, call ВИ т . тем выросшие культуры высевать в бактериологические чашки. К. я И. Холдины (1954)5 для выделенияa с ТА Еae советует делать посев Be крови животново яз МИА, i ana aa et aes м ee ee ald , Я р ух УЕКан i i Мы чаще всего поступали таким образом: 0,5—1 мл крови засевали в 5—6у мл 20%-ного ржелчногог мясоPah oe can GAL емо Ир о a года и кровь поступала в a ию через о Ч им ия Затем коне, и a бульв а в cay Эн a Sleauna a МПА CHEE 8} уеду ЖЕНИ ЖИТСЯее идВЕКОВ—_выдерживалипоИВ емтв термостате ОЕмОЙ16—20Лme ач.aойBET oe ния гемокультуры без‚КО: предварительного` ot иакопленияue дельмиse Хоящин ели QO ЧЕЛ, ле но зараженных. И. лд сальмонеллезомр лед телят и 34перспонтанноbe) болевших обнаружил п CIES, и ДЕ ee боen0,0, Haв0ий10.Уу 6~ р Ей — МEMIНа __==О-оWy heДеньHyeщи ВЕЛИ is Slam Gneame, bar иВи В, a Oneeey MyИBEPC лоб2 наOATES8 iiFCSHakCONSENS ак AeKe eCЕ J p Poser, исследованиизаболевания. крови может быть полученSTN иеВУтедЕна 18-й деньт И. И. Архангельскийssepemneounrenreinh (1951)Е рекомендует 1 проводить прижизиеннуюDoelтBvacaronка в7=5—7 бактернологическую п osроб ый,ирокобразом: eeмясо-пепзасеятьngднагностнкуЕкровь больногогаромсальмоsh ee seal Gantt ee One, Gard те ый 5 поставить реакцию Е Исследовав ИНН и 57 Pe бо; д по такой методике 57 посевов крови больных телят, И. И. Архангельский получил максимальное количество положительных результатов па первый, третий и четвера, С 10-го дия болезни культу В. К. Паракии (1952), проверяя этот метод, исследови рабы uate от ИОВ И лет oe 104
“ мол от первого по девятый день болезни. Культуру hee онели ре обнаружил у 786% исследованных жиЕ | , Г. . В. dD. ЖуковJ (1961)‘ заразилс сальмонелламии внутриненио IL поросят 1,5-месячного возраста и при бакте риологическом исследовании крови получил темокультуры через 2—5 дней после заражепия OT всех поросят, Reyes 66 ЕЕ— отива Вы Е пало), Tepe оной: ог четырех, а через 12—14 дней возбудителя обнаруЖить He удалось ЖИТЬДля получения. большого числа положительных реультатов при исследовании крови следует осущестплять имеющуюся в медицииской литературе рекоменLINO! вводить больному животному подкожно за 15 мин до взятия крови 1 мл адреналина в” разведения |: 1000 культурыОригинальныйВ разныеи срокибыстрыйдля методднагноестикиполучениябрюшногогемотифа и паратифов у людей‘ предложил С. А. Блинкин (1948). Его можно применить и в ветеринарной практике. Сущность его заключается в следующем. В четырехгранном с двумя широкими стенками флаконе емаи OM) пед COMTI THA ФН GUSTS ENED @ 1ф-ной глюкозой, а на противоположной 14 -ной лактозой при pH среды 7,4.phe Во флакон—_ — налива-агар с ior 70—80 мл 30%-ной стерильной желчи, в качестве иидикатора используют реактив Андреда, при введении которогоЕ питательнаяi среда7 приобретаетPAGS соломенножелтый цвет. В процессе использования микробами yr< i у невода в среде накапливаетсяс кислота, которая и восстанавливаетHA scarce порозово-красныйодновременнопивет фуксина.с. получениемТаким пуОл pu опПеделнни ао Ев НРВ . ногоТехникавливают. работыво флаконтакова:и. иеставятменеена: 1012млч вкровитермостатбольдля накапливания микроорганизмов, после чего поверхпость агаровых сред орошают желчно-кровяной средой, наклоняя флакон то в одну, то в другую сторону, и снова ставят в термостат на 12 ч. Первый раз результаты ТЕР GG ВУЗЕ у Boru Ha Поверхности агара вырастают сальмонел леные палочки, то пластинка глюкозно-агаровой среды ИРА,‹раснест, а между средой и стенкой флакона накап;иваяетсязаете обильная,и, Е хорошоXx a видимая пенаа—п— признакзнак гага105м
зообразования. Выросшие на неизменной пластинке колонии используют для микросконни и постановки пробной реакции агглютинации. При отсутствии роста или ферментации глюкозы агаровую среду вторично орошают желчно-кровяной средой и флакон ставят в термостат еще wa 12 ч. Метод получения гемокультур высокоэффективен при диагностике сальмонеллеза молодняка, острого и подострого течения. Исследование кала. Исследованию кала в настоящее время уделяется недостаточное внимание, между тем оно имеет важное диагностическое значение. Успех исследования кала в большей мере обусловлен качеством применяемых питательных сред. В практике для выделения сальмонелл наряду с элективными средами применяют среды накопления Кауфмана, Мюллера, Ракитен-Релгера, Киллиаиа, Захарченко и 20%-ный желчный бульои. Проведенные нами исследования эффективности этих сред по методике А. М. Смородинцева и др. показали, что они перавноцениы. Мы коэффициеитчисляли по отношениюобогащенияк сальмонеллезныхкишечиой палочке.бактерийВысевы ис-из сред накопления на среду Эпдо мы делали через 6, 8, 16 Нашии 24 ч опытыпосле началапоказали,культивирования.что соотношение кишечной. палочки и сальмонелл в средах накопления увеличивается в пользу последних уже по истечении 6 ч и достигает максимума через 16 ч, ак 24-му часу культивирования снижается. На средах накопления Кауфмана и Мюллера к 16 ч коэффициент обогащения составлял 2,5—4,3—5 единиц,Захарченкона средах Киллнана и Ракитен-Ретгера-— оне коэффициент обогащения— 2—3 единицы.в первыеНа8 желчномч был несколь-булько выше единицы, а в последующем — ниже, что свидетельствует о малой пригодности желчи в качестве среды накопления. При культивировании 158 проб, взятых из органов экспериментально зараженных кроликов, а также выпужденно убитых свинеи, на различных средах накопления в теченне суток были получены следующие результаты: при высеве на среды Кауфмана сальмонеллыМюллеравыделены— изиз49,7,68,4%Киллианапроб, Ракитен-Ретгера— из 46,9, Захарченко— из 53,5,— 40%из 46,3%;проб. па среду из 20%-ного желчиого бульона-—из 106
