выглядят исследования по определению в крови доноров концентрации иммуноглобулинов. Их содержание в пределах 13...14 и 3...5 мг/мл (JgG и JgM) с определенной достоверностью свидетельствовало о выходе не менее 70% полноценных эмбрионов от общего числа полученных. Леткевич Л.Л. /50/ выявил положительную связь между концентрацией общего холестерина в молоке коров и числом пригодных к пересадке эмбрионов. Приведенные данные подтверждаются и результатами других работ /112/, которые утверждает, что при отборе коров-доноров для трансплантации необходимо определять состояние обмена веществ в основном по трем показателям: концентрации холестерина (100... 170 мг%), каротина (не менее 300 мг%) и резервной щелочности (от 500 до 600 мг%).
Таким образом, характеристика интенсивности и качества обменных процессов, протекающих в организме животного, могут служить индикатором восприимчивости яичников к гонадотропинам.
Значительный объем исследований был проведен и в направлении прогноза эмбриопродуктивности по концентрации в крови и молоке гормонов. По результатам исследований Рябых В.П. /83/ была установлена положительная коррелятивная связь между уровнем прогестерона и эстрадиола в крови и молоке перед гормональной обработкой и общим выходом эмбрионов. Однако с уровнем качественных зародышей данные показатели не коррелировали. В то же время Смыслова Н. /94/ считает, что оптимальным уровнем прогестерона у коров-доноров перед обработкой следует считать 2 и более пг/мл.
Тесно коррелировал с выходом биологически полноценных эмбрионов и уровень ФСГ перед началом гормональной стимуляции, а также длительность и интенсивность выделения эндогенного лютеинизирующего гормона при завершении гормональной обработки. Имеются отдельные работы и по изучению взаимосвязи рН буферного раствора после извлечения эмбрионов и их качеством. Коэффициент корреляции между рН буферного раствора и
долей, жизнеспособных эмбрионов составил +0,88. И своих исследованиях мы изучали динамику секреции прогестерона, эстрадиола, тестостерона, тироксина, кортизола, ФСГ, ЛГ и пролактина у коров, не реагирующих на гормональную обработку, со средней и высокой степенью суперовуляции, в период перед гонадотропной стимуляцией яичников (табл. 16).
По результатам суперовуляции животные были разделены ни три группы:
I - не реагирующие на обработку (до 2-х желтых тел);
II - животные с числом желтых тел от 3-х до 7-ми;
III - животные с высокой степенью суперовуляции (от 9 до 12 желтых тел) установлена достоверная взаимосвязь ответной реакции яичников с концентрацией прогестерона на 10 й день, с ФСГ, ЛГ и кортизоном на шестой, а с пролактином на 6-ой и нулевой день спонтанного полового цикла.
Таким образом, концентрация вышеназванных гормонов в соответствующий период предшествующий гормональной обработке может быть использована в качестве прогнозного показателя результатов суперовуляции.
Однако наиболее информативным критерием оценки качества вызывания суперовуляторной реакции у коров является количество пригодных к пересадке эмбрионов.
По результатам вымывания эмбрионов животные были разделены на следующие группы:
I - до 2-х жизнеспособных эмбрионов (п=9);
II - 3-7 жизнеспособных эмбрионов (п=17);
III - более 7 жизнеспособных эмбрионов (п=8).
Высокодостоверная взаимосвязь уровня выхода жизнеспособных зародышей с концентрацией гормонов установления на 0-й, 6-й и 7-й дни полового цикла. На 0-й день с концентрацией эстрадиола и тироксина на 6-й день с уровнем кортизола и на 7-й день с уровнем пролактина. При этом уровень эстрадиола и кортизола снижался с 45,5 пг/мл и 7,19 пг/мл при выходе до 2 полноценных зародышей до 8,48 пг/мл и 2,43 пг/мл при выходе более 7 жизнеспособных эмбрионов, соответственно. А тироксина и пролактина увеличился с 29,51
пг/мл и 0,8 пг/мл до 45,84 пг/мл и 2,61 пг/мл при низком и высоком выходе эмбрионов соответственно.
Таблица 16 - Влияние динамики секреции гормонов у коровдоноров в период, предшествующий гормональной обработке, на уровень суперовуляции
| Исследуемый гормон | Реакция яичников | п | Дни полового цикла | |||
|---|---|---|---|---|---|---|
| Исследуемый гормон | Реакция яичников | п | 0 | 6 | 7 | 10 |
| Прогестерон, нг/мл | 0,17 ±0,06 | 0,81 ±0,24 | 1,09 ±0,2 | 2,76±0,29** | ||
| Эстрадиол, пг/мл | 19,14 ±8,89 | 37,97 ± 16,93 | 66,55±26,2 | * | ||
| Тестостерон, нг/мл | 0,11 ±0,03 | 0,12 ±0,03 | 0,18 ±0,05 | 79,63±12,57 | ||
| Кортизол, нг/мл | 9,73±4,44 | 0,36 ± 0,27* | 4,68 ±2,33 | 0,22 ± 0,04 | ||
| Тироксин, нг/мл | до 2 | 6 | 31,24 ±2,91* | 30,53 ± 2,94 | 36,27±3,62 | 13,68 ±7,94 |
| ФСГ, МЕ/л | 0,48 ±0,12 | 0,29 ± 0,06 | 0,41 ±0,09 | 31,23 ±4,66 | ||
| ЛГ, МЕ/л | 1,58 ±0,14 | 1,29 ±0,09 | 1,15 ±0,04 | |||
| Пролактин, нг/мл | 1,96+0,33 | 1,88+0,28* | 1,42 ±0,28 | |||
| Прогестерон, нг/мл | 0,29 ±0,13 | 1,22 ±0,27 | 1,76+0,32 | 3,94±0,41** | ||
| Эстрадиол, пг/мл | 40,12 ±26,23 | 54,3 ± 16,3 | 53,02±15,0 | * 80,25 | ||
| Тестостерон, нг/мл | 0,14 ±0,02 | 0,19 ±0,02 | 0,16 ±0,01 | ±19,96 | ||
| Кортизол, нг/мл | 9,85 ±3,97 | 6,78 ±2,61* | 7,89 ±2,16 | 0,19 ±0,02 | ||
| Тироксин, нг/мл | 3-7 | 17 | 37,72 ± 2,78 | 29,98 ± 2,22 | 31,23±1,61 | 14,93 ±8,5 |
| ФСГ, МЕ/л | 0,99 ±0,25 | 0,38 ±0,07 | 0,55 ± 0,08 | 28,17 ±2,87 | ||
| ЛГ, МЕ/л | 1,55 ±0,09 | 1,06 ±0,05* | 1,07 ±0,09 | |||
| Пролактин, нг/мл | 1,25+0,16** | 2,99 ± 0,24** | 1,12 ±0,54 | |||
| Прогестерон, нг/мл | 0,33 ±0,14 | 1,62 ±0,52 | 2,05 ± 0,56 | 3,43 ±0,66 | ||
| Эстрадиол, пг/мл | 15,39 ±3,41 | 18,77 ±7,21 | 33,38±5,76 | 59,73 ±22,16 | ||
| Тестостерон, нг/мл | 0,19 ±0,03 | 0,13 ±0,01 | 0,13 ±0,01 | 0,21 ±0,06 | ||
| Кортизол, нг/мл | 6,68±4,22 | 5,23 ±2,01* | 6,19 ±1,94 | 8,27 ± 2,69 | ||
| Тироксин, нг/мл | 9-12 | 11 | 46,71 ±6,09* | 35,37 ±2,16 | 36,57±2,46 | 32,92 ±3,21 |
| ФСГ, МЕ/л | 0,81 ±0,14 | 0,47 ±0,02** | 0,37 ± 0,04 | |||
| ЛГ, МЕ/л | 1,41 ±0,12 | 1,03 ±0,07* | 1,82 ±0,39 | |||
| Пролактин, нг/мл | 2,13+0,27** | 2,83 ±0,41** | 2,83 ±0,71 |
Так же установлена хотя и не достоверная но положительная связь между уровнем прогестерона непосредственно перед обработкой (10 день) и выходом
