Рубцовое пищеварение молодняка крупного рогатого скота под влиянием различных факторов кормления

Таблица 56 - Интенсивность роста подопытных бычков

В начале опытного периода разница по живой массе между контрольной и опытными группами была незначительной, в 18-ти месячном возрасте живая масса бычков Ш опытной группы была выше, чем в контрольной группе на SUS (RED) CIEEь IM aegae В aр a яBay показателю животных контрольной группы — на 5,7% (Р<0,05). Добавка нана ферментного О на У Bees eRe ty отношению к контрольной группе BETO UREDel PGE ED ae исследований среднесуточный прирост наиболее высоким был в Ш опытной группе, где он составил 1035,0 г на ны булки анны показатель было выше, чем в контрольной группе — на Я (P<0,05). Разница по ео С животными I группы составила — 4,2%, а с бычками П группы — 1,2%. Использование ферментного препарата, обработанного жиром также положительно повлияла на среднесуточные приросты массы [ела ЖИВОТНЫХ. Tak, в сравнении с контрольной группой разница составила — 15,3% (Р<0,05) ис Гопытной— 3,0%.

Экономическая эффективность выращивания бычков. Более высокие показахепицналововодириростаза периодотьтгаву животных опытныхагруйи способствовали понижению себестоимости 1 ц прироста живой массы. Использование ферментного препарата, обработанного жиром и пеолитом снизило REC OMMOCTE In прироста ВДеравнениийо age aaa Wane соответственно на 4,4% и 4,6%, с 1 опытной — на 1,5 и 1,7%. В результате наибольшего приростау бычков опьпных групиCati сумы, AG которая в Ш опытной группе была выше, чем в контрольной группе - на 1 06,0 py6., в Г опытной — га 346,5 руб. и П опытной — на 99,0 руб. Ферментный ene р.Pacey aHTH вс Гоп = i ва 247, 5 6. Урове : контрольной труп нам oo Py "cama ar gl А pOBEr рентабельности был выше во Пи Ш опытных группах, а по ню © aDebs a труппой STREETER RIED BESO CSTE BIE

1. Выбор и обоснование оптимального варианта направления исследования биологической активности и механизмов действия интегральной биотоксичности рубцовой жидкости и ее отдельных компонентов с использованием бактериальных люминесцирующих тестсистем

coli K12В качествеТОТ, конститутивно объекта воздействияэкспрессирующийиспользован/ихСРАВЕ-генырекомбинантныйприродного штамм Е. морского люминесцирующего микроорганизма P.leiognathi, выпускаемый HBO «Иммунотех» (Россия) в лиофилизированном состоянии под коммерческим названием «Эколюм» и рекомендуемый для заявленных целей действующим национальным нормативом. Непосредственно перед проведением исследований данный препарат восстанавливали добавлением 10 мл охлажденной дистиллированной воды, выдерживали при +2-4 °С в течение 30 мин, после чего доводили температуру бактериальной суспензии до +15-25 °С. Дальнейшая процедура биотестирования включала три основных этапа: приготовление суспензий анализируемых соединений, их смешивание и совместную инкубацию с сенсорным микроорганизмом, а также количественное измерение биолюминесценции, сравнение интенсивности которой с контрольными значениями позволяло проводить расчет соответствующих токсикологических параметров. 54Р10E.coli К12При ТС1проведениис клонированнымиисследований[их СРАВЕиспользовангенами Photobacteriumрекомбинантныйleiognathiштамм [37], выпускаемый в виде лиофилизированного препарата под коммерческим названием «Эколюм-9» (НВО «Иммунотех», Москва), а также серия репортерных микроорганизмов с индуцибельной экспрессией /ux-renos, клонированных под различными промоторами (табл. 57) Таблица их-генами 57 — Особенности промоторов репортерных штаммов, сшитых с З-тидроксидеканоил-КоА-дегидраза Щаперон ИЕ Регуляторный^белок IbpA^RecA- Повреждение. белков __ активатор SOS-orsera ЕАК Tag rau D

Объектами рогатого скота казахскойисследованиябелоголовойявиласьпороды;рубцоваямодельнаяжидкостьрубцоваямясногожидкость,крупного полученная на основе фосфатного буфера, пропионовой, молочной, масляной, уксусной кислот, глюкозы и 10-% раствора аммиака; трофические субстраты на основе пшеничных отрубей, экструдированных с добавлением Са?, Сг, Fe?*,

Cu** или обработанные сверхвысокочастотными волнами (СВЧ) и ультразвуком (УЗ). При этом в каждый из контейнеров «искусственного рубца» вносили по 128 мл рубцовой жидкости и 500 мг трофического субстрата и инкубировали в течение 24 часов при 37 °С. Временной интервал отбора проб составлял 3, 6, 12, 24ч.

где Ко - модельная рубцовая жидкость; К — реальная рубцовая жидкость; $+Са - экструдированные пшеничные отруби с добавлением Са?; S+Cr - экструдированные пшеничные отруби с добавлением Сг;, StFe - экструдированные пшеничные отруби с добавлением Ее”; S+Cu - экструдированные пшеничные отруби с добавлением Си?*, $+СВЧ - пшеничные отруби, обработанные СВЧ; $+У3 - пшеничные отруби, обработанные УЗ. После 24 часов инкубации в условиях «искусственного рубца», отделяли рубцовую жидкость от субстрата и от бактерий центрифугированием в течение 10 минут и формировали жидкость, в которой определяли возможное присутствие токсиканта. Для изучения интегральной биотоксичности рубцовой жидкости и ее отдельных компонентов (пропионовой, молочной, масляной, уксусной кислот, глюкозы и 10% водного раствора аммиака в физиологических концентрациях) использовали люминесцирующий штамм «Эколюм», который восстанавливали из лиофилизированного состояния путем добавления 10 мл дистиллированной воды, после чего выдерживали флакон в течение 30 минут при 4 °С, после чего формировали смесь в лунках планшета, состоящую из 225 мкл испытуемого агента и 25 мкл бактерий. Измерение свечения проводили на люминометре в ве‘отдельныхДля изучениякомпонентов дифференциальной использовали биотоксичностирепортерные штаммы рубцовойЕ.сой Жилкости fabA::lux,и E.coli ibpA::lux, E.coli тесА:Лих и E.coli саа: их, при этом суточную культуру, ресуслендироваливыращенную на LB-arapeв ГВ-бульонес ампициллиноми подращиваливв течениеконцентрации2 часов100при мкг/мл37 °С, после чего штаммы трехкратно отмывались в физиологическом растворе. Далее формировали смесь в лунках планшета, состоящую из 225 мкл испытуемого агента и 25 мкл бактерий. Измерение свечения проводили на люминометре в кинетическом режиме в течение 120 мин. Уровень биолюминесценции бактериальных штаммов выражали в единицах биолюминесцентного индекса (БЛИ), рассчитанного по формуле: