бактоагара Плоскирева без предварительного использования сред накопления. М. М. Иванов, В. К. Карчевская (1956) испытывалн пригодность для пражизненной днагиостики следующих методов исследования фекалий: реакции преципитации с гаптеном, фекальной агглютинации, параагглютинации фекальных посевов по Бернгофу. Они установили, что лучшие результаты дает метод Бернгофа. Сущность его заключается в том, что в пробирки с МПБ высевают фекалии и после 12—18-часовой выдержки в термостате проверяют бульон на предметном стекле реакцией агглютинации с паратифозной диагностической сывороткой. По их данным, метод Беригофа обладает тем преимуществом, что OM выявляет сальмонеллы постоянно, тогда как бактернологическим методом их удается установить лишь до 12—-13 дней после заражения. Г. В. Жуков (1961) у Ш поросят, экспериментально зараженных в 1,5-месячиом возрасте, выделял из кала сальмонеллезные бактерии с 5-го по 14-й день исследования.
При хроническом течении сальмонеллеза Г. В. Жуков (1961) из 47 исследованных свиней положительный результат по методу Бернгофа получил у 32 животных, тогда как при остром течении были получены совиадающие результаты по метолу Беригофа и бактериологическому. Выделение возбудителя сальмонеллеза из кала ягнят сопряжено с трудностями, часто связаннымис подавлением его сопутствующей микрофлоры желудочнокишечного тракта. Однако и в этом случае лучше использовать прямой посев па элективные среды, без использования сред накопления. Бактериологическое исследование кала должно найти широкое применение; при этом целесообразно проводить посев кала после соответствующей обработки непосредственно в элективные среды, в частности в бактоагар Плоскирева. Серологическое исследование проводят с помощью реакции агглютннации, реакции непрямой гемагглютинации пили реакции связывания комплементов.
Техника постановки реакции агглютинации общепринятая. При днагностике с ес помощью иеобходимо учитывать наличие в сыворотке крови животных агглюти108
нинов после прививок. В крови телят, привитых формолвакциной, титр агглютининов резко колеблется в ‘ависимости от возраста, индивидуальных особенностей кивотных и от используемой вакцины. К. И. Холдии (1954) установил, что у большинства телят, двукратно привитых формолвакциной, титр не превышает 1:50 и 1: 100 и что он резко снижается, когда животные достигают месячного возраста. При двукратной вакцинации телят в возрасте до пяти дней формолвакциной в дозе 2—3 мл мы установили в их крови сальмонеллезные антитела в титре 1:10—1:40, а при уменьшении дозы формолвакцины до 1—1,5 мл титр снизился до 1:5—1: 20; у некоторых телят антитела вообще не выявлялись даже в титре 1:5. ° При прививке телят полужидкой квасцовой вакциной агглютинационный титр сыворотки на 9—14-й день после вакцинации равнялся 1 :320—1 : 2560. Специальные опыты К. И. Холдина (1954) показали, NTO положительные титры реакции агглютинации через 15 дней от начала заболевания устанавливаются у 19,3% животных, с 16-го до 30-го дня болезни —у 64,7%, через 2 мес —у 75,3. Агглютинины в крови у некоторых больных и переболевших сальмонеллезом телят появляются спустя 7—9 дней от начала заболевания. Р. М. Жак (1951) при исследовании крови экспериментально зараженных сальмонеллезом телят обнаружил в ней агглютинины лишь после исчезновения наиболее острых симптомов болезии (на 8—13-й день от начала заболевания).
Изучая возможность применения реакции преципитацин для прижизненной диагностики сальмонеллеза, К. И. Холдин (1954) установил, что реакция преципнтацни сыворотки с антигеном Буавена появляется у вакцинированных и больных животных примерно в те же сроки, что и реакция агглютинации, и что высота преиипитационного титра у здоровых вакцинированных, больных и переболевших телят одинаковая. Эти особенпости реакции преципитации не дают возможности использовать се в практической работе для прижизненной пиагностики сальмонеллеза. В крови больных и переболевшших сальмонеллезом телят преципитины на протякении 4—4,5 мес не обнаруживаются. В. Т. Котов (1932) испытал видоизмененную методи-
109
ку Мандельбаума для прижизненной диагностикн саль» TORCH CLA ОЛИВЬЕ GRAMM MENS mo GGL) Bee пы1 поросят010 бралиal 1—2— каили} крови в чашкуа Петри и туда же- вносили 10—20-часовую бульонную культуру возбудителя сальмонеллеза (содержашую 2% лимонноы кислого натрия), приливая ce каплями до соотношения 1:10; смешивали, затем смесь брали в пипетку, один конец которой и термостат на 3 Ач после чего микроскопировали в раздавленной капле, В положительных случаях устанавливали большие скопления агглютинированных бактерий и отсутствие поABUOKNDIX Г. В. Жуков (1961) указывает, что реакция агглюти} пации с сыворбткой крови у всех больных“ м поросят положительная, пачиная с 6-—8-ro дия заболевания, патологическим титром реакции агглютинации является 1: 100, сомнительным 1:50. По мнению Р. А. Циона (1963).ВЫ патологическим. Г титром при всех+ сальмонеллезах необходимо считать положительную реакцию агглютннации в разведении сыворотки крови 1:50—1:100 Однако необходимо учитывать возраст и вид больного ; молодняка Исследования А. М. Ахмедова и П. Бабаева (1964) показывают, что у экспериментально зараженных овец и ягият в сыворотке кровн сальмонеллезные агглютинины у~ овец начинают появляться на 4—6-й день после заражения, а у ягнят- только па 9-й.> В большинстве случаев титр агглютининов в сыворотке овец, нарастает на 9—21Й день после заражения (1:6400—1: 12 800) а затем пачинает снижаться. Реакция па заражение ) обнаруживалась у ягнят в низких титрах, и агглютинипы были обнаружены только у 7 из 17 зараженных Определенное значение при этом имеет возраст ягнят. В сыворотке крови 4—12-дневных животных при внутримышечном заражении агглютинины в течение у 45 дней me улавливались, несмотря па бурное проявление у них клинических признаков болезни. В сыворот} ке крови большинства ягият, зараженных в 20—28-дневном возрасте, агглютниины появляются на 9-й день после заражения в титрах от 1:100 до 1:400, ак 26-му | дню титр агглютининов почти у всех зараженных ягнят был отрицательным. В сыворотке крови попти у всех к взрослых овец агглютинины обнаружены в положитель-
110
