Увеличение концентрации АГЛ ожидаемо вело к уменьшению способности рубцовой жидкости ингибировать его активность, что отразилось в инактивирующей эффективности в 16% и 21% при 10° и 10“ М С12-ГСЛ, соответственно. Как и в выше описанных случаях, делетированный по гену, ответственным за синтез рецепторного белка (в данном случае LasR) штамм E.coli pAL106 также не реагировал изменением свечения ни на один из используемых аналитов и в опытных пробах уровень люминесценции был неотличим от такового в контрольных пробах.
Таким образом, была обнаружена способность рубцовой жидкости осуществлять инактивацию АГЛ, что результируется в снижении интенсивности реакции использованных бактериальных биосенсоров. Причем ингибирование по всей видимости не связано с длиной алкильного хвоста в молекуле ГСЛ, а полученные различия обусловлены неодинаковой чувствительностью использованных в работе биосенсоров. Тем не менее, развитие данного подхода позволит осуществлять регулирование активности нежелательной микрофлоры путем избирательного или тотального подавления их коммуникационных сигналов,а также позволяетс другой стороны взглянуть на характер взаимоотношений в паре микроорганизм— макроорганизм.
Данное исследование выполнено при поддержке гранта Российского научного фонда (проект№ 16-16-10048).
Список использованных источников
Abdl-Rahman, М. А., Sawiress,в Е. A., and Abd El-Aty, A. M., "Effect of sodium lauryl sulfate-fumaric Acid coupled addition on the in vitro ramen fermentation with special regard to methanogenesis," Vet.Med.Int., Vol. 2010, 2010, pp. 858474. 2. Abou Akkada, A. R. Some observation on the nitrogen metabolism of rumen proteolitic bacteria/ А. В. Abou Akkada, Т. H. Blackburn // J. Gen. Microbial. 1963. - V.31,N 3. -Р. 461-469. 3. Aguiar, В. and Wink, M., "Do naive ruminants degrade alkaloids in the rumen?,” J.Chem.Ecol., Vol. 31, No. 4, 2005, pp. 761-787. 4. Alves, 5. P., Maia, М. R., Bessa, В. J., Fonseca, A. J., and Cabrita, A. R., "Identification of C18 intermediates formed during stearidonic Acid biohydrogenation by rumen microorganisms in vitro," Lipids, Vol. 47, No. 2, 2012, pp. 171-183. 5. Amin, М. К. and Onodera, R., "Effects of salinomycin and vitamin B(6) on in vitro metabolism of phenylalanine and its related compounds by ruminal bacteria, protozoa and their mixture," J.Gen.Appl.Microbiol., Vol. 44, No. 1, 1998, рр. 1-9. 6. Annison, Е. Е. Portal blood analysis in the study of the absorption of ruminal fermentation produces / В. Е. Annison, К. J. НИ, О. Lewis // Biochem. J. — 1955. - У. ТОК 7. Annison, Е. Е. Ruminal ammonia formation in relation with varions diets / Е. Е. Annison, М. J. Chalmers, $. В. Marschall, В. L. Synge // J. Agr. Ski. — 1954. - У. 44. -Р. 270-273. . 8. Annison, Е. F. Studies on the portal blood of sheep. Absorption of volatile fatty acids from the rumen ofthe sheep / Е. Е. Annison, К. J. Hill, О. Lewis // Biochem. J. - 1957. - У. 66, N 4. -Р. 592-599. 9. Baar, С. Eppinger,M., Raddatz, G., Simon, J., Lanz, С, Klimmek, О. Nandakumar, R., Gross, R., Rosinus, A., Keller, H., Jagtap, P., Linke, B., Meyer, F., Lederer, H. & Schuster, S.C. 2003. Complete genome sequence and analysis of Wolinella succinogenes. Р. Natl. Acad. Sci. United States of America 100: 11690— 11695. 10. Bach, A., Calsamiglia, S., and Stern, M. D., "Nitrogen metabolism in the rumen," SHBG Sth WAAL EE: Sep 2005. ЕЕ 11. Bal, M. A. Stage of maturity, processing, and hybrid effects on ruminal in situ rnnim.erFeed Sci. GiandкеTechnology. мон—и2000. — У. ее86, М 1-2.в-Р.a83-94, BAG tShinners/
Bauman, D.E., Lock, A.L., Corl, B.A., Ip, C., Salter, А.М. & Parodi, P.M. 2005. Milk fatty acids and human health: potential role of conjugated linoleic acid and trans fatty acids. In: Serjrsen К. Hvelplund Т. and Nielsen М.О. (Eds.), Ruminant Physiology: Digestion, Metabolism and Impact of Nutrition on Gene Expression, ImmunologyAcademic Publishers.and Stress, pp. 529-561. Wageningen, The Netherlands: Wageningen
Bayer, В.А. & White, В.А. 2012. Phage-bacteria relationships and CRISPR elements revealed by a metagenomic survey of the rumen microbiome. Environ. Microbiol. 14: 207-227. 152
- Bayer, $., Kunert, A., Ballschmiter, М. & Greiner-Stoeffele, T. 2010. Indication for a new lipolytic enzyme family: isolation and characterisation of two esterases from a metagenomic library. J. Mol. Microb. Biotech. 18: 181-187. 15. Belanche, A., Doreau, M., Edwards, J. Е. Moorby, J. M., Pinloche, Е., and Newbold, С. J., "Shifts in the rumen microbiota due to the type of carbohydrate and level of protein ingested by dairy cattle are associated with changes in rumen fermentation," J.Nutr., Vol. 142, No. 9, 2012, pp. 1684-1692. 16. Belkin S. Microbial whole-cell sensing systems of environmental pollutants. // Curr Opin Microbiol. — 2003. — No.6(3). - P.206-212. 17. Beloqui, А. Pita, М. Polaina, J., Martinez-Arias, А. Golyshina, O.V., Zumarraga, M., Yakimov, M.M., Garcia-Arellano, H., Alcalde, M., Fernandez, V.M., Elborough, K., Andreu, J.M., Ballesteros, A., Plou, F.J., Timmis, K.N., Ferrer, М. & Golyshin, > P.N. 2006. Novel polyphenol oxidasemined from a metagenome expression library of bovine rumen: biochemical properties, structural analysis, and phylogenetic relationships. J. Biol. Chem. 281: 22933-22942. 18. Benson, A.K., Kelly, S.A., Legge, R., Ma, Е., Low, 8.J., Kim, J., Zhang,M., Oh, р L Nehrenberg, D., Hu, K., Kachman, S.D., Moriyama, E.N., Walter, J., Peterson, DA & Pomp D. 2010. Individuality in gut microbiota composition is a complex polygenic trait shaped by multiple environmental and host genetic factors. P. Natl. ‘Acad. Sci. United States of America. 107: 18933-18938. 19. Bera-Maillet, C., Mosoni, P., Kwasiborski, А., Suau, F., Ribot, У. & Forano, В. 2009 Development ba RT-qPCR method for the quantification of Fibrobacter succinogenes $85 glycoside hydrolase transcripts in the rumen content of gnotobiotic and conventional sheep. J. Microbiol. Meth, 77: 8-16. 20. Berg Miller,M.E., Antonopoulos, Р.А. Rincon,M.T., Band,M., Bari, А. Akraiko, T., Hernandez, А. Thimmapuram, J., Hentissat, В. Coutinho, РМ. ВОГО 1. Jindou, 5. ЕЙ В., Flint, Н.]., Bayer, Е.А; &White, В.А. 2009. Diversity and strainspecificity of plant cell wall degrading enzymes revealed by the draft genome of Ruminococcus flavefaciens FD-1. PLoS One 4, 6650. 21 Е МШегМЕ., Yeoman, С.У., Chia, N., Tringe, S.G., Angly, F.E., Edwards, Е. А Flint. HJ. Lamed R., Bayer, Е.А. &White, В.А. 2012. Phage—bacteria relationships = CRISPR elements revealed by a metagenomic survey of the rumen microbiome. Environ. Microbiol. 14: 207—227. 22. Blank, R., Rolfs, J. P., Sudekum, К. Н., Frohlich, A. A., Marquardt, В. R., and Wolffram,Ce,БД $.79. "Effects ВИof chronic "ingestiongearЯ of ochratoxin., YongVol.a 51,on №.blood23, levels2003, and= рр. 3 Bloomfield К. A. Ruminal pH and absorption of ammonia and VFA / В. A. BloomfieldА Sei ~1963.—V.22.=P. 21. 24. Booes, Е Carbohydrate metabolism in the ramen / E. Boggs, H. H. Williams, W. с :а Cornellт _ 1959. - У. a 49, N 3. -Р. 303-319. ейВы м ао мiz forrajerooyeen diferentestial le ee > ЕЛЬ Te Stl Ce
