Воспроизводство крупного рогатого скота

Фолликулярное развитие в период стельности

Результаты трех отдельных исследований подтверждают, что волновое явление возникает на протяжении всей беременности, за исключением последних 21 дня, когда не было обнаружено никаких фолликулов размером 6 мм или более.^33,48,164 В присутствии прогестерона (эндогенного или экзогенного),³³ ановуляторные фолликулярные волны появляются через равные промежутки времени. Однако максимальный диаметр доминирующего фолликула последовательных волн уменьшился и был связан с последовательным уменьшением межволнового интервала (то есть период доминирования стал короче) (рис. 24.15). Первоначальное снижение произошло сразу после первой фолликулярной волны беременности, а последующее резкое снижение произошло после четвертого месяца беременности. Прогестерон подавляет рост доминантного фолликула дозозависимым образом⁷¹ , а прогрессирующее снижение фолликулярного доминирования, наблюдаемое у беременных коров, объясняется подавляющим воздействием на ЛГ повышения уровня прогестерона в середине беременности и повышением уровня эстрогена в ближайшей перспективе.¹⁶⁴

У стельных коров, так же как у нестельных, периодические скачки ФСГ были связаны с появлением фолликулярных волн. Кроме того, на величину и частоту всплесков ФСГ повлиял размер доминантного фолликула. Волны, в которых доминантный фолликул достигал диаметра 10 мм или более, ассоциировались ( были связаны) с более длинными интервалами между последовательными скачками ФСГ и более низкими концентрациями ФСГ. Наоборот, волны с меньшими доминирующими фолликулами (6–9 мм) были связаны с более короткими интервалами и более высокими концентрациями ФСГ. Подобная взаимосвязь между ФСГ и динамикой фолликулярной волны наблюдалась у препубертатных телят.

Фолликулярное развитие в послеродовой период

Было показано, что у всех видов, у которых оно изучалось, лактация и сосание оказывают подавляющее влияние на фолликулярное развитие яичников. Степень подавления у крупного рогатого скота была связана в первую очередь с энергетическим балансом (состояние питания, упитанность, молочная продуктивность, паритет ( количество предыдущих отелов )) и предродовыми расстройствами (метрит, эндометрит, мастит, хромота) (рассмотрено в [165–167]). Интервал от отела до первой овуляции у молочных коров составлял в среднем 21 день (от 10 до 55 дней),¹⁶⁸ , но был значительно длиннее у первородящих коров, чем у многоплодных (31,8 ± 8,3 дня против 17,3 ± 6,3 дня).¹⁶⁹ Появление первой фолликулярной волны после отела варьировалось от 2 до 7 дней (в среднем 4,0 дня) у голштинских первотелок¹⁶⁴ , а доминирующий фолликул первой послеродовой волны овулировал у 14 из 19 (74%) многоплодных фризских коров¹⁷⁰ в среднем на 27-й день (диапазон 12– 58).¹⁷¹ У мясного скота возобновление фолликулярных волн наблюдалось в течение 10 дней после отела,¹⁷² , но первая овуляция происходила несколько позднее, чем у молочного скота (в среднем через 30,6 дня) и лишь в редких случаях это был доминантный фолликул первой послеродовой волны (11%).¹⁷²

Первая послеродовая овуляция часто сопровождается отсутствием эстрального поведения и короткой лютеиновой фазой (обзор в 173). Первая овуляция не сопровождалась течкой у 17 из 18 (94%) новотельных молочных коров¹⁷⁰ , а продолжительность первого послеродового интеровуляторного интервала варьировалась в зависимости от того, когда появился первый фолликул, предназначенный для овуляции. Первый послеродовой интеровуляторный интервал примерно у 25% молочных коров был коротким (в среднем 11,2 дня), еще у 25% имел нормальную продолжительность (в среднем 20,6 дня) и был длинным (в среднем 30,0 дня) у оставшихся 50% коров.¹⁷⁰

При коротких циклах первый фолликул, предназначенный для овуляции обнаруживали позднее (≥10 дней после отела), тогда как при нормальных и длинных циклах его находили раньше (обычно ≤10 дней). Эти результаты отлично согласуются с данными другого исследования¹⁶⁸ , в котором после коротких послеродовых ановуляторных периодов (около 14 дней) следовал цикл нормальной длины (18–21 день), а после более длинных послеродовых ановуляторных периодов (21–25 дней) - короткий цикл (<14 дней). У большинства мясных коров (78%) овуляция произошла во второй, третьей или четвертой послеродовой фолликулярной волне, и, как и у молочного скота, первые овуляции, произошедшие через 20 дней (16 из 18 коров), сопровождались коротким циклом (14 из 16 коров).¹⁷² Короткие циклы ассоциировались с короткой лютеиновой фазой, меньшим желтым телом и более низкими концентрациями циркулирующего прогестерона. Короткая лютеиновая фаза после первой послеродовой овуляции объясняется преждевременным высвобождением ПГФ2α маткой в результате меньшего количества прогестероновых рецепторов и большего количества окситоциновых рецепторов в клетках эндометрия¹⁷³ , однако, является ли лютеиновая недостаточность результатом изменения преовуляторной дифференциации гранулезы/теки клетки на фоне низкого уровня ЛГ еще предстоит проверить.

Фолликулярное развитие в старости

Снижение фертильности при материнском старении было хорошо задокументировано у крупного рогатого скота и человека.^174–176 Эндокринные и овариальные признаки репродуктивного старения были охарактеризованы в серии исследований, в которых старые коровы (≥15 лет) сравнивались со своими молодыми дочерьми (≤ 5 лет).^177–179 Средние концентрации циркулирующего ФСГ были стабильно выше у старых коров, чем у их дочерей, но закономерность в секреции ФСГ и появлении волн у старых коров сохранялась, т. е. каждой фолликулярной волне яичника предшествовал всплеск циркулирующего ФСГ. Несмотря на повышенный уровень ФСГ, в каждую фолликулярную волну у старых коров было вовлечено меньше фолликулов размером 4–5 мм по сравнению с их дочерьми. Эта интересная обратная взаимосвязь между количеством фолликулов, набранных в волну, и пиковыми концентрациями ФСГ также была сообщена в исследованиях, согласно которым число фолликулов волны у индивидуумов повторяется^59,102 . Продолжительность интеровуляторного и межволнового интервалов не менялась с возрастом, но овуляторный фолликул старых коров с двухволновым циклом был меньше во время овуляции, чем у молодых коров. Аналогичным образом диаметр желтого тела был меньше, а концентрация прогестерона в плазме, как правило, была ниже у старых коров по сравнению с молодыми. Влияния возраста на концентрацию циркулирующего ЛГ или частоту пульса ЛГ не выявлено.

Чувствительность ( ответная реакция ) оси гипоталамус-гипофиз у молодых и старых коров была изучена в исследовании, включающем синхронизацию яичников на основе эстрадиола/ прогестерона.¹⁷⁸ Стероидная терапия подавляла циркулирующий ФСГ в обеих возрастных группах, и интервалы между лечением и последующим пиком ФСГ и появлением волны не отличались между старыми и молодыми коровами. В исследовании реакции яичников на суперстимулирующую терапию¹⁷⁹ в фолликулярную волну было вовлечено меньше мелких (<5 мм) фолликулов, и у старых коров появилось меньше фолликулов всех размерных категорий после суперстимуляции по сравнению с их молодыми дочерьми. В среднем у молодых дочерей было на восемь овуляций на корову больше, чем у их матерей.

(a) (b)
40 60 1 st Синхр. 2 nd Синхр. Суперстим.
30 Стадо (n = 141)
40
20
–1σ В среднем +1σ 20
10 по стаду
Группа низких Группа высоких
значений (n = 20) значений (n = 16)
0
10 15 20 25 30 35 40 45 50 >2 mm >2 мм >5 мм
Количество фолликулов ≥2 мм Количество фолликулов
Суперстимуляция = 0.2436 + 0.7140 (≥ 2 мм)
( скорректированный r 2 - коэффициент детерминации= 40.4%)
Количество коров
Количество фолликулов

Рис. 24.16 Частотное распределение в стаде ( n = 141, сплошная линия) мясных коров Герефорд-кроссов на основе количества фолликулов, обнаруженных в обоих яичниках с помощью ультрасонографии во время появления фолликулярной волны. (a) На основе подсчета антральных фолликулов, была сделана выборка коров из нижних (n = 20, черная полоса) и верхних (n = 16, белая полоса) значений для последовательной синхронизации и суперстимуляции, чтобы определить какое влияние оказывает количество антральных фолликулов и их повторяемость. (b) Количество фолликулов, обнаруженных при появлении первой и второй синхронизированных волн и после суперстимулирующего лечения яичников в группе низкого уровня (черные столбцы) и группе высокого уровня (белые столбцы). Количество фолликулов было значительно больше в группе высокого уровня после обеих синхронизаций и после суперстимуляции. Суперстимуляторный ответ был простым линейным образом связан с количеством фолликулов, обнаруженных при появлении волны [суперстимуляторный ответ = 0,2436 + 0,7140 (количество фолликулов> 2 мм); скорректированный r2 = 40,4%]. Адаптировано из Singh J, Dominguez M, Jaiswal R, Adams G. Простой ультразвуковой тест для прогнозирования суперовуляторной реакции у крупного рогатого скота. Териогенология 2004;62:227–243.

Наконец, данные исследования, в котором эмбрионы от старых коров и их дочерей были перенесены коровам-реципиентам соответствующего возраста¹⁷⁹ , показали, что ооциты от старых коров были заметно менее компетентными ( с пособными к созреванию ) и давали только половину от количества эмбрионов, произведенных их дочерьми.

Выводы и практическое значение

Знание нормальной фолликулярной и лютеиновой динамики, а также механизмов, контролирующих эту динамику, оказали непосредственное влияние на клиническую и племенную практику ведения скотоводства. Концепции, представленные на Рисунке 24.9, были использованы в качестве основы при разработке протоколов синхронизации яичников для осеменения в фиксированное время и суперстимуляции яичников в целях получения и переноса эмбрионов in vivo и in vitro, а также для контроля размножения в рамках программ управления молочнымми и мясных стадами. Концепции волнового паттерна развития и отбора фолликулов подразумевают предсказуемые различия в количестве и степени зрелости определенных классов фолликулов (например, растущие, статические или регрессивные, доминантные и подчиненные фолликулы), которые способны или не способны реагировать на определенные виды гормональной терапии. Важно отметить, что динамика развития фолликулов перекрывается различным влиянием желтого тела. Ниже приведены некоторые примеры влияния эндогенных яичниковых ритмов на практические методы.

Синхронизация

У коров, у которых лютеолиз эффективно индуцируется введением ПГФ2α, последующий эструс распределяется в течение 6-дневного периода.¹⁸⁰ Наиболее устойчивый ответ (то есть наименьшая вариабельность интервала до эструса) на лечение ПГФ2α наблюдается во время раннего диэструса (7 и 8 дней после охоты) и более поздний диэструс (15 дней после охоты), чем после лечения во время середины диэструса (через 10–13 дней после охоты).¹⁸⁰

Последующие исследования подтвердили, что по большей части эти вариации обусловлены фолликулярным статусом во время лечения. Когда доминантный фолликул волны находится в поздней стадии роста (≥9 мм) или в ранней статической фазе, введение простагландина приведет к овуляции этого фолликула в течение 2–3 дней, тогда как лечение после средней и поздней статической фазы (т. е. когда он больше не жизнеспособен) приведет к овуляции доминантного фолликула следующей волны через 4–5 дней после инъекции. То есть, если ПГФ2α назначается в конце периода функционального доминирования одного фолликула, требуется несколько дней для того, чтобы новый доминантный фолликул достаточно вырос для овуляции.^153,181,182

Подсчет антральных фолликулов

Количество фолликулов, обнаруживаемых с помощью ультрасонографии, широко варьируется между коровами и в зависимости от статуса фолликулярной волны.^35,59,96,102 Однако, различия в количестве фолликулов не связаны с волновой последовательностью (то есть аналогичны для волны 1, волны 2 и волны 3) или количеством волн за эстральный цикл (т. е. двух- и трехволновые паттерны; рассмотрено в работе 35). Несмотря на то, что особи сильно различаются, свойственное каждой особи количество фолликулов при появлении волны практически всегда повторяется.^59,102 . При непосредственном сравнении многофолликулярных коров с мало-фолликулярными¹⁰² количество фолликулов, набранных в волну, сильно коррелировало с количеством фолликулов, набранных в последующие волны, и ответная реакция на суперстимуляцию сильно коррелировала с количеством фолликулов, набранных в фолликулярную волну у данной особи (рис. 24.16). Эта особенность в настоящее время составляет основу простого ультразвукового теста для прогнозирования суперстимулирующего ответа у крупного рогатого скота.

В недавнем исследовании влияния ограниченного питания матери до 60% от потребности в течение первого триместра беременности выяснилось, что у телят, рожденных от матерей с ограниченным питанием, количество антральных фолликулов было на 60% меньше по сравнению с телятами, рожденными от матерей, получавших контрольные рационы.¹⁸³ Кроме того, результаты показывают, что фертильность может быть нарушена у животных с низким количеством антральных фолликулов из-за негативного воздействия на ооциты, на уровень прогестерона и эндометрий по сравнению с животными с высоким количеством антральных фолликулов; молочные коровы в послеродовом периоде с высоким числом антральных фолликулов имели более высокие показатели стельности, более короткий сервиспериод и требовали меньше осеменений в период размножения по сравнению с коровами с низким их количеством.¹⁸³

Суперстимуляция яичников

Наиболее выраженными первопричинами вариативности ответной реакции на стимуляцию яичников являются состояние фолликулярной волны в момент начала стимулирующего лечения и свойственное особи количество фолликулов, присутствующих во время появления волны. Результаты исследований у крупного рогатого скота подтвердили, что суперстимулирующий ответ (i) хуже, когда лечение начинается после отбора доминирующего фолликула, (ii) лучше, когда лечение начинается во время появления волны, через 1 или 2 дня, и (iii) аналогичен между волной 1 (рост прогестерона) и волной 2 (высокий уровень эндогенного прогестерона (обзор в ссылке 102). Только около 20% (4 или 5 дней) эстрального цикла доступно для начала лечения во время появления фолликулярной волны. Следовательно, большая часть (80%) эстрального цикла не способствует оптимальному суперовуляторному ответу. Можно предположить, что во время появления волны суперстимуляторный ответ составляет приблизительно 70% от числа фолликулов размером 3 мм или более.¹⁰² В результате этих выводов суперстимулирующие протоколы у крупного рогатого скота теперь включают синхронизацию появления фолликулярной волны.

Ссылки

1. Hummitzsch K, Irving-Rodgers H, Hatzirodos N и др. . Новая модель развития яичника и фолликулов у млекопитающих. PLOS ONE 2013;8:e55578.

2. McNatty K, Fidler A, Juengel J и др. . Факторы роста и паракринные факторы, регулирующие формирование фолликулов и функции клеток. Mol Cell Endocrinol 2000;163:11–20.

3. Juengel J, Sawyer H, Smith P, Quirke L, Heath D. Происхождение фолликулярных клеток и становление стероидогенеза в яичниках плодов овец. Mol Cell Endocrinol 2002;191:1–10.

4. Gougeon A. Регуляция развития фолликулов яичника у приматов: факты и гипотезы. Endocr Rev 1996;17:121–156.

5. Senger P. Эмбриогенез гипофиза и мужской или женской репродуктивной системы. В кн.: Пути к беременности и родам , 2-е изд. Редмонд, Орегон: Current Conceptions Inc., 2003, с. 44–79.

6. Knight P, Glister C. Возможные местные регуляторные функции ингибинов, активинов и фоллистатина в яичнике. Reproduction 2001;121:503–512.

7. Lussier J, Matton P, Dufour J. Скорость роста фолликулов в яичнике коровы. J Reprod Fertil 1987;81:301–307.

8. Braw-Tal R, Yossefi S. Исследования начала роста фолликулов в яичнике коровы in vivo и in vitro. J Reprod Fertil 1997;109:165–171.

9. Lundy T, Smith P, O’Connell A, Hudson N, McNatty K. Популяции гранулёзных клеток в мелких фолликулах яичника овцы. J Reprod Fertil 1999;115:251–262.

10. Eppig J. Регуляция ооцитом развития и функции фолликулов яичника у млекопитающих. Reproduction 2001;122:829–838.

11. Rüsse I. Оогенез у крупного рогатого скота и овец. Bibl Anat 1983; 24:77–92.

12. Rajakoski E. Фолликулярная система яичников у половозрелых тёлок с особым вниманием к сезонным, циклическим и правосторонне-левосторонним различиям. Acta Endocrinol Suppl 1960;52:1–68.

13. Choudary J, Gier H, Marion G. Циклические изменения пузырчатых фолликулов у крупного рогатого скота. J Anim Sci 1968;27:468–471.

14. Donaldson L, Hansel W. Кистозные жёлтые тела, а также нормальные и кистозные граафовы фолликулы у коровы. Aust Vet J 1968;44:304–308.

15. Marion G, Gier H, Choudary J. Микроморфология фолликулярной системы яичников у крупного рогатого скота. J Anim Sci 1968;27:451–465.

16. Hansel W, Convey E. Физиология эстрального цикла. J Anim Sci 1983;57(прил. 2):404–424.

17. Spicer L, Echternkamp S. Рост, функция и обновление фолликулов яичников у крупного рогатого скота: обзор. J Anim Sci 1986;62:428–451.

18. Staigmiller R, England B. Фолликулогенез у крупного рогатого скота. Theriogenology 1982;17:43–52.

19. Pierson R, Ginther O. Ультразвуковое исследование яичника крупного рогатого скота. Theriogenology 1984;21:495–504.

20. Pierson R, Ginther O. Надёжность диагностического ультразвукового исследования при выявлении и измерении фолликулов и обнаружении жёлтого тела у тёлок. Theriogenology 1987;28:929–936.

21. Pierson R, Ginther O. Популяции фолликулов в течение эстрального цикла у тёлок: II. Влияние правой и левой сторон и внутриовариальное влияние жёлтого тела. Anim Reprod Sci 1987;14:177–186.

22. Pierson R, Ginther O. Популяции фолликулов в течение эстрального цикла у тёлок: I. Влияние дня цикла. Anim Reprod Sci 1987; 124:165–176.

23. Knopf L, Kastelic J, Schallenberger E, Ginther O. Динамика фолликулов яичников у тёлок: проверка гипотезы о двух волнах путём ультразвукового наблюдения за отдельными фолликулами. Domest Anim Endocrinol 1989;6:111–119.

24. Pierson R, Ginther O. Ультразвуковая визуализация яичников и матки у крупного рогатого скота. Theriogenology 1988;29:21–37.

25. Savio J, Keenan L, Boland M, Roche J. Характер роста доминантных фолликулов в течение эстрального цикла у тёлок. J Reprod Fertil 1988;83:663–671.

26. Sirois J, Fortune J. Динамика фолликулов яичников в течение эстрального цикла у тёлок по данным ультразвукового наблюдения в реальном времени. Biol Reprod 1988;39:308–317.

27. Ireland J, Roche J. Гипотезы о развитии доминантных фолликулов в течение эстрального цикла у крупного рогатого скота. В кн.: Roche JF, O’Callaghan D (ред.) Рост фолликулов и частота овуляции у сельскохозяйственных животных . Дордрехт: Martinus Nijhoff, 1987, с. 1–18.

28. Ireland J, Roche J. Развитие неовуляторных антральных фолликулов у тёлок: изменения содержания стероидов в фолликулярной жидкости и рецепторов к гонадотропинам. Endocrinology 1983;112:150–156.

29. Ireland J, Roche J. Рост и дифференцировка крупных антральных фолликулов после спонтанного лютеолиза у тёлок: изменения концентрации гормонов в фолликулярной жидкости и специфического связывания гонадотропинов с фолликулами. J Anim Sci 1983;57:157–167.

30. Ireland J, Fogwell R, Oxender W, Ames K, Cowley J. Выработка эстрадиола каждым яичником в течение эстрального цикла у коров. J Anim Sci 1985;59:674–771.

31. Ginther O, Kastelic J, Knopf L. Состав и характеристики волн развития фолликулов в течение эстрального цикла у крупного рогатого скота. Anim Reprod Sci 1989;20:187–200.

32. Ginther O, Knopf L, Kastelic J. Временные взаимосвязи между процессами в яичниках у крупного рогатого скота в течение эстральных циклов с двумя и тремя волнами развития фолликулов. J Reprod Fertil 1989;87:223–230.

33. Bergfelt D, Kastelic J, Ginther O. Сохраняющееся периодическое появление волн развития фолликулов у неосеменённых тёлок, получавших прогестерон. Anim Reprod Sci 1991;24:193–204.

34. Adams G. Сравнительные особенности развития и отбора фолликулов у жвачных животных. J Reprod Fertil Suppl 1999;54:17–32.