Рубцовое пищеварение молодняка крупного рогатого скота под влиянием различных факторов кормления

необходимым условием для снижения риска возникновения заболеваний (Zebeli ©. идр.). Среди факторов оказывающих на качество зерновых кормов вполне может оказывать влияние активное развитие генетики, способствующее появлению как новых, так и модифицированных сортов растений. Согласно последним данным (Krieg, J. И др.) достигнутый прогресс в области селекции растений потенциально приводит к изменению питательной ценности зерна злаков. Так были исследованы 20 генотипов нескольких видов зерновых, отмечалось значительное увеличение распадаемости крахмала ржи (рожь: 116,5%Была/ ч и проведена96,2%; тритикале:оценка 85,1%зерна 20/ чигенотипов95,0%; ячмень:пшеницы 36,2%(Seifried/ чи 90,0%).М. и др.) установлены экспоненциальные уравнения и расчетные параметры деградации различия.по крахмалуПрии сыромуоценке протеинувлиянияв рубцехимическихжвачных,веществкоторые(добавлениеимели значительныелимонной кислоты)ячменя и физического фактора (различные размеры частиц) обработки зерна М. Идр)),начто ферментациюзерно ячменяв рубцев составе и продуктивность смешанного рационауставленотелят(Kazemi-Bonchenari,включенное в размере 35% оказывает разное влияние на организм животных. Добавление кислоты в мелкое зерно не влияет на увеличение всасывания веществ, но увеличивает вес (Р<0,01) и потребление корма. При изучении изменения буферных систем у крупного рогатого скота в связи со скармливанием рационов с разным количество крахмала, обнаружено, что снижение рН рубца у животных потреблявших легко распадаемые углеводы было связано с увеличением производства летучих жирных кислот и уменьшения слюноотделения, которые не были компенсированы за счет увеличения проницаемостиОдним эпителия (СЫза С.Е. и др.) разнообразие из специфических микробиоценозов, включающий огромное рубец жвачныхразличныхживотных.микроорганизмов,Считается, что некоторыев том числепредставителии бактерий, являетсяданного сообщества однако способны продуцировать не только АИ-2 [16], но и АГЛ [17], Ericksonнекоторые исследования доказывают обратное (Mitsumori М. и др,, Р.Г. и др., Ran T. И др.). В целом, данные регуляторные молекулы потенциально могут быть восприняты бактериями, не относящимся к нормофлоре рубца, что может привести к развитию инфекционного процесса. Нами было предположено, что рубщовая жидкость содержит факторы, обеспечивающие инактивацию аутоиндукторов, в частности ATI, что вирулентныхпозволяетагрегатов. контролироватьВ связисвойств,с этим, либоразвитиеоднойформированиеизмикрофлорыцелей устойчивыхнашейи работыне допускать формсталобактерийисследованиемобилизацииили их способности молекулярных факторов рубцовой жидкости обеспечивать подавление межклеточной коммуникации бактерий путем инактивации АГЛ. Объект исследования. Рубцовая жидкость молодняка крупного рогатого скота породы,(отбор проводился12 мес. возраста.через хроническую фистулу рубца); бычки красной степной

Измельченное (целое) зерно фуражной пшеницы. Измельченное (целое) фуражное зерно ячменя. Молочная кислота 40% (Acidum lacticum 40 %%), для использования в ветеринарии. При получении опытных образцов корма использовался способ и устройство (Патент на изобретение №2562715) в основе которых лежит процесс баротермической деструкнии включающей загрузку предварительно очищенного сырья в рабочую барокамеру, герметизацию барокамеры, пропаривание многофазной среды до глубоких слоев давлением до 0,5 МПа и температурой до 200°C, продувку сырья газообразным тенлоносителем при давлении до 2 МПа и температуре до 400 °С, выдержку значений эксплуатационных параметров неизменными до 60 с, мгновенную разгерметизацию рабочей барокамеры (сброс давления и температуры до нормальных условий - 0,1 МПа и 20 °С) приводящую к разрыхлению (вспучиванию) структуры растительных сред, извлечение готового продукта из барокамеры, одновременно с основными операциями параплельно осуществляют операции автоматизированного контроля и оперативного управления эксплуатационными параметрами процесса (давление, температура, влажность, время операций). Схема эксперимента. Исследования проводили методом нейлоновых мешочков: in vitro с‘использованием «искусственного рубца KPL 01» - 24 и 12 часовая экспозиция; in situ — хронической фистулы рубца на молодняке крупного рогатого скота — 24 часовая экспозиция. у Эксперимент 1 (Переваримость сухого вещества в рубце (in situ) в зависимости от времени экспозиции): варианты образцов корма - ячмень дробленный+ дисст.вода (контроль) и ячмень дробленный +0,5% р-р мол. к-ты; время экспозиции - без экспозиции; 30 мин.; 60 мин.; 90 мин.; 120 мин. Эксперимент 2 (Переваримость сухого вещества и крахмала в pyOue (in situ) в зависимости от кониентрации молочной кислоты и 30 мин. экспозиции): варианты образцов корма- ячмень дробленный (контроль); ячмень дробленный +0,5% р-р мол. к-ты; ячмень дробленный +1,0% р-р мол. к-ты; ячмень дробленный +2,0% р-р мол. к-ты. Изучалась переваримость сухого вещества и крахмала aepes 3 и 6 час. после кормления. Эксперимент 3 (Изменение химического состава фуражного зерна под действием баротермической деструкции): варианты образцов корма - обработанное зерно фуражной пшеницы, обработанное зерно фуражного ячменя, измельченное зерно фуражной пшеницы, измельченное зерно bypanctЕЕ, Эксперимент 4 Переваримость сухого вещества и крахмала in situ (через 3 часа после инкубирования) Эксперимент 5 Выявление уровня ингибирования системы Quorum sensing бактерий рубцовой жидкостью Исследования проводили методом нейлоновых мешочков: in vitro с использованием «искусственного рубца KPL 01»- 24 и 12 часовая экспозиция;

in situ ~ хронической фистулы рубна на молодняке крупного рогатого скота — 24 часовая экспозиция

При выполнении эксперимента 5 (in vitro) использованы бактериальные штаммы E.coli K12, трансформированные плазмидами с сшивками рецепторных генов (rh/R, lasR ot Pseudomonas aueruginosa и luxR Vibrio fisheri) и генов свечения ([ихСРАВЕ) Photorhabdus luminescens (10) (табл. 28). Культивирование осуществляли на LB-arape (Sigma, США) с добавлением 10 мкг/мл доксициклина в течение 18 часов при 37 °С. Далее переносили в LBбульон (Sigma, США) и инкубировали 90 минут при 37 °С для достижения клетками ранней экспоненциальной фазы. В качестве аутоиндукторов использованы N-butyryl-L-homoserinelactone (С4-ГСЛ), N-(3-oxo}-hexanoyl-Lhomoserinelactone (оксо-Сб-ГСЛ) и N-dodecanoyl-L-homoserinelactone (С12ГСЛ) в диапазоне концентраций от 10° до 104 М. Рубцовая жидкость молодняка крупного рогатого скота была получена через хроническую фистулу и подвергнута центрифугированию при 5000 об/мин в течении 10 минут. Оценку способности подавлять активность аутоиндукторов осуществляли путем инкубации 10 мкл рубцовой жидкости с ГСЛ равного объема в течении 15 минут при 37 °С, после чего был добавлено 80 мкл суспензии соответствующего биосенсора. Измерение проводили в кинетическом режиме на люминометре LM-01T (Immunotech, Чехия) в течение 120 минут, а уровень свечения выражали в RLU (relative luminescent units).

Таблица 28. Использованные штаммыи их характеристика.

Оборудование и технические средства. Люминометр LM-01T (Immunotech, Чехия), многофункциональный микропланшетный ридер Infinite 200 PRO, комплекс для определения белка, азота UDK 139, хроматограф газовый «Кристалл-ЛЮКС- 4000», хроматограф жидкостной «Люмахром». Средние образцы кормов (500r), их остатков, исследовались по методикам зоотехнического анализа и биохимических исследований в Центре