Таблица 35 ‒ Биохимические показатели крови
| Показатели | Группа | ||
|---|---|---|---|
| контрольная | 1опытная | II опытная | |
| Глюкоза, моль/л | 4,2 ± 0,04 | 4,4 ± 0,44 | 4,4 ± 0,0 ±2 |
| Общий белок, г/л | 8,09 ± 0,59 | 8,83 ± 0,07 | 8,89 ± 0,08 |
| Альбумины, % | 36,06 ± 2,59 | 37,05 ± 1,38 | 38,74 ± 0,13 |
| α-глобулины, % | 11,75 ± 0,22 | 12,57 ± 0,61 | 12,84 ± 0,96 |
| β-глобулины, % | 19,50 ± 1,0 | 20,33 ± 1,19 | 21,96 ± 1,57 |
| γ-глобулины, % | 29,14 ± 0,16 | 30,05 ± 0,48 | 33,01 ± 3,15 |
| Коэффициент А/г | 0,59 ± 0,06 | 0,59 ± 0,04 | 0,57 ± 0,05 |
| Общий кальций, моль/л | 2,98 ± 0,01 | 3,05 ± 0,02* | 3,12 ± 0,01* |
| Фосфор неорганический, моль/л | 2,05 ± 0,009 | 2,11 ± 0,02 | 2,17 ± 0,003** |
| Лейкоциты ·1011/л | 12,7 ± 1,7 | 12,4 ± 3,44 | 11,6 ± 0,31 |
| Эритроциты ·1012/л | 6,0 ± 0,4 | 6,5 ± 0,2 | 6,6 ± 0,55 |
| Гемоглобин, г/л | 111,9 ± 2,73 | 121,6 ± 8,0 | 126,1 ± 7,6 |
| Насыщенность 1 эритроцита гемоглобином, пг | 17,3 ± 0,87 | 18,5 ± 2,08 | 20,8 ± 1,28 |
* – Р < 0,05; ** – Р < 0,01.
Количество лейкоцитов в крови телят второй опытной группы было меньше на 8,7% по сравнению с контрольными. Эритропоэтическая фракция более выражена у молодняка обеих опытных групп, показатели крови которых превосходили аналогичные контрольной группы на 0,5-0,6·1012 /л. Количество общего белка в крови животных первой и второй групп по сравнению с аналогичными показателями контрольной группы увеличилось соответственно на 0,74-0,8 г/л. Причем в альбумино-глобулиновой фракции общего белка наибольшее смещение в сторону возрастания глобулинов наблюдается в крови телят второй опытной группы, в меньшей степени – в первой.
Полученные результаты в целом свидетельствуют об активации метаболизма в организме животных, потреблявших рацион с добавлением глауконитового концентрата.
Использование глауконитового концентрата в рационе телок в дозе 200 мг/кг живой массы носило более выраженный анаболический характер течения обменных процессов в сравнении с дозировкой 100 мг/кг живой массы.
В таблице 36 приведены данные по содержанию тяжелых металлов в кале телят, которые показывают, что введение в рацион телят глауконитового концентрата в дозах 100 и 200 мг на 1 кг живой массы способствует выведению тяжелых металлов из организма животных по сравнению с контрольными в среднем на 17,28 и 32,7% соответственно. Наибольшие показатели по выводу тяжелых металлов из организма телят были у молодняка второй опытной группы, особенно по меди и ртути (+50 и +53,4%).
Таблица 36 ‒ Содержание тяжелых металлов (валовые формы) в кале телят, мг/кг
| Показатели | Группа | ||||
|---|---|---|---|---|---|
| контроль- ная | I опытная | ± к контроль- ной, % | II опыт- ная | ± к контроль- ной, % | |
| Свинец | 31 | 35 | + 12,9 | 38 | + 22,0 |
| Никель | 32 | 36 | + 12,5 | 38 | + 18,8 |
| Кадмий | 0,30 | 0,35 | + 16,7 | 0,39 | + 30,0 |
| Хром | 54 | 60 | + 11,1 | 75 | + 38,8 |
| Ртуть | 0,058 | 0,077 | + 32,8 | 0,089 | + 53,4 |
| Медь | 30 | 34 | + 13,3 | 45 | + 50, |
| Цинк | 69 | 84 | + 21,7 | 85,8 | + 24,3 |
| Мышьяк | 5,42 | 6,36 | + 17,3 | 6,75 | + 24,5 |
| В среднем по всем металлам, % | – | – | + 17,28 | – | + 32,7 |
Активность радионуклидов цезия137 и стронция90 была очень низкой и не превышала в рационах животных 1,2-0,9 беккерелей соответственно (допустимое содержание цезия – 600 Вк/кг и стронция – 60 Вк/кг). Анализ показателей активности радионуклидов в монокорме и кале (таблица 37) показывает, что при введении глауконитового концентрата в корм телятам процент активности снизился в опытных группах по сравнению с контрольной – от 8,4 до 16,7% по цезию137 и от 11,1 до 22,2% по стронцию90 .
Таблица 37 ‒ Показатели активности радионуклидов цезия137 и стронция90 в кормах и кале подопытных телят, Вк/кг
| Наименование | Группа | |||||
|---|---|---|---|---|---|---|
| контрольная | I опытная | II опытная | ||||
| Cs 137 | Cr 90 | Cs 137 | Cr 90 | Cs 137 | Cr 90 | |
| Монокорм (сено, силос, мука, овес, жмых, соль, мел) | 1,2 | 0,9 | 1,2 | 0,9 | 1,2 | 0,9 |
| Кал | 0,1 | 0,1 | 0,2 | 0,3 | 0,3 | 0,2 |
| % снижения активности | 8,3 | 11,1 | 16,7 | 33,3 | 25,0 | 22,2 |
| ± к контрольной, % | – | – | + 8,4 | + 22,2 | + 16,7 | + 11,1 |
| ± в среднем обе опытные груп- пы к контрольной, % | – | – | 14,6 | |||
В целом, применение глауконитового концентрата в дозах 100-200 мг/кг живой массы способствует снижению активности радионуклидов в опытных группах телят по сравнению с контрольными на 14,6%.
Микрофлора животного, в частности микрофлора желудочно-кишечного тракта, выполняет для организма важные метаболические функции: влияет на всасывание в тонком кишечнике, ее ферменты участвуют в деградации и обмене желчных кислот, образует непредельные жирные кислоты в пищеварительном тракте. Под влиянием микрофлоры идет катаболизм некоторых пищеварительных ферментов: инактивируются и распадаются энтерокиназа, щелочная фосфотаза. В толстом кишечнике идет распад некоторых иммуноглобулинов, выпол-
нивших свою функцию и т.д. Микрофлора желудочно-кишечного тракта участвует в синтезе многих витаминов, необходимых для животного. Ее представители (например, ряд видов бактероидов, анаэробные стрептококки и др.) своими ферментами способны расщеплять клетчатку, пектиновые вещества, неусваиваемые организмом самостоятельно.
Определение мезофильно-аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов проводилось на мясо-пептонном агаре; молочно-кислых бактерий на лактобакагаре; бактерий группы кишечной палочки на среде Эндо; стафилококков – на элективно-солевом агаре; энтерококков – на Энтерококкагаре; дрожжевых и плесневых грибов – на агаре Сабуро; клостридий – на среде ВильсонаБлера; сальмонелл – на висмутсульфит агаре. Посевы осуществлялись из разведений 10-1 -10-7 в количестве 0,1 мл.
Результаты бактериологического анализа образцов кала подопытных животных в возрасте 9 месяцев представлены в таблице 38.
Из данных таблицы видно, что в исследуемых образцах кала телят в обеих опытных группах не обнаружены энтерококки. Видимо, бифидо- и лактобактерии экранируют от некоторых видов микроорганизмов слизистую оболочку кишечника, лимитируя доступ их к поверхности мембран эпителиоцитов и к рецепторам эпителиальных клеток, на которых микробам необходимо зафиксироваться.
Таблица 38 ‒ Состав и концентрация микрофлоры желудочно-кишечного трак- та телят
| Группы микроорганизмов, КОЕ/г | Норма (по Петров- ской В.Г.,1976) | Группы | ||
|---|---|---|---|---|
| Контрольная | I опытная | II опытная | ||
| КМАФАнМ * | 107-109 | 109 | 109 | 109 |
| Бифидобактерии | 107-1010 | 107 | 107 | 109 |
| Лактобактерии | 104-107 | 105 | 105 | 105 |
| Энтерококки | 106-107 | 105 | не обнаруж. | не обнаруж. |
| Клостридии | 104-105 | не обнаруж. | не обнаруж. | не обнаруж. |
| E. Coli типичные | 107-108 | 105 | 103 | 103 |
| Стафилококки (сапрофит- ный, эпидермальный) | 103-104 | 103 | 103 | 103 |
| Стафилококк золотистый | 103-104 | не обнаруж. | не обнаруж. | не обнаруж. |
| Другие условно-патогенные энтеробактерии** | 0-105 | не обнаруж. | не обнаруж. | не обнаруж. |
| Плесневые грибы | 103 | 104 | 104 | 104 |
| Неферментирующие бак- терии*** | 0-105 | не обнаруж. | не обнаруж. | не обнаруж. |
| Зеленящие стрептококки – Viridans, mitis, salivarius | 107 | 104 | 107 | 108 |
* КМАФАнМ – мезофильно-аэробные и факультативно-анаэробные микроорганизмы;
** – представители родов Klebsiella, Enterobacter, Hsfnia, Serratia, Proteus, Morganella, Providecia, Citrobacter и др. энтеробактерии;
*** – Pseudomonas, Acinetobacter и др. Следовательно, резистентность к колонизации патогенной микрофлорой создает в основном комплекс полезных строго анаэробных микроорганизмов,
