Charolais и герефордов. Она обнаружила, что коровы с генотипом bIGF-1- SnaBI^АА обладали большей продуктивностью молока в сутки. Такие коровы так же приносили телят с более высоким весом при рождении [289]. C. Li et al. (2004) так же исследовала эту мутацию у ангусского скота. Однако значительной ассоциации этого полиморфизма с признаками мясной продуктивности выявлено не было [290]. Siadkowska Е (2006) исследовала SnaBI - полиморфизм на польской популяции голштино-фризской породы. Ею было отмечено, что обладатели генотипа bIGF-1- SnaBI^АВ характеризуются более высокой продуктивностью молочного жира и белка по сравнению с bIGF1- SnaBI^АА и bIGF-1- SnaBI^ВВ генотипами [287].

Исследования ассоциации полиморфизма bIGF-1- SnaBI с признаками молочной продуктивности проводились различными учеными на разных породах крупного рогатого скота. Так, Mehmannavaz Y. et al. [291], Bonakdar Е. et al. [292] показали, что животные иранской популяции голштинского скота с генотипом bIGF-1- SnaBI^АВ отличались от особей с гомозиготными генотипами более высоким содержанием жира и белка в молоке. Кроме того, Siadkowska Е. et al. [287] также выявила положительную ассоциацию генотипа bIGF-1- SnaBI^АВ с высоким процентом молочного жира и белка у польских популяции коров голштинской породы.

Помимо связи полиморфизма гена b IGF-1- SnaBI с молочной продуктивностью, имеются данные о его влиянии и на признаки мясной продуктивности. Ge W. et al. при исследовании семьсот шестидесяти особей ангусской породы обнаружил, что животные с генотипом b IGF1- SnaBI^ВВ отличаются от животных с другими генотипами более высоким среднесуточным приростом в первые двадцать дней после отъема [281]. Szewczuk M. et al. выявил связь генотипа b IGF1- SnaBI^ВВ с более высокой массой тела у 2-месячных телят голштино-фризской породы, а также с последующим выходом молока, жира и белка [293]. X. Dela Rosa Reyna et al. отметил положительную ассоциацию генотипа b IGF1- SnaBI^ВВ с такими чертами мясной продуктивности, как масса туши и суточный привес у мексиканского скота [294]. Curi R.A et al. обнаружил, что у зебу с генотипом b IGF1- SnaBI^ВВ наблюдались большие подкожные жировые отложения и масса тела, чем у особей с другими генотипами [295]. Li C. et al. отметил, что генотип b IGF1- SnaBI^ВВ у крупного рогатого скота породы Bos Taurus связан с высокими показателями массы тела при отъеме [290].

Некоторыми исследователями отмечается положительная ассоциация генотипа b IGF1- SnaBI^АВ с чертами мясной продуктивности у крупного рогатого скота. Так, Othman E. et al. обнаружил положительные ассоциации генотипа b IGF1- SnaBI^АВ с живым и убойным весом, а также с весом жира и мяса ценных отрубов египетских буйволов [296]. Siadkowska E. et al. также подтвердила ассоциацию полиморфизма b IGF1- SnaBI с признаками мясной продуктивности польской популяции голштино-фризского скота. Так, особи с генотипом b IGF1-

SnaBI^АВ характеризовались высокой живой массой тела при забое и высоким весом жира и мяса ценных отрубов [287].

Приведенные литературные данные подтверждают связь полиморфизма b IGF1- SnaBI с признаками мясной продуктивности крупного рогатого скота, причем наиболее благоприятным является аллель b IGF1- SnaBI^В .

Новый полиморфизм, b IGF1- TasI был выявлен в 2007 г. S. Zych et.al у представителей голштино-фризской породы. Полиморфизм депонирован под номером DQ975234 GenBank. А→С трансверсия наблюдается в положении -193 внутри сигнальной ААТА последовательности, расположенной в пределах микросателлита гена бычьего инсулин-подобного фактора-1. Ген b IGF1 экспрессируется в разных тканях (включая мышечную и ткань молочной железы) [297] в виде двух классов мРНК, производимых с Р1 и Р2 промоторов соответственно. Данный полиморфизм области динуклеотидных повторов [СА]n, локализованный в 5`-регионе, предположительно может быть связанным с регуляторными элементами Р1 промотора. К настоящему времени данных о его ассоциации с признаками молочной или мясной продуктивности нет.

Таким образом, является несомненным интерес, который представляет исследование гена IGF-1 в роли гена кандидата с учетом его участия в процессе лактации. С точки зрения поиска полиморфных сайтов, ассоциированных с концентрацией IGF-I в крови и влияющих на проявление признаков продуктивности, наибольший интерес представляют два промоторных региона, чувствительная к гормону роста область внутри второго интрона и экзоны, кодирующие белок.

Контрольные вопросы:

1. Какие обнаружены полиморфные варианты гена инсулиноподобного

фактора роста-1?

1. Какой полиморфизм IGF-1 является наиболее изученным?

2. Молекулярная основа bIGF-1 -SnaBI полиморфизма.

3. Какая аллель полиморфизма b IGF1- SnaBI является наиболее

благоприятной для мясной продуктивности?

1. Ученые, исследовавшие b IGF-1- SnaBI полиморфизм.

3 Исследование полиморфных генов молочной и мясной продуктивности крупного рогатого скота методом ПЦР-ПДРФ

Стандартным методом выявления полиморфизма структурных генов на уровне ДНК является ПЦР-анализ с последующим рестрикционным гидролизом образующихся фрагментов (ПЦР-ПДРФ). Суть метода заключается в амплификации определенного фрагмента ДНК, содержащего анализируемую точковую мутацию, с последующим расщеплением наработанного ампликона соответствующей рестриктазой для идентификации аллелей анализируемого гена. Он рутинно используется для диагностики аллельного полиморфизма ряда генов-кандидатов, связанных с локусами хозяйственно-полезных признаков сельскохозяйственных животных [298].

Благодаря таким свойствам, как простота и надежность, данный метод получил широкое распространение и до сих пор популярен, хотя и имеет некоторые ограничения – во-первых, он позволяет детектировать только полиморфизмы единичных нуклеотидов, расположенные в сайтах рестрикции, а во-вторых, годится лишь для детекции уже известных полиморфизмов единичных нуклеотидов [299].

Анализ полиморфизма длины рестрикционных фрагментов (ПДРФ-анализ) состоит из нескольких стадий. Прежде всего, проводят выделение геномной ДНК. Далее ДНК-фрагмент, содержащий исследуемую последовательность, амплифицируют с помощью полимеразной цепной реакции. Затем амплифицированный фрагмент гидролизуют подходящей рестриктазой. Рестрикт разделяют гель-электрофорезом и после проводят идентификацию фрагментов ДНК.

Способ ПДРФ-анализа обширно используют при молекулярногенетических изучениях популяций, так как присутствие в геноме индивида рестрикционных фрагментов ДНК известного размера, представляет собой отличный генетический маркер и в то же время фенотипический признак, очень близко связанный с генотипом особи. Что дает возможность контролировать распространение данного маркера в популяции, передавая его из поколения в поколение и используются для составления генетических карт изученных особей классическими генетическими методами. ПДРФ – маркеры из-за их строгой привязки к известным локусам гена не проигрывают по информационному содержанию общим биохимическим маркерам и часто становятся более подходящие, чем сложные фенотипические признаки (например, окрас радужки глаза, окрас шерстного или волосяного покрова, внешний вид листа или цветка у растений), которые определяются большим количеством локусов генов [База знаний по биологии человека. ПДРФ-анализ (RFLP - Restriction Fragment Length Polymorphism) метод [300].