Воспроизводство крупного рогатого скота

1. Nogueira G. Половое созревание у южноамериканского Bos indicus (зебу).Anim Reprod Sci 2004;82–83:361–372.

2. Short R, Bellows R. Взаимосвязь между приростом массы тела, возрастом полового созревания и воспроизводительными показателями тёлок.J Anim Sci 1971;32:127–131.

3. Arije G, Wiltbank J. Возраст и масса тела при половом созревании у тёлок герефордской породы.J Anim Sci 1971;33:401–406.

4. Marston T, Lusby K, Wettemann R. Влияние рациона после отъёма на возраст и массу тела при половом созревании и умеренную продуктивность тёлок.J Anim Sci 1995;73:63–68.

5. Gasser C, Behlke E, Grum D, Day M. Влияние сроков начала кормления высококонцентратным рационом на рост и наступление половой зрелости у рано отнятых тёлок. J Anim Sci 2006;84:3118–3122.

6. Gasser C, Bridges G, Mussard M, Grum D, Kinder J, Day M. Стимуляция раннего полового созревания у тёлок. III. Ускоренное ослабление отрицательной обратной связи, посредством которой эстрадиол регулирует секрецию лютеинизирующего гормона. J Anim Sci 2006;84:2050–2056.

7. Maciel M, Zieba D, Amstalden M, Keisler D, Neves J, Williams G. Длительное введение рекомбинантного овечьего лептина растущим тёлкам мясных пород: влияние на секрецию LH, уровень метаболических гормонов и сроки наступления половой зрелости. J Anim Sci 2004;82:2930–2936.

8. Casida L. Послеродовой период и его связь с плодовитостью коров, свиноматок и овцематок. J Anim Sci 1971;32(доп. 1):66–72.

9. McNeilly A. Сосание и регуляция секреции гонадотропинов. В кн.: Knobil E, Neill JD (ред.) Физиология размножения . Нью-Йорк: Raven Press, 1988, с. 2323–2349.

10. Short R, Bellows R, Staigmiller R, Berardinelli J, Custer E. Физиологические механизмы, определяющие анэструс и бесплодие у коров мясных пород после отёла. J Anim Sci 1990;68:799–816.

11. Williams G. Сосание как фактор, регулирующий возобновление репродуктивной функции у коров после отёла: обзор. J Anim Sci 1990;68:831–852.

12. Williams G, Griffith M. Сенсорная и поведенческая регуляция ановуляции, обусловленной сосанием, у коров. J Reprod Fert Suppl 1995;49:463–475.

13. Nett T. Функция гипоталамо-гипофизарной системы в послеродовой период у овцематок и коров. J Reprod Fert Suppl 1987;34:201–213.

14. Nett T, Flores J, Carnevali F, Kile J. Доказательства прямого отрицательного действия эстрадиола на уровне гипофиза у овец. Biol Reprod 1990;43:554–558.

15. Herring R, Hamernik D, Kile J, Sousa M, Nett T. Длительное введение эстрадиола оказывает трёхфазное действие на концентрации гонадотропинов и матричной рибонуклеиновой кислоты субъединиц гонадотропинов в сыворотке крови, но не на содержание гонадотропинов в гипофизе у овариэктомированных овцематок. Biol Reprod 1991;45:151–156.

16. Nett T, Cermak D, Braden T, Manns J, Niswender G. Рецепторы GnRH и эстрадиола в гипофизе и содержание гонадотропинов в гипофизе у коров мясных пород. II. Изменения в послеродовой период. Domest Anim Endocrinol 1988;5:81–89.

17. Di Gregorio G, Kile J, Herring R, Nett T. Более быстрое восстановление содержания фолликулостимулирующего гормона, чем лютеинизирующего гормона, в гипофизе овцематок после истощения их запасов под действием эстрадиола-17 бета. J Reprod Fertil 1991;93:347–354.

18. Moss G, Parfet J, Marvin C, Allrich R, Diekman M. Концентрации гонадотропинов и рецепторов GnRH в гипофизе у подсосных коров мясных пород в разные сроки после отёла. J Anim Sci 1985;60:285–293.

19. Humphrey W, Kaltenbach C, Dunn T, Koritnik D, Niswender G. Характеристика гормональных профилей у коров мясных пород в период послеродового анэструса. J Anim Sci 1983;56:445–453.

20. Williams G, Ray D. Гормональные и репродуктивные профили тёлок мясных пород в ранний послеродовой период после подавления секреции пролактина или индукции функции жёлтого тела стероидами. J Anim Sci 1980;50:906–918.

21. Garverick H, Smith M. Механизмы, связанные с пониженной функцией жёлтого тела. J Anim Sci 1986;62(доп. 2):92–105.

22. Silvia W, Lewis G, McCracken J, Thatcher W, Wilson L. Гормональная регуляция секреции маткой простагландина

23. F2-альфа во время лютеолиза у жвачных животных. Biol Reprod 1991;45:655–663.

24. Ramirez-Godinez J, Kiracofe J, McKee R, Schalles R, Kittock R. Снижение частоты коротких эстральных циклов у коров мясных пород с помощью норгестомета. Theriogenology 1981;15:613–623.

25. Pratt B, Berardinelli J, Stevens L, Inskeep E. Индуцированные жёлтые тела у коров мясных пород после отёла. I. Сравнение гонадотропин-рилизинг-гормона и хорионического гонадотропина человека и влияние прогестагена и эстрогена. J Anim Sci 1982; 54:822–829.

26. Sheffel C, Pratt B, Ferrell W, Inskeep E. Индуцированные жёлтые тела у коров мясных пород после отёла. II. Влияние применения прогестагена и гонадотропинов. J Anim Sci 1982;54:830–836.

27. Burd L, Lemons J, Makowski E, Meschia G, Niswender G. Кровоток в молочной железе и эндокринные изменения во время родов у овцематок. Endocrinology 1976;98:748–754.

28. Kesler D, Garverick H, Youngquist R, Elmore R, Bierschwal C. Влияние срока после отёла и эндогенных репродуктивных гормонов на высвобождение LH, вызванное GNRH, у молочных коров. J Anim Sci 1977;45:797–803.

29. Carruthers T, Convey E, Kesner J, Hafs H, Cheng K. Гипоталамо-гипофизарная гонадотропная система у молочных коров после отёла при наличии и отсутствии сосания. J Anim Sci 1980;51:949–957.

30. Peters A, Lamming G, Fisher M. Сравнение концентраций LH в плазме крови у доеных и подсосных коров после отёла. J Reprod Fertil 1981;62:567–573.

31. Zalesky D, Forrest D, McArthur N, Wilson J, Morris D, Harms P. Сосание подавляет высвобождение гонадотропин-рилизинг-гормона из срединного возвышения гипоталамуса у коров после овариэктомии. J Anim Sci 1990;68:444–448.

32. Randel R. Влияние однократного сосания в сутки на продолжительность послеродового периода и продуктивность пар «корова — телёнок» у первотёлок — помесей брамана и герефорда. J Anim Sci 1981;53:755–757.

33. Lamb G, Miller B, Lynch J и др. . Сосание телёнком два раза в день, но не доение в присутствии телёнка, продлевает послеродовую ановуляцию. J Anim Sci 1999;77:2207–2218.

34. Shively T, Williams G. Характер тонической секреции лютеинизирующего гормона и частота овуляции у подсосных коров мясных пород в состоянии анэструса после временного отъёма телят различной продолжительности. Domest Anim Endocrinol 1989;6:379–387.

35. Silveira P, Spoon R, Ryan D, Williams G. Материнское поведение как необходимое звено в развитии ановуляции, обусловленной сосанием телёнком, у коров. Biol Reprod 1993;49:1338–1346.

36. Wettemann R. Послеродовая эндокринная функция у крупного рогатого скота, овец и свиней. J Anim Sci 1980;51(прил. 2):2–15.

37. Tauck S, Berardinelli J, Geary T, Johnson N. Возобновление послеродовой функции жёлтого тела у первотёлок мясных пород на подсосе при постоянном воздействии мочи быка. J Anim Sci 2006; 84:2708–2713.

38. Berardinelli J, Tauck S. Интенсивность биостимулирующего воздействия быков на возобновление овуляторной активности у первотёлок мясных пород на подсосе. Anim Reprod Sci 2007;99:24–33.

39. Clapp H. Фактор, влияющий на эффективность воспроизводства молочного скота. J Anim Sci 1937;(1937):259–265.

40. Short R, Bellows R, Moody E, Howland B. Влияние сосания телёнком и мастэктомии на послеродовую репродуктивную функцию коров. J Anim Sci 1972;34:70–74.

41. Forrest D, Fleeger J, Long C, Sorensen A, Harms P. Влияние экзогенного пролактина на уровень лютеинизирующего гормона в периферической крови у коров после овариэктомии. Biol Reprod 1980;22:197–201.

42. Williams G, Kirsch J, Post G, Tilton J, Slanger W. Данные против того, что длительная стимуляция сосков сама по себе вызывает снижение секреции гонадотропинов у коров мясных пород. J Anim Sci 1984;59:1060–1069.

43. Li P, Wagner W. Исследования in vivo и in vitro влияния адренокортикотропного гормона или кортизола на реакцию гипофиза на гонадотропин-рилизинг-гормон. Biol Reprod 1983;29:25–37.

1. Acosta B, Tarnabsky T, Platt T и др. . Сосание телёнком усиливает отрицательное влияние эстрогена на секрецию ЛГ у коров. J Anim Sci 1983;57:1530–1536.

2. Garcia-Winder M, Imakawa K, Day M, Zalesky D, Kittok R, Kinder J. Влияние сосания телёнком и овариэктомии на регуляцию секреции лютеинизирующего гормона в послеродовой период у коров мясных пород. Biol Reprod 1984;31:771–778.

3. Hinshelwood M, Dierschke D, Hauser E. Влияние сосания телёнком на гипоталамо-гипофизарную систему у коров мясных пород после отёла, не зависящее от секреции яичников. Biol Reprod 1985; 32:290–300.

4. Whisnant C, Kiser T, Thompson F, Barb C. Опиоидное подавление секреции лютеинизирующего гормона в послеродовой период у коров мясных пород на подсосе. J Anim Sci 1986;63:1445–1448.

5. Whisnant C, Kiser T, Thompson F, Barb C. Влияние отъёма телёнка на изменение уровня лютеинизирующего гормона в сыворотке крови в ответ на налоксон у коров мясных пород после отёла. J Anim Sci 1986;63:561–564.

6. Williams G, Kosiorowski M, Osborn R, Kirsch J, Slanger W. Повышению тонической секреции лютеинизирующего гормона после отъёма телят у коров в состоянии анэструса не препятствуют ни регулярное доение, ни физическое присутствие телёнка. Biol Reprod 1987;36:1079–1084.

7. Cutshaw J, Hunter J, Williams G. Влияние чрескожной тепловой и электрической стимуляции соска на секрецию гипофизарного лютеинизирующего гормона, пролактина и окситоцина у коров мясных пород после овариэктомии, получавших эстрадиол, после резкого отъёма телят. Theriogenology 1992;39:915–934.

8. McVey W, Williams G. Механическое блокирование нейросенсорных путей в зоне контакта телёнка с соском: эндокринные, репродуктивные и лактационные особенности подсосных коров в состоянии анэструса. Theriogenology 1991;35:931–941.

9. Viker S, Larson R, Kiracofe G, Stewart R, Stevenson J. Для длительной послеродовой ановуляции у коров после мастэктомии необходима тактильная стимуляция со стороны телёнка. J Anim Sci 1993;71:999–1003.

10. Williams G, McVey W, Hunter J. Соматосенсорные пути молочной железы не требуются для подавления секреции лютеинизирующего гормона и овуляции у коров, обусловленного сосанием телёнком. Biol Reprod 1993;49:1328–1346.

11. Griffith M, Williams G. Роль зрения и обоняния коровы-матери в подавлении секреции лютеинизирующего гормона, обусловленном сосанием телёнком, проявлении избирательного отношения к телёнку и молочной продуктивности у коров мясных пород. Biol Reprod 1996;54:761–768.

12. Caraty A, Franceschini I. Основные аспекты регуляции секреции ГнРГ и ЛГ кисспептином: возможности применения для более эффективного управления фертильностью самок. Reprod Domest Anim 2008;43(прил. 2):172–178.

13. Caraty A, Decourt C, Briant C, Beltramo M. Кисспептины и репродуктивная ось: возможности применения для управления воспроизводством сельскохозяйственных животных. Domest Anim Endocrinol 2012;43:95–102.

14. Amstalden M, Alves B, Liu S, Cardoso R, Williams G. Нейроэндокринные пути, опосредующие ускорение полового созревания под влиянием питания: данные исследований на жвачных животных. Front Endocrinol 2011;2:109.

15. Tsutsui K, Bentley G, Kriegsfeld L, Osugi T, Seong J, Vaudry H. Открытие и эволюционная история гонадотропин-ингибирующего гормона и кисспептина — новых ключевых нейропептидов, регулирующих размножение. J Neuroendocrinol 2010;22:716–727.

16. Kriegsfeld L, Gibson E, Williams W и др. . Роль пептида, родственного RFamide, -3 в репродуктивной функции и поведении млекопитающих. J Neuroendocrinol 2010;22:692–700.

17. Franceschini I, Lomet D, Cateau M, Delsol G, Tillet Y, Caraty A. Клетки преоптической области и дугообразного ядра овец, иммунореактивные к кисспептину, совместно экспрессируют альфа-рецептор эстрогена. Neurosci Lett 2006;401:225–230.

18. DeRoux N, Genin E, Carel J, Matsuda F, Chaussain J, Milgrom E. Гипогонадотропный гипогонадизм вследствие утраты функции

рецептора GPR54 пептида, производного KiSS1. Proc Natl Acad Sci USA 2003;100:10972–10976.

1. Seminara S, Messager S, Chatzidaki E и др. . Ген GPR54 как регулятор полового созревания. N Engl J Med 2003;349:1614–1627.

2. Ezzat A, Saito H, Sawada T и др. . Особенности стимулирующего действия кисспептина-10 на секрецию лютеинизирующего гормона, фолликулостимулирующего гормона и гормона роста у самцов и самок крупного рогатого скота до наступления половой зрелости. J Reprod Dev 2009; 55:650–654.

3. Pielecka-Fortuna J, Moenter SM. Кисспептин непосредственно усиливает ГАМКергическую и глутаматергическую передачу к нейронам, вырабатывающим гонадотропин-рилизинг-гормон, причем это действие зависит от эстрадиола. Endocrinology 2010;151:291–300.

4. Suzuki S, Kadokawa H, Hashizume T. Прямая стимуляция кисспептином-10 секреции лютеинизирующего гормона клетками передней доли гипофиза крупного рогатого скота и свиней. Anim Reprod Sci 2008; 103:360–365.

5. Smith J, Rao A, Pereira A, Caraty A, Millar R, Clarke I. Кисспептин присутствует в крови портальной системы гипофиза овец, но его концентрация не повышается во время предовуляторного пика лютеинизирующего гормона: свидетельство того, что гонадотрофы не являются непосредственными мишенями кисспептина in vivo. Endocrinology 2008;149:1951–1959.

6. Smith J, Clay C, Caraty A, Clarke I. Экспрессия матричной рибонуклеиновой кислоты KiSS-1 в гипоталамусе овцы регулируется половыми стероидами и сезоном. Endocrinology 2007;148:1150–1157.

7. Smith J, Coolen L, Kriegsfeld L и др. . Изменения экспрессии кисспептина и RFамид-связанного пептида (RFRP), а также концевых контактов с нейронами, вырабатывающими гонадотропин-рилизинг-гормон, в головном мозге: новый механизм сезонного размножения у овец. Endocrinology 2008;149:5770–5782.

8. Hoffman G, Le W, Franceschini I, Caraty A, Advis J. Экспрессия fos и высвобождение ЛГРГ из срединного возвышения in vivo указывают на активную роль кисспептиновых нейронов преоптической области в синхронизированных пиках секреции ЛГ и ЛГРГ у овец. Endocrinology 2011;152:214–222.

9. Merkley C, Porter K, Coolen L и др. . Нейроны KNDy (кисспептин/нейрокинин B/динорфин) активируются у овец как при пульсирующей секреции ЛГ, так и во время ее пика. Endocrinology 2012;153:5406–5414.

10. Caraty A, Smith J, Lomet D и др. . Кисспептин синхронизирует предовуляторные пики у овец с половым циклом и вызывает овуляцию у овец, у которых сезонно отсутствует половой цикл. Endocrinology 2007;148:5258–5267.

11. Caraty A, Lomet D, Me S, Guillaume D, Beltramo M, Evans N. Выделение ГнРГ в кровь портальной системы гипофиза овцы соответствует как пульсирующему, так и непрерывному внутривенному введению кисспептина: данные о механизме действия кисспептина. J Neuroendocrinol 2013;25:537–546.

12. Kadokawa H, Shibata M, Tanaka Y и др. . С-концевой октапептид RFамид-связанного пептида-3 крупного рогатого скота подавляет как секрецию лютеинизирующего гормона (ЛГ) гипофизом, так и пульсирующую секрецию ЛГ у крупного рогатого скота. Domest Anim Endocrinol 2009;36:219–224.

13. Tsutsui K, Saigoh E, Ukena K и др. . Новый гипоталамический пептид птиц, подавляющий высвобождение гонадотропина. Biochem Biophys Res Commun 2000;275:661–667.

14. Bentley G, Perfito N, Ukena K, Tsutsui K, Wingfield J. Пептид, ингибирующий секрецию гонадотропина, у певчих овсянок ( Melospiza melodia ) при разных состояниях репродуктивной системы и у домовых воробьёв ( Passer domesticus ) в связи с гонадотропин-рилизинг-гормоном кур. J Neuroendocrinol 2003;15:794–802.

15. Ubuka T, Ueno M, Ukena K, Tsutsui K. Изменения уровня гормона, ингибирующего секрецию гонадотропина, в ходе развития гипоталамо-гипофизарной системы японского перепела ( Coturnix japonica ). J Endocrinol 2003;178:311–318.

16. Tsutsui K, Ubuka T, Bentley G, Kriegsfeld L. Гормон, ингибирующий секрецию гонадотропина (GnIH): открытие, ход исследований и перспективы. Gen Comp Endocrinol 2012;177:305–314.

1. Clarke I, Sari I, Qi Y и др. . Сильное действие RFамид-связанного пептида-3 на гонадотрофы гипофиза указывает на его гипофизотропную роль в отрицательной регуляции секреции гонадотропина. Эндокринология 2008;149:5811–5821.

2. Li X, Su J, Fang R и др. . Влияние RFRP-3, ортолога GnIH у млекопитающих, на репродуктивную систему самок свиней in vitro. Mol Cell Endocrinol 2013;372:65–72.

3. Caraty A, Blomenröhr M, Vogel G, Lomet D, Briant C, Beltramo M. RF9 мощно стимулирует секрецию гонадотропинов у овец: свидетельства сезонного порога чувствительности. J Neuroendocrinol 2012;24:725–736.

4. Heidorn R, Barb C, Rogers C, Hausman G, Lents C. Влияние RFамид-родственного пептида-3 (RFRP-3) на секрецию ЛГ у неполовозрелых свинок после овариэктомии. J Anim Sci Suppl 2010;88:566.

5. Anderson G, Relf H, Rizwan M, Evans J. Центральное и периферическое действие RFамид-родственного пептида-3 на секрецию лютеинизирующего

гормона и пролактина у крыс. Эндокринология 2009;150:1834–1840.

1. Thorson J, Prezotto L, Caraty A, Amstalden M, Williams G. RF9, мощный антагонист рецепторной передачи сигналов RFRP3, устраняет торможение секреции ЛГ у кобыл в период сезонной ановуляции. В: Тезисы ENDO 2012. Endocrine Reviews 33. Сообщение представлено на ENDO 2012, Хьюстон, США.

2. Pineda R, Garcia-Galiano D, Sanchez-Garrido M и др. . Характеристика выраженной способности RF9, селективного антагониста рецепторов RFамид-родственных пептидов и нейропептида FF, стимулировать высвобождение гонадотропинов: физиологическое и фармакологическое значение. Эндокринология 2010;151:1902–1913.

3. Rizwan M, Poling M, Corr M и др. . Экспрессия гена рецептора RFамид-родственного пептида-3 в нейронах GnRH и кисспептина и GnRH-зависимый механизм действия. Эндокринология 2012;153:3770–3779.