предполагают наличие жгутиков, а подвижность отсутствует, то нужно исследовать б—8-часовые культуры, пыращенные при комнатной температуре, или использопать конденсационную воду культур, выросших на косом агаре. Наиболее изменчивой морфологической частью сальмонеллы являются жгутики. Е. С. Станиемславскийразличных(1971)факторовнаблюдалсферическихформированиеформ подсальмонелл,действиимеющих часть клеточной стенки и мало отличающихся от пормальшых клеток по основным функциональным особенностям.
На пластинчатом агаре большинство представителей сальмонелл дают гладкие ($-форма), полупрозрачные, пыпуклые и влажные колонии; при старении культуры они становятся мутными. Иногда обнаруживаются шероховатые (В-форма) колонии, имеющие неровную поперхность и края. $. abortus-equi часто дает сухие и крошковатые колонии. Некоторые представители сальмонелл ($. paratyphi В, 5. abortus-equi и др.) при негустом посеве часто образуют на пластинчатых средах слизистые валы (рис. 2). Слизистый вал сильно преломляет свет и возпышается над колонией; под микроскопом на нем видна исчерченность. Чтобы получить такие валы, среду необходимо выдержать в течение суток в термостате, а за(eM сутки в комнатных условиях. У старых лабораторных штаммов 5. paratyphi В феномен валообразования отсутствует или выражен нечетко. $. typhimurium в плотных средах слизистого вала, как правило, не образует, но, изменяя условия культипирования (повышение pH, добавление NaCl и т. д.), можно добиться их образования. $. paratyphi В и $. typhimurium иногда образуют почерние колонии. $. abortus-ovis, $. abortus-equi, S. lyphi-suis и некоторые другие на плотных средах дают очень скудный рост и мелкне колонии, диаметром около | мм. Интенсивность роста $. abortus-ovis на бульоне ‘тачительно слабее остальных сальмонелл (микробная копцентрация около 500 млн. в 1 мл среды). При поссве колоний В-формы в МПБ образуется обильный рост. Л. М. Ахмедов при исследовании материалов, полученпых от абортпровавиих овцематок и сальмонеллоносителей, часто’ использовал МПА и среду Эпдо, оро7
ТВ шенную стерильной кроли&::`. нее I чьей или овечьей сыворот2 ао. Oh кой. Это давало возможЗУ. АН, $ ность получить хороший ane гм рост сальмонелл. зы 1 De В жидких средах сальСЫ:А 88)!р и ПН ла,моНеллыпе разжижаютне образуютжелати-индоЕ НЕЙ па. При росте на мясо-пепRG НИЕ тонном бульоне они вызым REE ake вают равномерное помутней Si ние среды, пленки на ее поРис. верхности обычно не обракруг 2.колоннй.Образование вала воскийзуется.(1951)И. И.иногдаАрхангель-наблюпа дал на поверхности бульоHO, пленку.что приВ ростеопытахсальмонеллМ. М. Ивановав течение(1950)24—48установле-ч pH среды снижался с 7,4-7,6 до 7,0—6,8. При посеве колоний К-формы в МПБ образуется обильный осадок и среда незначительно мутнеет. HO, Налибокартофелев виде плотныхсальмонеллыбеловато-серыхрастут либоилиедважелтова-замет-
то-коричневых колоний. Из изложенного выше видно, что сальмонеллы в основном обладают одинаковыми морфологическими и культуральными свойствами. Это обстоятельство не дает возможности дифференцировать и типизировать их сальмонеллна Биохимическиеобычных питательныхсвойствасредах.отдельных представителей. ции их от другихдавно используютсябактерий, имеющихкак дляобщиедифференциа-с пими морфолого-культуральные свойства, так и для типизации их внутри своего обширного рода. Предложены различные питательные среды, содержащие те или иные углеводы, многоатомные спирты и органические кислоты в сочетании с индикатором, для выявления образования кислот, щелочей, газов, а также альдегидов. Этот индикатор определяет в основном качественные, инокВ олимСТЕНЕ LISMOREAG сред биохимическогокачестве питательнойряда используютосновы припептоннуюприготовленииводу, раствор CAL нутрозы, семенииковый бульон и различные TO MUBC CHE) средь Ree и качастоеаиизичкаторов©6е6а
8
я
ивеченный фуксин, бромтимолблау, раствор лакмуса, розоловую кислоту, метилрот, бромкрезолпурнур и друMic вещества, Известен ряд общих культурально-биохимических признаков, характеризующих в целом (за небольшим исключением) принадлежность бактерий к сальмонеллимпругихи позволяющихчленов семействаотличитькишечныхих, с микробоводной стороны,(Escheri-от chia), а с другой—от группы сходных бактерий (Udwardsiella, Citrobacter), Такими отличительными признаками являются отсутствие способности свертывать молоко, разжижать желатин, образовывать индол, разлагать лактозу и сахарозу; но они разлагают манiit, образуют газ в среде с глюкозой. Одцако из этого правила имеются исключения. Так, $. lastbourne обраayer индол, $. anatum разлагает лактозу, $. der-es‚защ, 5. abortus-bovis разжижают желатин. Хотя по бпологическим свойствам эти бактерии и выходят за рамки рода сальмонелл, но по своей антигенной структуре они включаются в него. Род Arizona, относящийся к Salmonella, как правило, ие расщепляет дульцит, инозит, поздно разжижает желатин, в первые сутки или позже расщепляет лакrosy.
Citrobacter freundii могут, как и сальмонеллы, использовать цитрат как единственный источник углерода, пе сбраживают или сбраживают с задержкой лактозу, пе образуют индол, не расщепляют малонат, и по„тому данные бактерии называют еще Salmonella coli. Для биохимического подразделения Citrobacter и четырех подродов сальмонелл в настоящее время используют 5 тестов: определение желатиназы, утилизация муката, ферментация лактозы, глицерина и декарбокснлирование лизина (табл. 2). Кауфман (1966) род сальмонеллы по биохимическим свойствам подразделяет на 4 подрода, что соответствуег их антигенной структуре (табл. 3). Учитывая определенную роль индолообразования в лифференциации сальмонелл от кишечной палочки, мы специально выявляли наилучший способ его определения, Проверили методы Crporosa, Мореля, Эрлиха, Сальковского, Фрибера и Вейля— Легаля. Наиболее чувствительными,,лучшими с точки зрения быстроты выявления и эффективности определения индолообразова-
