“
Из испытанных нами сред накопления наибольшее задерживающее действие на постороннюю микрофлору, п частности на кишечную палочку, оказала среда Кауфмана, затем среда Мюллера и нанменьшее — среды Ракитен-Ретгера, Киллнана и Захарченко. Как известно, в крови больных животных обычно содержится незначительное количество бактерий и для сго увеличения целесообразно использовать жидкие среды. В кале и рвотных массах имеется очень много разнообразных микробов, поэтому для подавления несальмонеллезных микробов иногда целесообразно применять среды накопления. Однако, как показали исследования Д. Д. Хаджимова, Ф. С. Иоффе, А. М. Обольянинова, при наличии эффективных элективных сред можно ограничиться и прямым посевом. При проведенпом памн исследовании 395 проб кала от павших животных, экспериментально зараженных и естественно больных сальмонеллезом, прямым посевом на элективпую среду Плоскирева бактерии выделялись из 38,6% проб, а на наиболее эффективной среде накопления Кауфмана— из 35,8% проб. `При прижизненной днагностике сальмонеллеза теJIT, а также при изучении характера выделения бактерий с калом MbI всегда и с большим успехом применяли бактоагар Плоскирева, обходясь без предварительной среды накопления. Но при прямом посеве на элективную среду мы предварительно смешивали 2—3 г кала с физиологическим раствором и давали этой смеси отстояться в течение 10—15 мин. М. М. Иванов и В. К. Карчевская (1956) при бактерпологическом исследовании фекалий животных с применением бактоагара Плоскирева, сред Эндо, Левина и др. установили, что на бактоагаре сальмонеллезные культуры обнаруживаются значительно чаще, чем на других элективных средах. По данным этих исследователей, на бактоагаре Плоскирева сальмонеллезные культуры выявляли из кала подопытных животных почти ежепиевно в течение 12—13 дней после заражения, а затем микробы обнаруживали редко, чаще выделяли культуры, которые обладали теми же ферментативными свойствами, Б.чтоЛ. иМатвиенкопараколи. (1956) при исследовании кала эксморскихпериментальноCBHHOK, зараженныхмышей выделял сальмонеллезом$. dublin с помощьютелят,
107
бактоагара Плоскирева без предварительного использования сред накопления. М. М. Иванов, В. К. Карчевская (1956) испытывалн пригодность для пражизненной днагиостики следующих методов исследования фекалий: реакции преципитации с гаптеном, фекальной агглютинации, параагглютинации фекальных посевов по Бернгофу. Они установили, что лучшие результаты дает метод Бернгофа. Сущность его заключается в том, что в пробирки с МПБ высевают фекалии и после 12—18-часовой выдержки в термостате проверяют бульон на предметном стекле реакцией агглютинации с паратифозной диагностической сывороткой. По их данным, метод Беригофа обладает тем преимуществом, что OM выявляет сальмонеллы постоянно, тогда как бактернологическим методом их удается установить лишь до 12—-13 дней после заражения. Г. В. Жуков (1961) у Ш поросят, экспериментально зараженных в 1,5-месячиом возрасте, выделял из кала сальмонеллезные бактерии с 5-го по 14-й день исследования.
При хроническом течении сальмонеллеза Г. В. Жуков (1961) из 47 исследованных свиней положительный результат по методу Бернгофа получил у 32 животных, тогда как при остром течении были получены совиадающие результаты по метолу Беригофа и бактериологическому. Выделение возбудителя сальмонеллеза из кала ягнят сопряжено с трудностями, часто связаннымис подавлением его сопутствующей микрофлоры желудочнокишечного тракта. Однако и в этом случае лучше использовать прямой посев па элективные среды, без использования сред накопления. Бактериологическое исследование кала должно найти широкое применение; при этом целесообразно проводить посев кала после соответствующей обработки непосредственно в элективные среды, в частности в бактоагар Плоскирева. Серологическое исследование проводят с помощью реакции агглютннации, реакции непрямой гемагглютинации пили реакции связывания комплементов.
Техника постановки реакции агглютинации общепринятая. При днагностике с ес помощью иеобходимо учитывать наличие в сыворотке крови животных агглюти108
нинов после прививок. В крови телят, привитых формолвакциной, титр агглютининов резко колеблется в ‘ависимости от возраста, индивидуальных особенностей кивотных и от используемой вакцины. К. И. Холдии (1954) установил, что у большинства телят, двукратно привитых формолвакциной, титр не превышает 1:50 и 1: 100 и что он резко снижается, когда животные достигают месячного возраста. При двукратной вакцинации телят в возрасте до пяти дней формолвакциной в дозе 2—3 мл мы установили в их крови сальмонеллезные антитела в титре 1:10—1:40, а при уменьшении дозы формолвакцины до 1—1,5 мл титр снизился до 1:5—1: 20; у некоторых телят антитела вообще не выявлялись даже в титре 1:5. ° При прививке телят полужидкой квасцовой вакциной агглютинационный титр сыворотки на 9—14-й день после вакцинации равнялся 1 :320—1 : 2560. Специальные опыты К. И. Холдина (1954) показали, NTO положительные титры реакции агглютинации через 15 дней от начала заболевания устанавливаются у 19,3% животных, с 16-го до 30-го дня болезни —у 64,7%, через 2 мес —у 75,3. Агглютинины в крови у некоторых больных и переболевших сальмонеллезом телят появляются спустя 7—9 дней от начала заболевания. Р. М. Жак (1951) при исследовании крови экспериментально зараженных сальмонеллезом телят обнаружил в ней агглютинины лишь после исчезновения наиболее острых симптомов болезии (на 8—13-й день от начала заболевания).
Изучая возможность применения реакции преципитацин для прижизненной диагностики сальмонеллеза, К. И. Холдин (1954) установил, что реакция преципнтацни сыворотки с антигеном Буавена появляется у вакцинированных и больных животных примерно в те же сроки, что и реакция агглютинации, и что высота преиипитационного титра у здоровых вакцинированных, больных и переболевших телят одинаковая. Эти особенпости реакции преципитации не дают возможности использовать се в практической работе для прижизненной пиагностики сальмонеллеза. В крови больных и переболевшших сальмонеллезом телят преципитины на протякении 4—4,5 мес не обнаруживаются. В. Т. Котов (1932) испытал видоизмененную методи-
109
