полисахаридно-нолипептидной фракцией $. ‘pullorumvallinarum (сенсибилизацио эритроцитов проводили при 37°C в течение 3 ч при концентрации сенситина 2,5 мг на 1 мл 2,5%-ной взвеси эритроцитов). Реакцию ставили в микротитраторе Токачи, результаты учитывали через 3 ч. При сравнительном изучении реакции непрямой гемагглютинации и реакции агглютинации с цветным пуллорным антигеном была установлена более высокая чувствительность первой реакции. Ф. С. Киржаев и М. П. Ружанска (1979) на основаины исследования экспериментально зараженных больпых сальмонеллезом кур и цыплят установили, что кровскапельная реакция непрямой гемагглютинации является более совершенным методом прижизненной диагностики пуллороз-тифа, чем кровекапетьная реакция агглютинации. Для обнаружения сальмонеллопосительства у кур Б. М. Натензон (1978) рекомендует использовать желток (в качестве антител взамен крови) свежесиесенного яйца для кровекапельной реакции агглютинации. Наиболее пригодны из серологических методов: реакция агглютинации— применима в основном при подостром и хроническом течениях болезни у телят и поросят, а также установления бактерионосителей сальмонеллеза и переболевших животных; реакция непрямой гемагглютинации для диагностики сальмонеллеза овец и птиц; кровекапельная реакция агглютинации с цветным антигеном для выявления сальмонеллоноснтельства птиц.
Посмертный диагноз. Для постановки диагиоза на сальмонеллез следует послать в лабораторию свежий труп или внутренние органы животного. Целесообразнсе посылать труп, так как при его вскрытии лаборатория имеет возможность выявить патологоанатомические изменения и сделать посев из органов, которые могут отсутствовать при посылке только проб. В качестве патологического материала в лабораторию направляют печень, селезенку, почки, легкое, лим«фатнческие узлы, желчный пузырь и трубчатую KOCTb. В летнее время пробы, чтобы предотвратить гниение, можно консервировать в 10—15%-ном растворе поваренной соли или глицерина. Мы летом консервировали пробы в банке с 10--15%-ным солевым раствором и . М, лумелов 113 при исследовании их через 1,5—2 мес выделяли саль-
монелл. Однако пеобходимо учитывать, что при таком хранении возможно некоторое изменение свойств бактерий.И. сылки И. Архангельский (1951) рекомендует для пере1—1,5 брать пробы органов длнной 2—2,5 см, шириной дывать см,междутолщипойними несколькогигроскопическуюмиллиметровбумагу.и прокла-Подготовленные таким образом сухне кусочки растирают в лаборатории раствором илив бульономступке со истерильнымиз суспензиифизнологическимделают дробные высевы на бактериологические чашки или одной петлей на 3—5 пробирок косого агара. стикеВ методическомрекомендуется указаниииз трупа попавшеголабораторнойживотногодиагио-производить посевы на одну из сред накопления (желчнугю, Кауфмана н др.) и на одну из элективных сред (Эндо, Дригальского, Подлевского н др.). Как мы уже указывали, эффективность различных сред накоплепия неодинакова и пельзя в один ряд ставить желчь и среду Кауфмана. Вместе с тем нам представляется спорной целесообразпость использования при исследовании органов на сальмонеллезные бактерии сред накопления. Еще раз отметим, что, по нашему мнению, при наличии элективных сред использование сред накопления нецелесообразно. При прямом посеве на элективную среду необходимо брать кусочки органов величиной 1—1,5 см и делать истощающий посев. Какая же элективная среда лучше? И. И. Архангельский (1951) рекомендует элективную среду Смирнова. Методическое указание по лабораторной днагностике рекомендует среду Дригальского и др. Но эта среда хорошо работает с патентованными немецкими ингредиентами и плохо с.нашими отечественными. Кроме того, для нее необходимо каждый раз готовить ex temроге разведение кристаллвиолета, а на приготовление лакмусовой настойки расходуется большое количество спирта. Для выбора панлучшей оэлективной среды А. М. Ахмедов исследовал 115 проб, полученных от экспериментально зараженных и естественно больных сальмонеллезом животных и получил высеваемость бактерий на среде Левина из 52,7% проб, на среде Эндо — стовойиз 41,2,— наЗайденглянцасреде бактоагар— из 41,2, а на среде ШуОдно из важнейших— свойствиз 13%.элективных сред — по-
папление роста посторонней микрофлоры < (Е. со, В. proleus и др.). На рост кишечной палочки наиболее сильное действие оказывает среда Шустовой— Зайденглянца, которая подавляет рост в 93,5% проб, затем следуют бактоагар Плоскирева (в 63%), среда Эндо (в 33,8%), среда Левина (в 27,6%) и среда Дригальского (в 15,3% проб). Одновременно мы установили, что среда Шустовой — Зайденглянца подавляет также рост сальмонеллезных бактерий. При исследовании 40 проб сильно обсемененного материала сальмонеллы на бактоагаре Плоскирева и агаре Эндо в первом случае были выявлены из 35 проб (87,5%), во втором— из 20 (50%). Другой особенностью бактоагара является то, что некоторые сапрофитные микробы (Вас. пезещейсиз, Вас. subtilis) на нем вовсе не растут, а В. proteus образуют О-форму. Таким образом, для практического применения паилучшими по простоте приготовления, подавлению роста посторонней микрофлоры и четкости дифференциальной окраски являются среда Левина и бактоагар Плоскирева. К этим элективиым средам рекомендуется добавлять 1% сахарозы. После выдержки посева в течение 16—18 ч в термостате при наличии подозрительных колоний из них гоTOBAT мазок и окрашивают по Граму, ставят реакцию агглютинации на предметном стекле со смесью из равпых объемов сывороток гертнера, бреслау и суипести(ep в разведении 1:50 в физиологическом растворе. Если такая реакция окажется положительной, то ее ставят с каждой сывороткой в отдельности и определяют таким способом, к какой именно группе относится выделенная культура. Если она дает положительную реакцию агглютинации с двумя сыворотками одновреMCHHO, TO на предметном стекле ставят реакцию с разведением сывороток 1:100 и 1:1000 и следят, с какой сывороткой быстрее наступит реакция агглютинации и произойдет более полное просветление сыворотки. Эта реакция свидетельствует о наличии сальмонелл. Миогда для полной типизации можно провести более углубленное изучение биохимического и серологическоro, а также патогсиного действия выделенной культуры Иа лабораторных животных (обычно на мышах). Такой типизацией преимущественно приходится заниматься 7 115
