пользовали эту реакцию для диагностики зараженностн 7 сальмонеллами пищевых продуктов. лезеМытелятизучалии выбралиреакциюследующуюпреципитацииметодикупри сесальмонел-проведе. ния. В качестве проб берут часть печени, селезенки и лимфатические узлы (поверхностный шейный или коленной складки). Из каждой пробы 2—3 кусочка стерильно засевают в пробирку с мясо-пептонным бульоном (3—5 мл), которую ставят в термостат на 20—29 ч при температуре 37°С. Затем содержимое пробирки кипятят над спиртовкой 2—3 мин, после чего фильтруют через асбестовую вату, вложенную в воронку, до получения прозрачного фильтрата. Иногда фильтрование приходится пойторять 2—3 раза. для0,2—0,4преципитациимл фильтратаи подслаиваютналиваютк пемув узкуютакойnpobupkyже объем сыворотки или, наоборот, вначале наливают сыворотку, а затем надслаивают фильтрат. При этом должна образоваться четкая граница между сывороткой и фильтратом. Учитывают реакцию в течение 1—2 ч, лучше на темном фоне при проходящем свете. При положительной реакции в месте соприкосновения фильтрата с сывороткой образуется серовато-белое кольцо. Если такоеется кольцо в течение 2 ч не появится, реакция считаВ отрицательной.качестве контроля ставят реакции: 1) сыворотка роткапреципитирующаяненммунизированного+ физиологическийкроликараствор; 2) сывоТакая + фильтрат. можность постановка реакции преципитации дает возОднако диагностировать заболевания в течение 24 y, к бактериологическомуее пока можно применятьметоду выделениялишь как сальмонелл.дополнение чев Гисто-(1951) предложили фагоднагностика.наряду a бактериологическимИ. И. Кокури:Я патологическим7 ЕВ. П. Логиновbckauamperисследованиями(1957) олпредложилиспользоватьметод ускоренной8гистоло-С этой гистологической диагностики сальмонеллеза телят и поросят. Для этой цели берут печень павших и вынужден. но убитых животных; из нее в 2—3 местах вырезают тонкие кусочки (2—2,5 мм), помещают их в широкую пробирку с 15%-ным раствором формалина и нагревают Ha спиртовке 5 мин, не доводя до бурного кипения.
118
za вос кусочки печени резуднадзамораживающем aay кротоме и окрашивают обычным способом: гематоксиHELA Мои mip gue Money Па ант RASSge ise пании в срезах легко обнаруживаются очаги некроза О ЕЕ. Фагоднагностика и Фаготиипрование возбудителей сальмонеллезов людей в последние годы находят широкое применение в медицинской практике. Н. И. Николаенко (1946) также получил строго специфический к $. cholerae-suis бактериофаг и использопал для фагодиагностики возбудителя сальмонеллеза поросят. 3. А. Норкина (1949) получила фаги, лизирующие возбудителя сальмопеллеза телят и поросят. И. В. Лихачев (1943) установил специфичрость бактериофага $5. cholerae-suis. Автор при изучении влияния бактериофага на культуру $. cholerae-suis установил через 10—15 mun, 1, 2, 3, 4, и 5 ч выращивания полный лизие в течение 1—2 ч. Через 5 ч воздействия бактериофага на культуру сальмонеллы свиней ero свойства оказались менее активными п большинство культур дало слабый рост. Bee 118 свежевыделенных культур $. cholerae-suis были лизпрованы бактернофагом при росте в контрольных. Автор делает вывод, что бактериофаг $. сПо]егае-5щ$—надежное диагностическое средство, позволяющее быстро и точно днагностировать сальмонеллез свиней. McDonagh, Smith (1958) с помощью фаготнпироваUNS установили эпидемиологическую связь вспышек TOKсиконифекции среди людей фаготипированием $. typhimurium у убойных свиней. Bullin (1960) подвергая иагностированию 908 пы Е S. typhi a if q | 298штаммов 5. typhimurium, установил, поз ВИНО рогатого скота чаще встречается фаготип » вариант |, а у голубей— Та. Однако Р. A. Цион (1963) указывает, ито еще в 1927 г. пришлось разочароваться в практической пригодности. фагоднагиостики, а может быть, и ес Ст. МВложениое выше показывает, что фагоднатностнка и фаготыипрование возбудителей сальмонеллезов молодпяка пока остатотся неизученными. В связи с этим одной из задач исследователей является изыскание диагностических фагов типирования сальмонеллезных бактерии возоулителеи болезней молодняка.
119
Днагностика с помощью флуоресцирующих нммунных сывороток. Для проведения (1957)такой диагностикииспользовалиИ.сыворотку,О. Дашкевичв которойи И. Ф.антителаМихайловметили флуоресценн-изоцианатом. При добавлении этой сыпоротки к соответствующей культуре микробы под люминесцентным микроскопом флуоресцировали в ультрафиолетовом свете желто-зеленым цветом. Этот опыт показал реальную возможность получения и применения флуоресцирующих сывороток для окраски микробов кишечной группы, однако яркость флуоресценции микробов при обработке их гомологичной флуоресцирующей сывороткой еще недостаточна для того, чтобы приготовляемые препараты можно было использовать в днагно* стических целях. А. ИзысканияП. Ларионов ви Н.этомА. Кузьминнаправлении(1959). продолжилиОни тонкие подсушенные отпечатки на стекле органов павших животных, экспериментально зараженных сальмонеллезом, POTOK,Обрабатывалиа затеммеченымипри бактериоскопииглобулинамиподиммунныхлюминесцент-сывоным микроскопом обнаруживали свечение сальмонелл. ченияОднакомикробов,А. П. наблюдалиЛарионов и свечениеН. А. Кузьмин,фона, т.кромее. ткане-свевых элементов в препаратах-отнечатках из органов болевщих сальмонеллезом животных. По их мнению, флуоресцирующие сыворотки вполне пригодны для того, чтобы вызвать специфическое свечение сальмонелл. Н. А. Кузьмин (1960) указывает, что при исследовании мяса и патологического материала от зараженных A убитыхподращиваниеживотныхмикробовнеобходимов пробахпредварительново влажнойпровестикамере в течение 5—7 ч. Что касается материала от павших животных, то в нем сальмонеллы легко обнаруживаются уже при первичной люминесцентной микроскопии. enn И. Притулин (1963) сравнивал люминесцентный метод диагностики сальмонеллезов животных с бактеа методом. Он установил, что сальмонел1994ю СЕслучаев (24 пробы), легкихоонаруживялисвь в крови в re про4 a проб),мышцах—селезенке—в 3—в(6 6проб),(12 проб),почкахпече-— в содержимом” кишечника в— в10 те(21), мозге— (98), и9 С помощью люминесцирующих антител в течение | 4
120
