Иммунитет крупного рогатого скота: практический подход к иммунологии и вакцинологии

ПРОТОЗОЙНЫЕ ПАТОГЕНЫ, ПРЕДСТАВЛЯЮЩИЕ ПЕРВОСТЕПЕННУЮ ВАЖНОСТЬ

В
Инфицированный бык
ai
\ NW
х к У
м . oY WAN
a и м
1} os
Guy a =
o Фе an ый
Ш ) ПЕРЕДАЧА ев *
ви» SS) ПОЛОВЫМ 1
S&S oO ПУТЕМ a i
f р al С
T foetus в р = T. foetusв
шейке матки Инфицированная корова слизистой
NS препуция
5 a
tx Gre
\ _ №
\ ) _ N
\ “Send, |
}] Г \ |
—
|

РИСУНОК 8. Бык служит резервуаром Tritrichomonas foetus, который передается корове во время спаривания. !Инфицированные коровы могут также передавать микроорганизм неинфицированным быкам. aО———————9=9=8щ®щ—Й[——)—————————————`По материалам Collahntes-Fernahndez et al.” [>

SF Контроль трихомониаза осуществляется в первую очередьза счет недопущения смешения инфицированного и интактного скота.

Методиками выбора для диагностики инфекции у отдельных животных являются посев и ПЦР после инкубации образца в селективной среде. Инфицированных быков следует — выбраковать; выбраковка из стада является обязательной в некоторых штатах США после положительного диагноза T. foetus. Интактные быки, используемые в качестве замены в

инфицированных стадах, не должны контактировать с инфицированными коровами или нетелями. После гестации и отела коровы обычно считаются неинфицированными, хотя животные, являющиеся случайными носителями, остаются инфицированными. Для прекращения передачи при активных вспышках заболевания можно использовать искусственное осеменение. В Соединенных Штатах одна вакцина зарегистрирована как средство, способствующее снижению выделения микроорганизма, хотя ее эффективность в отношении снижения клинических признаков была поставлена под сомнение; в Европе вакцина в настоящее время отсутствует.

ОБЕСПЕЧЕНИЕ БУДУЩЕГО. ТОНКАЯ НАСТРОЙКА РЕПРОДУКТИВНОГО ИММУНИТЕТА

На многих скотоводческих предприятиях репродуктивные патогены представляют собой серьезную проблему, и их элиминация или контроль имеет важное значение для здоровья животных и рентабельности. Основные вирусные патогены, BHV-1 и ВД KPC, являются широко распространенными вирусами, вызывающими аборты и другие репродуктивные синдромы. Если нет возможности контроля с помощью программ искоренения, одним из основных инструментов контроля заболеваний является вакцинация. В Европе имеются маркерные вакцины, позволяющие отличать животных, зараженных путем вакцинации, OT животных, зараженных естественным путем. Первичную вакцинацию рекомендуется проводить у молодых нетелей с последующей регулярной бустерной вакцинацией для поддержания защитного иммунного ответа против обоих патогенов. Вакцинация также является основным методом контроля лептоспироза крупного рогатого скота. Хозяинадаптированные штаммы патогена у крупного рогатого скота обычно приводят к скрытому заболеванию, в то время как серовары из окружающей среды обычно вызывают более тяжелые, острые синдромы заболевания, включая всплеск числа абортов. Оба типа штаммов чаще всего распространяются через контаминированные источники воды и пастбища. Таким образом, контроль за состоянием окружающей среды при наличии возможности также имеет решающее значение для контроля лептоспироза. Хотявирусоврепродуктивныхвакцинация можетвирусовбыть pigи eeboaaeraesLeptospira spp.,METOAOэто^Me не^SCHIP всегда^ON В верноOCHO BEARв отношении DCHDOAyIMBдругихHE репродуктивных патогенов, и таким образом ключевыми для репродуктивного здоровья и благополучия стада являются рациональные принципы биобезопасности.

КЛЮЧЕВЫЕ МОМЕНТЫ

• © BHV-1 индуцирует пожизненную латентную инфекцию после первичного инфицирования влюбом возрасте, в то время как ВД KPC приводит к пожизненной персистирующей инфекции после инфицирования плода.

• Я] Как ВД KPC, так и BHV-1 обладает способностью пересекать плаценту и инфицировать растущий плод, что приводит к прерыванию стельности на ранних сроках или негативным последствиям для плода при COMPARE СТЕЛЬНОСИЕ .

• Е] 4) АбортВакцинацияможет бытьпротив следствиемВД ВРУ. В основном зараженияПраспедует ВД KPC на Ape любой Цени: стадии профилакт гестац и и.ку ВД КРС-ассоциированных заболеванийу телят (респираторных заболеваний крупного рогатого скота и неонатальной диареи), и профилактику ВД КРС-индуцированных заболеваний репродуктивной системы, включая гибель плода и все прочие последствия инфицирования плода.

• Е] Контроль BHV-1 и ВД KPC осуществляется в основном посредством региональных мероприятий по искоренению или регулярной вакцинации.

• а ты вакцинация используется для устранения последствий вирусной инфекции, вакцинация должна Е]я рХк о ептоспироззяин-адаптированныентаминации нацеленакрупного лептоспирами, на профилактикурогатогосеровары передающимися инфицированияскотаLeptospiraчаще всего с мочой плодчастор а .спространяется животных-хозяев.приводят к бесплодиючерез окружающуюи субклиническомусреду при заболеванию, в TO время Kak серовары из окружающей среды чаще вызывают системное заболевание и аборты на поздней стадии гестации.

• Е] Изменение условий содержания является ключом к профилактике и ограничению последствий неоспороза, трихомониаза и кампилобактериоза крупного рогатого скота для репродуктивной системы, поскольку вакцины против этих заболеваний недоступны или имеют ограниченную эффективность.

• { Кампилобактериоз крупного рогатого скота характеризуется бесплодием, но также может вызывать аборт.

• ] Коровы могут абортировать вследствие неоспороза на любой стадии гестации, хотя чаще всего это происходит в середине и конце гестации.

• {BE Эффективного лечения неоспороза в настоящее время не существует.

• [Е] Контроль трихомониаза осуществляется в первую очередь за счет недопущения смешения инфицированного и интактного скота.

ПРОТОЗОЙНЫЕ ПАТОГЕНЫ, ПРЕДСТАВЛЯЮЩИЕ ПЕРВОСТЕПЕННУЮ ВАЖНОСТЬ

ССЫЛКИ

1. МомкЕем$ В, THIRY J, KIRTEN P, SCHYNTS Е, THIRY Е. Bovine herpesvirus 1 infection and infectious bovine rhinotracheitis. Vet Res 2007; 38(2):181-209. = : : Е —.

2. THIRYE. Clinical Virology of Ruminants. Paris: Editions du Point Veterinaire, 2007; 301.

3. CHASE CCL, FULTON RW, O'TOOLE D et al. Bovine : ret nae .

herpesvirus 1 modified live virus vaccines for cattle reproduction: Balancing protection with undesired effects. Vet Microbiol 2017; 206:69-77.

1. CROOK T, BENAVIDES J, RUSSELL G et al. Bovine 2 . .

herpesvirus 1 abortion: Current prevalence in the United Kingdom and evidence of hematogenous spread within the fetus in natural cases. J Vet Diagn Invest 2012; 24(4):662-670.. . . .

1. CHASE СС. The impact of BVDV infection on adaptive immunity. Biologicals 2013; 41(1):52-60.

2. Grooms DL. Reproductive losses caused by bovine viral diarrhea virus and leptospirosis. Theriogenology 2006; 66(3):624-628.

3. Момо7-ГАм7! CA, HIETALA SK, THURMOND MC, JOHNSON WO. Quantification, risk factors, and health impact of natural congenital infection with bovine viral diarrhea virus in dairy calves. Am J Vet Res 2003; 64(3):358-365.

4. MuNoz-Zanzi СА, THURMOND MC, HIETALA SK. Effect of bovine viral diarrhea virus infection on fertility of dairy

5. WALZheifers.PH, TheriogenologyСмЕМ$ МО, 2004; 61(6):1085-1099.Корммс SP et al. Evaluation of : . : о , :

reproductive protection against bovine viral diarrhea virus and bovine herpesvirus-1 afforded Бу annual revaccination with modified-live viral or combination modified-live/killed viral vaccines after primary vaccination with modified-live viral vaccine. Vaccine

1. VANNIER2017;and the 35(7):1046-1054.impact P, =.of their|, Le POTIERuse on diagnosis MF et al. andes prophylactic: measures. In: PASTORET PP, LOMBARD М, SCHUDEL АА, editors. Animal Vaccination Part 2: Scientific, Economic, Regulatory, and Socio-Ethical Aspects. Paris: OIE Scientific and Technical Review, 2007: 351-372 , у |

2. ScHynts F, LEMAIRE М, Ros С, BELAK $, THirY Е. Establishment of latency associated with glycoprotein E (gE) seroconversion after bovine herpesvirus 1 infection у net. . ss ‘ in calves with high levels of passive antibodies lacking gE antibodies. Vet Microbiol 2001; 82(3):211-222.

3. NEWCOMER BW, CoFIELD LG, WaLz PH, СмЕМ$ MD. , би . И

Prevention of abortion in cattle following vaccination against bovine herpesvirus 1: A meta-analysis. Prev Vet Med 2017; 138:1-8.

— 13. Мемсомев ВМ! WALZPH, СМЕМ$ МО, WILSON АЕ. Efficacy . ar р ae

of bovine viral diarrhea virus vaccination to prevent reproductive disease: a meta-analysis. Theriogenology 2015; 83(3):360-365.

1. MarTINsS С, LILENBAUM. W.и Control of. bovine. leptospirosis: Aspects for consideration in a tropical environment. Res Vet Sci 2017; 112:156-160.

2. SANHUEZA JM, WILSON PR, BENSCHOP J, COLLINSEMERSON JM, HEUER C. Meta-analysis of the efficacy of Leptospira serovar Hardjo vaccines to prevent urinary shedding in cattle. Prev Vet Med 2018; 153:71-76.

3. ADLER B. Vaccines against leptospirosis. Curr Top Microbiol Immunol 2015; 387:251-272.

4. Мен! AN, РАМЕТТО PH, KASTELIC J, Сово ER. A review of sexually transmitted bovine trichomoniasis and campylobacteriosis affecting cattle reproductive health. Theriogenology 2016; 85(5):781-791.

5. neosporosis.MCALLISTER MM.Vet ClinDiagnosisNorth AmandFoodcontrol Anim Practof bovine2016; у

32(2):443-463.

1. HORCAJO P, REGIDOR-CERRILLO J, AGUADO-MARTINEZ A, HEMPHILL A, ORTEGA-MoRA LM. Vaccines for bovine neosporosis: current status and key aspects for development. Parasite Immunol 2016; 38(12):709-723.

2. COLLANTES-FERNANDEZ SCH NITTGERARES G. L,TrichomonЕСО. P a s.rasiticЕ, РоВТIn:;вProtozoaМС, ORTEGA-MorAof Farm AnimalsLM,М, and Pets. Cham: Springer, 2018; 313-388.

3. OnpRAK JD. Tritrichomonas foetus prevention and control in cattle. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2016; 32(2):411-423 . у