Пневмонии и энтериты телят

ют комплемент. Активация комплемента включает каскад защитновосстановительных процессов в организме, составляющих воспалительную реакцию организма. Поскольку комплементарная активность сыворотки крови находится в прямой зависимости от альфа- и бетаглобулинов, можно считать, что уровень неспецифической иммунологической реактивности также повышается при применении препаратов.

При электрофорезе сывороток телят в агарозном носителе фракция -глобулинов четко подразделяется на 2 подфракции, которые в γ соответствии с номенклатурой иммуноглобулинов следует считать подклассами IgG1 и IgG2, составляющими большую часть всех (90 – 95%) иммуноглобулинов сыворотки крови. Нами изучена динамика этих подклассов иммуноглобулинов у телят при введении препаратов (табл. 20).

Таблица 20

Динамика подклассов иммуноглобулина G при иммуномодуляции, г/л

Как видно из таблицы, уровень иммуноглобулинов IgG1 и IgG2 у обработанных раздельно Т-активином телят постепенно снижался, а затем резко повысился и составил на 40-й день после введения 17,02 ±0,73 и 2,78±0,21 г/л соответственно. У привитых вакциной «Паравак» телят отмечали повышение уровня их с 14,06±2,31 до 16,33±3,87 г/л. При сочетанном применении препаратов повышение их было более выраженным и составило через 40 дней после введения 17,71±3,55 и 2,89±0,48 г/л соответственно. В контрольной группе отмечалось незначительное снижение иммуноглобулинов обоих подклассов.

На рисунках 3 и 4 представлена динамика подклассов иммуноглобулинов у телят в зависимости от введения препаратов. Полученные данные по определению общего белка и фракций сыворотки крови, основного и наиболее многочисленного класса иммуноглобулинов и его подклассов у телят при иммунизации их вакциной «Паравак» и иммуномодулятором Т-активином свидетельствуют о значительной иммунобиологической перестройке организма животных.

г/л
18 IgG1
Т-активин
17,5
17 вакцина
16,5 Т-активин+паравак
16 контроль
15,5
15
14,5
14
13,5
13
1 10 20 40
дни

г/л
3
2,9 Т-активин IgG2
2,8 вакцина
Т-активин±вакцина
2,7
контроль
2,6
2,5
2,4
2,3
2,2
2,1
2
1 10 20 40
дни опыта

Рис. 4. Изменение уровня иммуноглобулинов G2 в сыворотке крови телят

13. Серопрофилактика

Вакцинопрофилактика респираторных инфекций имеет ряд недостатков. Я.Н. Меншик и др. (1979), Gale (1973) считают, что успешная специфическая профилактика респираторных заболеваний сомнительна из-за комплексной этиологии и наличия значительного числа патогенных агентов. В настоящее время ставится вопрос о переоценке преимуществ комбинированных вакцин. Показания к их применению должны основываться на точном знании роли каждого вируса в этиологии. Набор антигенов в сложной вакцине должен соответствовать спектру циркулирующих возбудителей. В то же время этот спектр не бывает однородным и может изменяться в одном и том же хозяйстве (Крюков, 1982).

Анализ литературных данных показывает, что особое место в этиопатогенезе респираторных заболеваний принадлежит иммунологической реактивности организма животных. По мнению К.Г. Уманского (1980), фактором, ведущим к заболеванию, служит снижение иммунитета, поскольку наличие вирусов у животных не предопределяет болезнь, а наличие дефекта иммунной системы – предопределяет. Известно, что при недостаточном или позднем вскармливании молозивом новорожденных телят развивается гипогаммаглобулинемия. Молодняк с низким уровнем колострального иммунитета более подвержен болезням (Асалханов,1980; Балашенко и др., 1967; Воловенко,1975; Костына, 1984; Немченко, 1979, 1983; Ницмане и др., 1978; Федоров и др., 1983; Чекишев, 1978, 1980, 1983, 1984; Чуйкин, 1972; Fey et al., 1961; Gay et al., 1965; Roth et al., 1975).

С молозивом в организм теленка поступают иммуноглобулины, комплемент, лактоферрины, трансферрины, Т- и В-лимфоциты, ферменты трипсин, лактаза, витамины и др. (Rotter et al., 1983). При этом иммунитет, полученный колостральным путем, является ограниченным во времени. В.М. Чекишев (1983) считает, что наиболее высокая концентрация пассивно приобретенных иммуноглобулинов в сыворотке крови бывает в течение первых 48 часов. Затем темп их катаболизма значительно превалирует над аутосинтезом, и в возрасте 1 – 2 месяцев у телят обнаруживают гипогамма-глобулинемию. Как правило, заболевают телята с невысоким уровнем антител.

По данным Ф. Хорш (1981), минимальный уровень антител отмечается у телят в возрасте 40 – 45 дней. Он считает, что концентрация антител в сыворотке крови зависит от первоначального уровня

колостральных иммуноглобулинов, постнатальных изменений объема крови и скорости распада иммунных белков. По данным Э.А. Чуйкина (1972), И.Н. Тэрыце (1974,1975), количество иммуноглобулинов у телят постепенно снижается к 2 – 3-месячному возрасту. Это является одной из причин восприимчивости телят к респираторным болезням.

Результаты исследований А.Н. Егорова (1966) показывают, что резкое снижение гамма-глобулинов происходит у телят в возрасте 2 месяцев. Очевидно, сроки наступления физиологического иммунодефицитного состояния могут сильно варьировать. Например, Х. Арнаудов и др. (1982) полагают, что содержание колостральных антител у телят исчерпывается уже через 10 дней после рождения. Р.Х. Хамдеев (1983) установил, что наименьшая концентрация гамма-глобулинов регистрируется у телят в возрасте 52 дня. Е.А. Драгомир (1986) при исследовании телят через каждые 5 дней до 35-дневного возраста отметил неуклонное их возрастание. Л. Сланина и др. (1982) считают, что минимум их отмечается в 3-недельном возрасте.

Выявление животных с пониженной концентрацией иммуноглобулинов имеет большое практическое значение. Однако по мнению Greene и др.(1984) уровень гамма-глобулинов у отдельных телят не является показателем жизнеспособности, хотя наибольшая смертность наблюдается в группах с низким содержанием их. Для коррекции иммунодефицитных состояний Hastings (1979) и А. Налетовски (1982) считают более целесообразным применение консервированного молозива и сывороточных препаратов без учета спектра специфических антител.

В связи с обнаружением корреляции между уровнем общего белка сыворотки крови и иммуноглобулинов Reid и др. (1975), Frerking (1980), В.М. Чекишев (1980) предложили рефрактометрический метод оценки иммунного статуса. С целью частичной компенсации дефицита иммуноглобулинов телятам с пониженным показателем общего белка рекомендовано введение неспецифического глобулина. При этом нам удалось сократить заболеваемость более чем в 4 раза, падеж – в 6 раз.

Большинством ученых показана эффективность пассивной иммунизации при респираторных заболеваниях (Урбан,1968; Андреев и др., 1973; Ветра и др., 1972; Грязин и др., 1983; Иванов и др., 1984; Кис и др., 1981; Кленина, 1971; Цветков и др., 1979; Чекишев и др.,

1984; Марин и др., 1979). При этом использовались как высокоочищенные гамма-глобулины, так и сыворотки крови реконвалесцентов (Нехуров, 1984). Н.Н. Крюков (1982) считает, что сыворотка крови убойного крупного рогатого скота, полученная на мясоперерабатывающем предприятии, не уступает по содержанию специфических антител гипериммунной поливалентной сыворотке. По мнению К.В. Асалханова (1980), эффективность сывороток и глобулинов зависит не от содержания специфических антител, а от наличия в них антител против адаптированной в условиях конкретного хозяйства или фермы микрофлоры.

Поэтому серопрофилактику необходимо проводить с помощью сывороток, полученных от животных того же хозяйства, где отмечаются респираторные болезни. Смешанная инфекция является фактором, которому невозможно противопоставить широкий набор вакцин и сывороток, выпускаемых биопромышленностью. В связи с этим сыворотка реконвалесцентов является наиболее оптимальным средством специфической профилактики в условиях широкого распространения болезней полиэтиологического характера.

Применение крови реконвалесцентов. В качестве средства специфической защиты молодняка от респираторных инфекций мы использовали кровь переболевших животных (реконвалесцентов). Кровь брали у клинически здоровых животных не позднее 20 дней после переболевания. Отбирали животных средней упитанности. Для взятия использовали стерильные флаконы 0,5 л, закрытые 2 пергаментными колпачками. В качестве антикоагулянта использовали 10%ный раствор лимоннокислого натрия из расчета 50 мл на 1 л крови, который вносили в раствор до стерилизации в автоклаве. Автоклавирование проводили при давлении 1,5 кг/смІ в течение 1 часа.

Кровь брали с помощью кровобрательных игл, вмонтированных в резиновый шланг длиной 50 – 60 см, оканчивающийся стеклянной трубкой. Для каждого животного использовали отдельный шланг с иглой. Перед взятием крови отсоединяли иглу и вводили в яремную вену. Флакон для крови готовили, открыв верхний слой пергаментной бумаги и проколов стеклянной трубкой нижний слой бумаги. Во время взятия крови покачивали флакон. После наполнения флакон закрывали верхним колпачком и перевязывали.

Кровь вводили больным телятам подкожно в дозе 1 мл на 1 кг живой массы в день ее получения 2 или 3 раза с интервалом 3 – 5 дней в зависимости от тяжести болезни. Всего было обработано та-

ким методом 76 телят в возрасте 1 – 4 месяца. Наблюдение показало, что инъекция препарата способствует быстрому улучшению общего состояния, заметному исчезновению клинических признаков уже на 2 – 3-й день у больных телят с менее тяжелыми расстройствами органов дыхания. В более тяжелых случаях болезнь длилась 6 – 10 дней после введения крови. Эффект от применения значительно снижался при лечении хронически больных телят с тяжелыми клиническими признаками пневмонии.

14. Химиопрофилактика

На крупных фермах, где преобладают смешанные инфекции, основное значение принадлежит не специфической устойчивости к определенному возбудителю, а общему уровню иммунологической реактивности (Коромыслов,1980). Поэтому направленные на повышение неспецифической резистентности средства, прежде расцениваемые как вспомогательные, в этих условиях рассматриваются как существенные в системе профилактики респираторных заболеваний. По мнению Д.М. Злыдникова и др.(1974), химиопрофилактика является единственно реальной возможностью борьбы с массовыми респираторными болезнями, возбудители которых недоступны для вакцин в силу множественности их серологических типов или низкой способности стимулировать естественный иммунитет.

Профилактика с помощью химиопрепаратов в отдельных случаях является эффективной. В качестве стимуляторов специфического иммунитета предложены левамизол, поливинилпирролидон (Игнатов и др., 1983), тиосульфат натрия, нуклеинат натрия, полиакриловая кислота, пирогенал, полистимулятор ПС-1/1 (Прудников,1982), димексид, пентоксил в форме аэрозолей (Клименков и др., 1984; Конопелько и др., 1983), изопринозин (Mulcahy et al., 1986). При чуме свиней предложены ксимедон, левамизол и нуклеинат натрия (Юсупов и др., 1993). Слабыми стимуляторами специфической резистентности при сальмонеллезе признаны продигиозан, поливиниловый спирт, витамин В¹² , карбоксиметилцеллюлоза, метицитозин, ПС-1/2, Т-активин (Теш и др., 1989). Как выяснилось, новарсенол является иммуностимулирующим средством, которое значительно активизирует миелоидное и лимфоидное кроветворение (Ветра и др., 1972; Говоров,1968; Головко,1986; Клименков и др., 1984; Масловский и др., 1977; Серванчук и др., 1977).