Развиваем сельское хозяйство вместе С заботой о вашем хозяйстве
Товары, услуги и экспертная поддержка — в одном кабинетеУсловия и документы
← База знаний / Ветеринария

Саркоцистоз крупного рогатого скота

В. А. Салимов, В. И. Абакумов, Р. Р. Гасанов, О. С. Салимова · 2013 · Россия · Россия

Распознано из скана. Сверяйте числовые данные с оригиналом PDF.. Историческое издание: сведения приведены по источнику 2013 года.

Войти и скачать PDF ↓

болезней с/х животных : мат. науч. конференции. – Вологда, 1986. – С. 31-32.

  1. Шелякин, И. Д. Трематодофауна копытных животных в Воронежской области и биохимические показатели крови коров при фасциолезе / И. Д. Шелякин, В. Н. Кузьмичева // Российский паразитологический журнал. – 2008. – №3. – С. 36-40.

  2. Шелякин, И. Д. Метаболические изменения в организие крупного рогатого скота при трематодозах / И. Д. Шелякин, В. Н. Кузьмичева // Российский паразитологический журнал. – 2008. – №4. – С. 68-73.

  3. Шемарова, И. В. Распространение саркоцистоза среди овец и рогатого скота / И. В. Шемарова, Е. В. Лаковникова // Сб. науч. тр. ЛВИ. – Л., 1987. – Т. 91. – С. 61-65.

  4. Шишков, В. П. Саркоспоридии в сердечной мышце коров / В. П. Шишков // Тр. Московской ветеринарной академии. – 1958. – Т. 22, вып. I. – С. 64-72.

  5. Шульц, Р. С. Основы общей паразитологии / Р. С. Шульц, Е. В. Гвоздев. – М. : Наука, 1970. – Т.1. – С. 492.

  6. Якубовский, М. В. Особенности иммунитета и профилактика фасциолёза крупного рогатого скота / М. В. Якубовский, Н. Ю. Щемелева // Ветеринария. – 2011. – №2. – С. 34-38.

  7. Якубовский, М. В. Разработка ИФА тест-системы для диагностики фасциолеза крупного рогатого скота / М. В. Якубовский, А. П. Лысенко, И. А. Трус // Научные основы производства ветеринарных биологических препаратов : мат. Международной научно-практической конф. – Щелково, 2007. – С. 381-385.

  8. Ястреб, В. В. Штаммы Echinococcus granulosus / В. В. Ястреб // Российский паразитологический журнал. – М., 2010. – №3. – С. 12-26.

  9. Ярован, Н. И. Активность некоторых ферментов сыворотки крови овец при экспериментальном саркоцистозе / Н. И. Ярован / Московская вет. академия им. К.И. Скрябина. – М., 1983. – С. 7.

  10. Afaf, L. Experimental tansmission of sarcocystis from cattle to mice / L. Afaf // Trop. Anim. Health. Product. – 1974. – Vol. 6, №1. – P. 58-59.

  11. Altiner, A. Study of serum growth hormone, 3,5,3'-triiodothyronine, thyroxine, total protein and free fatty acids levels during parturition and early lactation in ewes / A. Altiner // Bull. Veter. Inst, in Pulawy. – 2006. – Vol. 50, №1. – P. 85-87.

  12. Arru, Е. Diffusione е distribuzione dei Saroosporidi negli animali da macello in Sardegna / Е. Arru, А. Сosseddu // Clin. Vet. – 1977. – an. 99. – N7. – P. 322-327.

  13. Ashrafi, K. Evidence suggesting that Fasciola gigantica may be the most prevalent causal agent of fascioliasis in the Northern Iran / K. Ashrafi, J. Massoud, K. Holakuei Naeini [et al.] // Iranian J. Publ. Health. – 2004. – Vol. 33, N4. – Р. 31-37.

  1. Ahmadi, N. Characterization of Echinococcus granulosus isolates from human, sheep and camel in Iran / N. Ahmadi, A. Dalimi // Infect. Genet. Evol. – 2006. – Vol. 6. – P. 85-90.

  2. Azlaf, R. Epidemiological study of the cystic echinococcosis in Morocco / R. Azlaf, A. Dakkak // Vet. Parasitol. – 2006. – Vol. 137. – P. 83-93.

  3. Baz, A. Complexity and function of cytokine responses in experimental infection by Echinococcus granulosus / A. Baz, G. M. Ettlin, S. Dematteis // Immunobiology. – 2006. – Vol. 211. – P. 3-9.

  4. Baczynski, Z. Differential diagnostics of mixed infections with bovine pneumotropic viruses / Z. Baczynski, H. Majewska, D. Skulmowska [еt al.] // XX Wold. Vet. Congress. – 1975. – N1. – P. 563.

  5. Barrows, P. L. Experimental sarcocystis suicanis infections Diseases in growing pigs / P. L. Barrows, A. R. Frestwood, C. E. Green // Am. J. Vet. Rec. – 1982. – Vol. 43, N8. – P. 1409-1412.

  6. Beaver, P. C. Sarcocystis in man: a review and report of five cases / P. C. Beaver, R. K. Gadgil, P. Morera // CRC Press. – 1979. – Vol. 41, N6. – P. 466-478.

  7. Bobek, S. Reverse-triiodothyronine synthesis and role / S. Bobek // Med. Veter. – 2006. – Vol. 62, №12. – P. 1362-1365.

  8. Capuano, F. Cystic echinococcosis in water buffaloes: Epidemiological survey and molecular evidence of ovine (Gl) and buffalo (G3) strains / F. Capuano, L. Rinaldi, M. P. Maurelli // Vet. Parasitol. – 2006. – Vol. 137. – P. 262-268.

  9. Carter, G. R. Pastreurellosis. Pasteurella multocida and Pasteurella haemolytica / G. R. Carter // Advancess in Vet. Sciences. – 1967. – Vol. 11, N2. – P. 321-379.

  10. Chauhan, P. P. On the gametagonic development of bubaline Sarcocystis fusiformis in pups an experimental study / P. P. Chauhan, B. B. Bhatia, R. D. Agrawal [et al.] // India J. Exp. Biol. – 1977. – Vol. 15, N6. – P. 492494.

  11. Clinical considerations 2 cases of hepatic fascioliasis. Importance of the examinations / J. Sapunar, R. Latorre, M. Guerra, C. Defilippi // Bol – Chil – Parasitol. – 1992. – Vol. 47, N3, 4. – P.70-76.

  12. Cruz-Reyes, A. Echinococcus granulosus from Mexican pigs in the same strain as that in Polish pigs / A. Cruz-Reyes, C. C. Constantine, A. C. Boxell [et al.] // J. of Helminthol. – 2007. – Vol. 81. – P. 287-297.

  13. Daneshbod, Y. M. D. A Flower-like parasite with bladed petals / Y. M. D. Daneshbod // Arch. Pathol. Lab. Med. – 2004. – Vol. 128. – P. 939-40.

  14. Dangschies, A. Growth performance, meat quality and activities of glycolytic enzymes in the blood and muscle tissue of calves infected with Sarcocystis cruzi / А. Dangschies, J. Hintz, М. Henning // Veter. Parasitol. – 2000. – Vol. 88, N1/2. – P. 7-16.

  1. De Ritis, F. Atfivita transaminasiche sel siero nell apetite virale / F. De Ritis, M. Coltorti, G. Giusti // Bolletino della. Soc. Ital. boil. Sper. – 1955. – T. 31, N5. – P. 394.

  2. Drost, S. Lum Sarcosporidien vorkommen pei Rendern eines Sanitats Schlachtbetriebes / S. Drost, H. Brackmann // Metatsk. Veterinarmed. – 1978. – Vol. 33, N5. – P. 175-178.

  3. Dubey, J. P. Development of the sheep canid cycle of Sarcocystis tehella / J. P. Dubey, S. A. Speer, G. Callis [et al.] // Can. J. Zool. – 1982. – Vol. 60, N10. – P. 2464-2477.

  4. Eisenstein, R. Sarcosporidiosis in man and animals / R. Eisenstein, I. Innes // Veterinary Reviews and annotations. – 1956. – Vol. 2. – P. 61-78.

  5. Frelier, P. F. Bovine sarcocystosis: pathologic features of naturally occurring infection with S. cruzi / P. F. Frelier, J. G. Mayhew, R. Pollock // Am. J. Veter. Res. – 1979. – Vol. 40, N5. – P. 651-657.

  6. Gestrich, R. Licht-und elektronenmikroskopische Untersuchungen an Cysten von Sarcocystis fusiformis in der Muskulatur von Kalbern nach experimenteller Inbektion mit Oocysten und Sporocysten der groben Form von Is o- spora bigemina der Katre / R. Gestrich, H. Mehlorn, A. O. Hydorn // Zbl. Bakt. Hyg. J. Abt. Orig. A. – 1975. – S. 261-276.

  7. Ghorbanpoor, M. Evaluation of an ELISA for the diagnosis of sarcocystosis in water buffaloes / M. Ghorbanpoor, H. Hamidinejat, L. Nabavi [et al.] // Bull. Veter. Inst. in Pulawy. – 2007. – Vol. 51, N2. – P. 229-231.

  8. Heydorn, A. Licht-und elektronen – mikroskopische Untersuchungun an Cysten von Sarcocystic fusiformis in der Muskulatur von Kalbern nach experimenteller Infektion mit Oocysten und Sporocycten von Isospora hominis Railliett I Lucet, 1891. 2. Die Feinstruktur der Metrocycen und Merozoiten / A. Heydorn, N. Mehlhorn, R. Gesrich // Zbl. Bakteriol. Parasitenk, Infectionskrank u. Hyg. – 1975. – Abt. 1. – S. 373-392.

  9. Houghton, S. B. Bacteria associated with calf pneumonia and their effect on gnotobiotic calves / S. B. Houghton, R. N. Gourlay // Res. in Veter. Sc. – 1984. – Vol. 37, N2. – P. 194-198.

  10. Huh, S. Intestinal protozoan infections and echinococcosis in the inhabitants of Dornod and Selenge, Mongolia / S. Huh, J. Yu, J. Kim // Korean J. Parasitol. – 2006. – Vol. 44, № 2. – P. 171-174.

  11. Johnson, A. L. Which is the most sensitive and specific commercial test to diagnose Sarcocystis neurona infection (equine protozoal myeloencephalitis) in horses? / A. L. Johnson // Equine veter. Educat. – 2008. – Vol. 20, N3. – P. 166-168.

  12. Juyal, P. D. Heavy sarcocystosis in the ocular musculature of cattle and buffaloes / P. D. Juyal, B. N. Sahay, P. S. Srivastava [et al.] // Veter. Res. Commun.– 1982. – Vol. 5, N4. – P. 337-342.

  13. Kamenetzky, L. Several strains of Echinococcus granulosus infect livestock and humans in Argentina / L. Kamenetzky, A. M. Gutierrez,

Оглавление

Текст, тема и отступы ↑

AgroSota всегда под рукой

Выберите своё приложение AgroSota

Один аккаунт на сайте и в приложении. Light и Full можно установить рядом.

Знакомый сайт в приложении. Для привычной работы с AgroSota.

Версия 1.1.4

Мобильные экраны и кабинеты клиента и агента.

Версия 1.2.6 · Тестовая

Для Android 10 и новее · Нужен интернет

Установка и обновления
  1. Скачайте выбранное приложение.
  2. Откройте APK в папке «Загрузки» и следуйте инструкциям Android.
  3. Войдите под своей учётной записью AgroSota.

Light обновляет прежнее приложение AgroSota. Оно проверяет обновления автоматически, скачивание и установка — с вашим подтверждением.

Full устанавливается отдельно. Это тестовая версия: проверка всех сценариев продолжается.

Для iPhone: откройте agrosota.ru в Safari → «Поделиться» → «На экран Домой».

ИИ-помощник AgroSotaПодбор товаров · связь с менеджером
Отвечает ИИ. Текст сообщений обрабатывается OpenAI. Контакты для звонка укажите в форме ниже.
Передать запрос менеджеру