обнаружили данных о тонической секреции ФСГ, пролактина, тестостерона, кортизола, тироксина в период формирования суперовуляторной реакции, хотя эти гормоны играют значительную роль в регуляции фолликулогенеза у коров.
2.3.5. Динамика гормональной секреции у коров в зависимости от типа применяемого гонадотропина
В контроле эффективности действия экзогенных гонадотропинов, применяемых с целью вызывания множественной овуляции у коров, важную роль играет изучение изменений гормонального статуса коров доноров эмбрионов в период стимуляции.
В наших опытах изучалось влияние ФСГ-П, фолликотропина, ФСГ-Б и фоллитропина на стероидопродуцирующую способность яичников, функцию гипофиза, коры надпочечников и щитовидной железы, а также возможность прогнозирования результатов стимуляции множественной овуляции у коров на основе анализа динамики секреции гормонов яичника, гипофиза, щитовидной железы и надпочечников в исследуемые периоды.
Животные были разделены на четыре группы:
I – обработанные ФСГ-П (США), n=8;
II – обработанные ФСГ-Б (БелНИИЖ), n=10;
III – обработанные фолликотропином (Чехия), n=7; IV – обработанные фоллитропином (Литва), n=9.
Достоверные различия концентрации исследуемого гормона обнаружены на 10 день полового цикла до введения гонадотропина у животных I и II, II и III групп (Р < 0,05); через 3 часа после введения гонадотропина на 10 день полового цикла между I и IV, II и IV группами (Р < 0,05); на 11-й день полового цикла между II и IV группами; в день охоты стимулированного цикла между I и II, II и III, II и IV группами (Р < 0,05); на 6-й день стимулированного цикла между I и II,II и IV, III и IV группами
(Р < 0,05; 0,01; 0,001); на 7-й день стимулированного цикла между I и IV, III и IV группами (Р < 0,05; 0,01).
Анализ уровня секреции прогестерона в период, предшествующий гормональной обработке (0, 6, 7 и 10-й дни полового цикла) не показал прямой достоверной зависимости реакции яичников коров на вводимые гонадотропные препараты от концентрации прогестерона. Так, наилучший результат по количеству овуляций достигнут при использовании ФСГ-П (США), в то время как содержание прогестерона у животных этой группы не превышало 2,59 ± 0,56 нг/мл. Напротив, у коров с концентрацией прогестерона 4,57 ± 0,63 нг/мл и 3,61 ± 0,35 нг/мл на день обработки при использовании ФСГ-Б (БелНИИЖ) и фоллитропина (Литва), соответственно, наблюдалась более низкая ответная реакция яичников на гормональную обработку.
Результаты наших исследований согласуются с данными Решетниковой Н.М. и др. [79], Solti L. [246], Schams D. [438], Рябых В.П. [83], Бахитова К.И., Плишкиной К.И. [7], Walton J.S., [266], Bevers M.M. [125]. Анализируя характер секреции прогестерона в период обработки (10-13-й дни полового цикла), можно заключить, что резкое повышение концентрации прогестерона через 3 часа после введения экзогенного гонадотропина в день начала обработки оказывает негативное влияние на процессы фолликулогенеза. Так, при использовании фоллитропина наблюдалось достоверное увеличение содержания прогестерона с 3,61 ± 0,35 до 5,58 ± 0,35 нг/мл (Р < 0,05) в течение 3-х часов после инициации суперовуляции.
При использовании ФСГ-Б (БелНИИЖ) наблюдалось угнетение прогестеронсинтезирующей способности яичников подопытных животных, о чем свидетельствует последовательное снижение концентрации прогестерона в крови животных в период обработки.
Плавное увеличение содержания прогестерона в крови коров до 11-го дня полового цикла и снижение его концентрации к 0-му дню стимулированного цикла соответствует получению
более высокой степени суперовуляции и большего количества пригодных к пересадке эмбрионов при использовании ФСГ-П и фолликотропина, по сравнению с ФСГ-Б и фоллитропином.
Необходимо подчеркнуть, что у животных, которым вводили ФСГ-П и фолликотропин, не обнаруживается значительного повышения концентрации прогестерона в 0 день стимулированного полового цикла, по сравнению с аналогичным днем естественного полового цикла. В то же время, ФСГ-Б вызывает уменьшение этого показателя с 0,32 ± 0,17 до 0,18 ± 0,03 нг/мл, а фоллитропин – достоверное увеличение концентрации прогестерона в указанные дни с 0,13 ± 0,06 до 0,35 ± 0,06 нг/мл (Р < 0,05).
Повышение содержания прогестерона в крови животных на 6 и 7-й дни стимулированного полового цикла происходит в соответствии со степенью ответной реакции яичников на гормональную обработку.
Увеличение концентрации прогестерона у животных I группы к 6-му дню стимулированного полового цикла до 10,4 нг/мл характеризует более низкий выход полноценных эмбрионов от числа извлеченных, по сравнению с животными III группы, у которых концентрация прогестерона в этот день не превышала 6,77 нг/мл (70,6 и 77,4% соответственно).
Полученные в наших исследованиях данные соответствуют результатам, описанным и в других исследованиях [129, 244]. Резкое увеличение уровня прогестерона вскоре после введения экзогенного гонадотропина, повышенный уровень гормона в период охоты, по сравнению со спонтанной, приводят к снижению результатов вызывания суперовуляции. Результаты наших исследований согласуются также с данными Хилькевича С.Н. и др. [12], которые подчеркивают негативное воздействие остаточной активности желтых тел на развитие и оплодотворение яйцеклеток.
Динамика прогестерона в период стимуляции суперовуляции соответствует результатам аналогичных исследований, проведенных Niemann H. [226], Peters A.R. [232], Маасом А.О. [53]. Уровни прогестерона в период естественного
