачнюк (1983) телята, гомозиготные по TfAA и TFDD оказались менее устойчивы к расстройствам желудочно-кишечного тракта и бронхопневмонии, чем гетерозиготы TIDE и TfAE. Животные гетерозиготных генотипов отличались более высоким уровнем ДНК и РНКв крови, содержанием трансферринов и общего белка сыворотки, а также среднесуточным приростом живой массы (906 г. у DE, 830 г. у ADи 747 г.у DD).
В.Е.Митютько (1990) установил, что у черно-пестрых и айрШирских животных живая масса в период первой лактации была наивысшей, когда в генотипе имелись аллель Т#А, и особенно это выражено у гомозиготных особей с TFAA. Достоверны различия По живой массе между генотипами TAA и ТОО (Р<0,05). У ко-
