Таблица 41 - Признаки, определяющие стадию развития эмбриона
| Стадия развития | Сокращен ное название | n клеток | Ø, мкм | Признаки |
|---|---|---|---|---|
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
| Начальная стадия дробления | 2-16 | 140-170 | Бластомеры круглой или овальной формы, располагаются свободно. | |
| МОРУЛЫ | Мо | Стадия компактизации: постепенное укрепление клеточных контактов. | ||
| Ранняя морула | Mo I | 16-32 | 140-170 | Начало компактизации: скопление клеток равномерное, бластомеры одинаковые по размеру, перивителлиновое пространство свободное от отдельных бластомеров, плазмы и других включений. |
| Поздняя морула | Mo II | 32-64 | 140-170 | Завершение компактизации: клеточный комплекс равномерный, крайние бластомеры одинаковой величины и наполнения, перивителлиновое пространство свободное от отдельных бластомеров, плазмы и других включений. |
| БЛАСТОЦИСТЫ | Бл | Образование эмбриобласта, трофобласта и бластополости. | ||
| Ранняя бластоциста | Бл I | 64-130 | 140-170 | Маленькая, преимущественно эксцентрическая бластополость в форме щели, различим эмбрио- и трофобласт. |
| Продолжение таблицы 41 | ||||
|---|---|---|---|---|
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
| Поздняя бластоциста | Бл II | 64-130 | 140-200 | Эмбриобласт локализован, трофобласт равномерный, уменьшение перивителлинового пространства вследствие расширения бластополости. |
| Экспандированная бластоциста | Бл III | 64-130 | 140-200 | Эмбриобласт имеет четкие границы, из-за увеличения размеров бластополость расширяется и истончает зону пеллюцида. |
| Полностью | Эмбриобласт обозначен четко, расширение и | |||
| экспандированная | Бл IV | 130-200 | 180-220 | истончение зоны пеллюцида, |
| бластоциста | максимально увеличена бластополость. | |||
| Бластоциста выходящая из зоны пеллюцида | Бл IV | Более 200 | 180-220 | Происходит наклевывание и разрыв зоны пеллюцида. Эмбрио- и трофобласт начинает выходить из зоны. |
| Бластоциста вышедшая из зоны пеллюцида | Бл V | 200-800 | 200-800 | Шарообразная форма. Эмбрио- и трофобласт отчетливо различимы. Зона пеллюцида отсутствует. |
Для определения полноценности и жизнеспособности зародышей применяют следующие методы: а) визуальную морфологическую оценку, б) прижизненное окрашивание, в) культивирование вне организма в течение 24-28ч. цитологическую и цитогенетическую оценку. Наиболее распространена визуальная оценка под микроскопом в проходящем свете или через фазовый контрастный.
В таблице 42 представлены данные анализа морфологической оценки эмбрионов крупного рогатого скота после их извлечения в различные сроки после осеменения.
При извлечении эмбрионов на 6 день цикла около половины эмбрионов (49,7%) находилось на стадии ранней морулы, на седьмой день на стадии поздней морулы и ранней
бластацисты (78,5%), на 8-й день на стадии экспондированной бластоцисты (73,8%), на девятый день 21,7% эмбрионов начали выходить из зоны, а 45,1% уже вышли из зоны. Процент отставших в развитии по этим срокам составило 30,1% 10,1% 7,5%; 5,7% на 6, 7, 8 и 9 день, соответственно. Из чего следует, что наиболее целесообразно проводить извлечение зародышей на 7-8 день, когда получаем наибольший выход эмбрионов пригодных к пересадке или криоконсервированию.
Таблица 42 - Стадия развития эмбрионов в зависимости от срока после осеменения
| Эмбрионы по стадиям, раз | Срок после осеменения | |||
|---|---|---|---|---|
| 6 | 7 | 8 | 9 | |
| 2-клеточные | 4,7 | 2,5 | 2,1 | 1,7 |
| 4-клеточные | 8,2 | 3,1 | 2,1 | 1,5 |
| 8-клеточные | 7,4 | 2,7 | 1,0 | 1,3 |
| 16-клеточные | 9,8 | 1,8 | 2,3 | 1,2 |
| Ранняя морула | 49,7 | 6,5 | 3,5 | 2,9 |
| Поздняя морула | 20,0 | 43,9 | 2,1 | 1,7 |
| Ранняя бластоциста | 0,2 | 34,6 | 11,8 | 2,8 |
| Экспондированная бластоциста | - | 4,8 | 73,8 | 10,3 |
| Вылупляющаяся бластоциста | - | 0,1 | 1,3 | 21,7 |
| Вылупившаяся бластосиста | - | - | - | 45,1 |
7.5.6. Оценка жизнеспособности эмбрионов методом культивирования
Одним из методов определения биологической полноценности эмбрионов является их культивирование вне организма (in vitro) /80/ в различных солевых растворах и синтетических питательных средах. В наших исследованиях мы использовали фосфатно-солевой буфер Дюльбекко, раствор Хенкса и питательную среду ТС-99 отечественного производства с добавлением 20% фетальной или эстральной сыворотки (табл. 43).
