различных стадиях лактации при определенном физиологическом состоянии. Оценка по данной шкале обращает внимание на такие части, как грудной отдел, поясничный отдел, круп, таз, корень основания хвоста и кости [186].
-
Общее состояние животных и оценка поедаемости кормов: до и во время кормления. Учитывали общее состояние животного, проявляемый интерес и активность. Поедаемость корма оценивали как хорошую, удовлетворительную, плохую или отсутствующую. Вялых, неактивных животных регистрировали отдельным пунктом, с последующим наблюдением.
-
Деятельность рубца оценивали по количеству рубцовых сокращений: у каждой коровы в течение двух минут, в области голодной ямки [69].
-
Обследование конечностей. Производили общий визуальный осмотр конечностей, при выявлении патологии (деформации копыта, нагноения сустава, ран и т. д.) регистрировали (переднее, либо заднее копыто, правое или левое) в журнале наблюдений.
-
Границы печени – путем осмотра, баллотирующей и проникающей пальпации, выявляли факты резкого ее увеличении (выпячивание правого подреберья), а также болезненности [74].
-
Исследование температуры, пульса и дыхания. Температуру тела у животных измеряли ректально, ртутным термометром в течение 8–10 минут, пульс – в области корня хвоста (подхвостовая артерия). Частоту дыхания подсчитывали по количеству движений крыльев носа [69].
Анализ мочи проводили непосредственно в хозяйстве, во всех опытных группах, на всех этапах исследований. В полученных образцах определяли рН и наличие кетоновых тел. Мочу брали в утренние часы до кормления, с помощью стимуляции мочевого пузыря, либо поглаживания наружных половых органов. рН мочи измеряли универсальным иономером ЭВ – 74, при этом за норму принимали диапазон значений 7,6–8,6. Снижение рН мочи ниже указанного предела считали признаком ацидоза. Кетоновые тела, как один из признаков кетоза в моче, определяли с помощью тестполосок keto-PHAN (PLIVA-Lachema Diagnostik as. r. o., Brno, CZ). Для этого в образцы с мочой опускали тест-полоску и через 1–2 мин анализировали, ориентируясь на степень окрашивания. Проба значительно чувствительнее к ацетоуксусной кислоте, чем к
ацетону. Цветовая шкала сравнения на этикетке тубуса отражает концентрацию ацетоуксусной кислоты в моче. Окрашивание полоски в розовый или малиновый цвет указывало на факт кетоза [121].
Забор крови, для изучения показателей биохимического и аминокислотного анализа, проводился согласно установленному плану исследований от каждого животного за 8 дней до отела и на 2, 12, 24, 45, 74 дни после отела. Совместно с ветеринарными специалистами хозяйства кровь для исследования отбирали до утреннего кормления, в специальные вакуумные пробирки фирмы Veno safe Terumo (Бельгия), с использованием одноразовых игл. Забор крови производили из-под хвостовой вены. При этом важно учитывать по какой методики и приборами работает лаборатория анализирующая кровь на биохимические и другие показатели. Устаревшие методики и нормативные показатели, используемые в качестве диапазона рекомендуемых норм, могут не отвечать реальной картине физико-биохимического статуса животного.
Оценку количественного содержания свободных аминокислот в плазме крови проводили методом жидкостной ионообменной хроматографии, на анализаторе ААА-400 (Чехия), по программе физиологических жидкостей. Для получения препаратов аминокислот использовали 1–2 мл свежей плазмы крови. Приготовление проб осуществляли по запатентованной методике [76].
Таким образом, тщательная подготовка к общеклиническим и специальным исследованиям позволяет своевременно диагностировать состояние животного при разном уровне обеспеченности организма белком.
На протяжении поставленного нами опыта потерь среди коров по метаболическим и другим заболеваниям не было.
Физиологические показатели (температура тела, частота сердечных сокращений, количество сокращений рубца) животных из 1-й и 2-й опытных групп, находились в пределах и собой не физиологической нормы существенно между различались (таблица 17). Частота дыхания у коров из 1-й группы достоверно (Р < 0,05) была более частой, что, по-видимому, свидетельствует о более активных окислительных процессах. Температура тела и частота сердечных сокращений также
оказались выше (на одну единицу) от показателей 2-й группы. Упитанность животных, в обоих группах, на 60-й день после отела, составила три балла в среднем, что является нормой для кондиции коров данного периода. Однако при обследовании границ печени, у двух коров из 2-й группы, выявлено ее увеличение и видимая болезненность при пальпировании правого подреберья, что возможно связано с более высоким уровнем концентратов и доли сырого белка в нем.
Таблица 17 – Физиологические показатели, n = 5
| Показатель | 1-я группа | 2-я группа | Норма |
|---|---|---|---|
| Температура тела, °С | 38,02 ± 0,08 | 37,93 ± 0,06 | 37,5–39,5 |
| Сердечный пульс в минуту | 57,1 ± 0,34 | 56,3 ± 0,34 | 60–80 |
| Частота дыхания | 24 ± 0,06 | 23,05 ± 0,05 | 12–24 |
| Количество рубцовых сокращений за 2–3 мин, в среднем | 2,5 | 2,7 | 2,4 |
| Упитанность на 60-й день после отела, баллов | 3,2 | 3,1 | 3,3 |
| Увеличение границ печени (голов) | – | 2 | – |
Анализ мочи не выявил существенного влияния отличного уровня белка в рационах опытных групп на среднестатистические показатели рН. В обеих группах они были близкими (рисунок 5). Боле того, прослеживается определенная закономерность, в показателях рН мочи, на протяжении транзитного периода. Было отмечено, что динамика рН мочи, как при пониженном, так и высокой доли концентратов и белка в рационе, на всем протяжении переходного периода и пика лактации, была сходной. Между тем, период после отела (0–21 дней) у коров из первой и второй групп, характеризовался наиболее низкими показателями (рН мочи = 7,8) и отличался, от периодов предродового и пика лактации, в среднем на 0,6 единиц. Кроме того, на 45–74-й день лактации наблюдали резко щелочную реакцию мочи (рН = 8,2–8,4) в обеих группах, не зависимо от уровня концентратов в рационе.
