введения простагландина составил 5,08 нмоль/л с колебаниями от 4,0 до 7,4 нмоль/л, за сутки он снизился до 1,26 нмоль/л. В первый и второй дни цикла уровень эстрадиола составил 0,210,23 нмоль/л, а на 3-4-й и 5-й день был на одном уровне 0,130,11 нмоль/л.
Челецкий М.М. и др. [16] отмечают значительную вариабельность концентрации эстрадиола в крови суперовулировавших коров, что указывает на неравномерность созревания фолликулов. В период роста и развития множественных фолликулов концентрация эстрадиола имела тенденцию к увеличению (в 5-15 раз). Этими же авторами подчеркивается значительная роль тестостерона в процессе суперовуляции. С появлением желтых тел его концентрация возрастала в 2-3 раза. В исследованиях Dieleman S.J. [143] описано снижение концентрации эстрадиола в периферической крови после пика ЛГ, что является результатом ингибирования пиком ЛГ синтеза андростендиона, который у коров является важнейшим субстратом ароматизации в эстрогены.
Имеются данные [360], что повышенный уровень пролактина или кортизола во время стимуляции суперовуляции могут ингибировать секрецию гонадотропинов и, тем самым, отрицательно влиять на реакцию яичников.
В исследованиях Леткевич Л.Л. [50] отмечается существенное отличие содержания кортизола и тироксина в естественном и стимулированном половом цикле. В суперовуляционном цикле наблюдается увеличение содержания кортизола в крови (19,82 против 9,95 нг/мл) и тироксина (4,18 против 2,91 мкг/100 мл).
Как показывают результаты многих исследований, экзогенное введение гонадотропинов с целью стимуляции множественной овуляции у коров, вызывает изменения секреторной активности желез внутренней секреции, участвующих в регуляции репродуктивной функции. Большинство работ посвящены изучению динамики прогестерона, эстрадиола и ЛГ у коров в период гормональной стимуляции яичников. В доступной нам литературе мы не
обнаружили данных о тонической секреции ФСГ, пролактина, тестостерона, кортизола, тироксина в период формирования суперовуляторной реакции, хотя эти гормоны играют значительную роль в регуляции фолликулогенеза у коров.
2.3.5. Динамика гормональной секреции у коров в зависимости от типа применяемого гонадотропина
В контроле эффективности действия экзогенных гонадотропинов, применяемых с целью вызывания множественной овуляции у коров, важную роль играет изучение изменений гормонального статуса коров доноров эмбрионов в период стимуляции.
В наших опытах изучалось влияние ФСГ-П, фолликотропина, ФСГ-Б и фоллитропина на стероидопродуцирующую способность яичников, функцию гипофиза, коры надпочечников и щитовидной железы, а также возможность прогнозирования результатов стимуляции множественной овуляции у коров на основе анализа динамики секреции гормонов яичника, гипофиза, щитовидной железы и надпочечников в исследуемые периоды.
Животные были разделены на четыре группы:
I – обработанные ФСГ-П (США), n=8;
II – обработанные ФСГ-Б (БелНИИЖ), n=10;
III – обработанные фолликотропином (Чехия), n=7; IV – обработанные фоллитропином (Литва), n=9.
Достоверные различия концентрации исследуемого гормона обнаружены на 10 день полового цикла до введения гонадотропина у животных I и II, II и III групп (Р < 0,05); через 3 часа после введения гонадотропина на 10 день полового цикла между I и IV, II и IV группами (Р < 0,05); на 11-й день полового цикла между II и IV группами; в день охоты стимулированного цикла между I и II, II и III, II и IV группами (Р < 0,05); на 6-й день стимулированного цикла между I и II,II и IV, III и IV группами
(Р < 0,05; 0,01; 0,001); на 7-й день стимулированного цикла между I и IV, III и IV группами (Р < 0,05; 0,01).
Анализ уровня секреции прогестерона в период, предшествующий гормональной обработке (0, 6, 7 и 10-й дни полового цикла) не показал прямой достоверной зависимости реакции яичников коров на вводимые гонадотропные препараты от концентрации прогестерона. Так, наилучший результат по количеству овуляций достигнут при использовании ФСГ-П (США), в то время как содержание прогестерона у животных этой группы не превышало 2,59 ± 0,56 нг/мл. Напротив, у коров с концентрацией прогестерона 4,57 ± 0,63 нг/мл и 3,61 ± 0,35 нг/мл на день обработки при использовании ФСГ-Б (БелНИИЖ) и фоллитропина (Литва), соответственно, наблюдалась более низкая ответная реакция яичников на гормональную обработку.
Результаты наших исследований согласуются с данными Решетниковой Н.М. и др. [79], Solti L. [246], Schams D. [438], Рябых В.П. [83], Бахитова К.И., Плишкиной К.И. [7], Walton J.S., [266], Bevers M.M. [125]. Анализируя характер секреции прогестерона в период обработки (10-13-й дни полового цикла), можно заключить, что резкое повышение концентрации прогестерона через 3 часа после введения экзогенного гонадотропина в день начала обработки оказывает негативное влияние на процессы фолликулогенеза. Так, при использовании фоллитропина наблюдалось достоверное увеличение содержания прогестерона с 3,61 ± 0,35 до 5,58 ± 0,35 нг/мл (Р < 0,05) в течение 3-х часов после инициации суперовуляции.
При использовании ФСГ-Б (БелНИИЖ) наблюдалось угнетение прогестеронсинтезирующей способности яичников подопытных животных, о чем свидетельствует последовательное снижение концентрации прогестерона в крови животных в период обработки.
Плавное увеличение содержания прогестерона в крови коров до 11-го дня полового цикла и снижение его концентрации к 0-му дню стимулированного цикла соответствует получению
