Воспроизводство крупного рогатого скота

• монофосфата (cGMP) и подавляется микроинъекцией cGMP. Acta Physiol Scand 1990;139:511–517.

• Pincus G, Enzmann E. Сравнительное поведение яйцеклеток млекопитающих in vivo и in vitro: I. Активация яйцеклеток яичника. J Exp Med 1935;62:665–675.

• Edwards R. Созревание in vitro ооцитов яичника мыши, овцы, коровы, свиньи, макака-резуса и человека. Nature 1965:208;349–351.

• Palma G, Arganaraz M, Barrera A, Rodler D, Mutto A, Sinowatz F. Биология и биотехнология развития фолликулов. Scientific World Journal 2012;2012:938138.

• Kruip T, Cran D, van Beneden T, Dieleman S. Структурные изменения ооцитов крупного рогатого скота при окончательном созревании in vivo. Gamete Res 1983;8:29–47.

• Hyttel P, Callesen H, Greve T. Ультраструктурные особенности предовуляторного созревания ооцитов у крупного рогатого скота после суперовуляции. J Reprod Fertil 1986;76:645–656.

• Hyttel P, Greve T, Callesen H. Ультраструктура созревания и оплодотворения ооцитов у крупного рогатого скота после суперовуляции. Prog Clin Biol Res 1989;296:287–297.

• Norris R, Ratzan W, Freudzon M и соавт. . Циклический GMP, поступающий из окружающих соматических клеток, регулирует уровень циклического AMP и мейоз в ооците мыши. Development 2009;136:1869–1878.

• Mehlmann L. Для поддержания остановки мейоза в ооцитах мыши необходима специфичная для ооцитов экспрессия Gpr3. Dev Biol 2005;288:397–801.

• Norris R, Freudzon M, Mehlmann L и соавт. . Лютеинизирующий гормон вызывает MAP-киназозависимое фосфорилирование и закрытие щелевых контактов коннексина 43 в фолликулах яичника мыши: один из двух путей возобновления мейоза. Development 2008;135:3229–3267.

• Conti M, Hsieh M, Zamah A, Oh J. Новые сигнальные механизмы в яичнике при созревании ооцитов и овуляции. Mol Cell Endocrinol 2012;356:65–73.

• Peter A, Levine H, Drost M, Bergfelt D. Свод классической и современной терминологии для описания морфологических аспектов динамики яичников у крупного рогатого скота. Theriogenology 2009;71:1343–1357.

• Singh J, Pierson R, Adams G. Характеристики ультразвукового изображения жёлтого тела у крупного рогатого скота: связь со структурой и функцией. J Reprod Fertil 1997;109:35–44.

• Marciel M, Rodriguez Martinez H, Gustafsson H. Тонкое строение жёлтых тел у тёлок после суперовуляции. Zbl Vet Med A 1992;39:89–97.

• Gasse H, Peukert Adam I, Schwarz R, Grunert E. Место фолликулярно-лютеиновой кисты в половом цикле крупного рогатого скота: гистологические, цитологические и гормонально-аналитические исследования. Zbl Vet Med A 1984;31:548–556.

• Ginther O. В кн.: Ультразвуковая визуализация и размножение животных: крупный рогатый скот . Кросс-Плейнс, Висконсин: Equiservices Publishing, 1998, с. 304.

• Kastelic J, Bergfelt D, Ginther O. Связь между результатами ультразвуковой оценки жёлтого тела и концентрацией прогестерона в плазме крови тёлок. Theriogenology 1990; 33:1269–1278.

• Pierson R, Ginther O. Ультразвуковая оценка жёлтого тела кобылы. Theriogenology 1985;23:795–806.

• Townson D, Ginther O. Ультразвуковая эхогенность развивающихся жёлтых тел у кобыл пони. Anim Reprod Sci 1989;20:143–153.

• Eramian M, Adams G, Pierson R. Усиление различий в ультразвуковой текстуре для разработки метода «виртуальной гистологии» при визуализации яичников крупного рогатого скота in vivo. Reprod Fertil Dev 2007;19:910–924.

• Maldonado-Castillo I, Eramian M, Pierson R, Singh J, Adams G. Определение фазы репродуктивного цикла по признакам, выявляемым при ультразвуковом исследовании. В кн.: Труды 4-й Канадской конференции по компьютерному и робототехническому зрению . IEEE Computer Society, 2007, с. 258–265. Доступно по адресу: http://www.computer.org/csdl/ proceedings/crv/2007/2786/00/27860258-abs.html

• Singh J, Adams G. Гистоморфометрия доминантных и подчинённых фолликулов яичника крупного рогатого скота. Anat Rec 2000;258:58–70.

• Acosta T, Miyamoto A. Сосудистая регуляция функции яичников: овуляция, формирование и регрессия жёлтого тела. Anim Reprod Sci 2004;82–83:127–140.

• Siddiqui M, Ferreira J, Gastal E, Beg M, Cooper D, Ginther O. Временные соотношения между пиком LH, овуляцией, эхотекстурой и сигналами кровотока при энергетической допплерографии в стенке предовуляторного фолликула у тёлок. Reprod Fertil Dev 2010;22:1110–1117.

• Honnens A, Niemann H, Herzog K, Paul V, Meyer H, Bollwein H. Связь между кровотоком в яичниках и их реакцией на обработку eCG у молочных коров. Anim Reprod Sci 2009;113:1–10.

• Siddiqui M, Almamun M, Ginther O. Кровоток в стенке преовуляторного фолликула и его связь с наступлением беременности у тёлок. Anim Reprod Sci 2009;113:287–292.

• Herzog K, Voss C, Kastelic J и др. . Кровоток в жёлтом теле увеличивается в течение первых трёх недель беременности у лактирующих молочных коров. Theriogenology 2011;75:549–554.

• Brozos C, Pancarci M, Valencia J и др. . Влияние инфузии окситоцина на кровоток в жёлтом теле и секрецию прогестерона у молочного крупного рогатого скота. J Vet Sci 2012;13:67–71.

• Garcia-Ispierto I, Lopez-Gatius F. Влияние введения ГнРГ или прогестерона на 5-й день после искусственного осеменения на концентрацию прогестерона в плазме крови, кровоток в жёлтом теле и количество лейкоцитов в лютеиновую фазу у молочных коров. Reprod Domest Anim 2012;47:224–229.

• Manns J, Hafs H. Управление размножением крупного рогатого скота: обзор. Can J Anim Sci 1076;56:121–131.

• McCracken J. Простагландины и регрессия жёлтого тела: обзор. Prostaglandins 1972;1:1–4.

• Inskeep E. Возможности применения простагландинов для управления репродуктивными циклами домашних животных. J Anim Sci 1973; 36:1149–1157.

• Odde K. Обзор методов синхронизации эструса у коров после отёла. J Anim Sci 1990;68:817–830.

• Larson L, Ball P. Регуляция эстральных циклов у молочного крупного рогатого скота: обзор. Theriogenology 1992;38:255–267.

• Kotwica J, Skarzynski D, Jaroszewski J, Williams GL, Bogacki M. Секреция маткой простагландина F2a, стимулированная различными дозами окситоцина, и его спонтанное высвобождение при лютеолизе у крупного рогатого скота. Reprod Nutr Dev 1998;38:217–226.

• Kastelic J, Knopf L, Ginther O. Влияние дня введения простагландина F2a на отбор и развитие овуляторного фолликула у тёлок. Anim Reprod Sci 1990;23:169–180.

• Momont H, Seguin B. Влияние дня эстрального цикла на реакцию на препараты PGF2a: значение для программ искусственного осеменения молочного крупного рогатого скота. В кн.: Труды 10-го Международного конгресса по репродукции животных и искусственному осеменению . Иллинойсский университет в Урбане-Шампейне, 1984, т. 3, с. 336.

• Wiltbank M, Shiao T, Bergfelt D, Ginther O. Рецепторы простагландина F2a в жёлтом теле крупного рогатого скота на ранней стадии развития. Biol Reprod 1995;52:74–78.

• Kotwica J, Skarzynski D, Miszkiel G, Melin P, Okuda K. Окситоцин регулирует пульсирующую секрецию простагландина F2alpha при начавшемся лютеолизе у крупного рогатого скота. Res Vet Sci 1999;66:1–5.

• Skarzynski D, Ferriera-Dias G, Okuda K. Регуляция функции и регрессии жёлтого тела у коров: гормональный контроль, иммунные механизмы и межклеточное взаимодействие. Reprod Domest Anim 2008;43:57–65.

• Adams G, Evans A, Rawlings N. Волны роста фолликулов и концентрации циркулирующих гонадотропинов у тёлок в возрасте 8 месяцев до наступления половой зрелости. J Reprod Fertil 1994;100:27–33.

• Nasser L, Adams G, Bo G, Mapletoft R. Ответ яичников на суперстимуляцию в зависимости от начала волны роста фолликулов у тёлок. Theriogenology 1993;40:713–724.

• Ginther O, Beg M. Динамика концентраций циркулирующего прогестерона до и во время лютеолиза: сравнение крупного рогатого скота и лошадей. Biol Reprod 2012;86:170.

1. Adams G, Nasser L, Bo G, Mapletoft R, Garcia A, Del Campo M. Ответ фолликулов яичников на суперстимуляцию при волне 1 по сравнению с волной 2 у тёлок. Theriogenology 1994;42:1103–1113.

2. Evans A, Adams G, Rawlings N. Развитие фолликулов и гормональные изменения у тёлок до наступления половой зрелости в возрасте от 2 до 36 недель. J Reprod Fertil 1994;102:463–470.

3. Evans A, Adams G, Rawlings N. Эндокринные изменения и изменения фолликулов яичников, предшествующие первой овуляции у тёлок до наступления половой зрелости. J Reprod Fertil 1994;100:187–194.

4. Ginther O, Kot K, Kulick L, Martin S, Wiltbank M. Связь между ФСГ и волнами роста фолликулов яичников в течение последних шести месяцев беременности у крупного рогатого скота. J Reprod Fertil 1996;108:271–279.

5. Crowe M. Возобновление циклической активности яичников после отёла у коров мясных и молочных пород. Reprod Domest Anim 2008;43(доп. 5):20–28.

6. Santos J, Rutigliano H, Sá Filho M. Факторы риска, влияющие на возобновление эстральных циклов после отёла и выживаемость эмбрионов у лактирующих молочных коров. Anim Reprod Sci 2009;10:207–221.

7. Walsh S, Williams E, Evans A. Обзор причин низкой фертильности у высокопродуктивных молочных коров. Anim Reprod Sci 2011;123:127–138.

8. Rajamahendran R, Taylor C. Характеристика активности яичников у молочных коров после отёла с помощью ультразвукового исследования и анализа динамики концентрации прогестерона. Anim Reprod Sci 1990;22:171–180.

9. Tanaka T, Arai M, Ohtani S и др. . Влияние числа отёлов на динамику фолликулов и возобновление овариального цикла у молочных коров после отёла. Anim Reprod Sci 2008;108:134–143.

10. Savio J, Boland M, Hynes N, Roche J. Возобновление фолликулярной активности у молочных коров в ранний послеродовой период. J Reprod Fertil 1990;88:569–579.

11. Savio J, Boland M, Roche J. Развитие доминантных фолликулов и продолжительность овариальных циклов у молочных коров после отёла. J Reprod Fertil 1990;88:581–591.

12. Murphy M, Boland M, Roche J. Характер роста фолликулов и возобновление функции яичников у подсосных коров мясных пород после отёла. J Reprod Fertil 1990;90:523–533.

13. Rhodes F, McDougall S, Burke C, Verkerk G, Macmillan K. Обзор по приглашению: лечение коров с затяжным послеродовым анэструсом. J Dairy Sci 2003;86:1876–1894.

14. Erickson B, Reynolds R, Murphree R. Характеристики яичников и воспроизводительная способность коров старшего возраста. Biol Reprod 1976;15:555–560.

15. Klein J, Sauer M. Оценка фертильности женщин старшего репродуктивного возраста. Am J Obstet Gynecol 2001;185:758–770.

16. Stensen M, Tanbo T, Storeng R, Byholm T, Fedorcsak P. Стандартные системы морфологической оценки при лечении с применением вспомогательных репродуктивных технологий не отражают возрастного снижения качества ооцитов и эмбрионов. Reprod Biomed Online 2010;21:118–125.

17. Malhi P, Adams G, Singh J. Крупный рогатый скот как модель для изучения репродуктивного старения у женщин: характеристики фолликулов, жёлтого тела и эндокринной системы. Biol Reprod 2005;73:45–53.

18. Malhi P, Adams G, Pierson R, Singh J. Крупный рогатый скот как модель репродуктивного старения: ответ на синхронизацию овариальных циклов и суперовуляцию. Theriogenology 2006;66:1257–1266.

19. Malhi P, Adams G, Mapletoft R, Singh J. Способность ооцитов к развитию на модели репродуктивного старения у крупного рогатого скота. Reproduction 2007;134:233–239.

20. Seguin B. Управление репродуктивным циклом у молочного крупного рогатого скота. В кн.: Материалы ежегодного собрания Общества териогенологии , 1987, с. 300–308.

21. Kastelic J, Ginther O. Факторы, влияющие на происхождение овулирующего фолликула у тёлок при индуцированном лютеолизе. Anim Reprod Sci 1991;26:13–24.

22. Savio J, Boland M, Hynes N, Mattiacci M, Roche J. Овулирует ли первый доминантный фолликул эстрального цикла у тёлок после лютеолиза на 7-й день? Theriogenology 1990;33:677–687.

23. Evans A, Mossa F, Fair T и др. . Причины и последствия вариации числа фолликулов яичников у крупного рогатого скота. Soc Reprod Fertil Suppl 2010;67:421–429.

24. Fortune J. Рост и развитие фолликулов яичников у млекопитающих. Biol Reprod 1994;50:225–232.

Материнское распознавание и физиология беременности

Caleb O. Lemley¹ , Leticia E. Camacho² и Kimberly A. Vonnahme²

1 Факультет наук о животных и молочных продуктах, Университет штата Миссисипи, Старквилл, Миссисипи, США

2 Факультет наук о животных, Университет штата Северная Дакота, Фарго, Северная Дакота, США

Материнское распознавание беременности

Материнское распознавание беременности охватывает процесс, согласно которому генерируется биохимический сигнал, предотвращающий лютеиновую регрессию, что позволяет желтому телу сохраняться и продолжать выделять достаточное количество прогестерона. Потребность в прогестероне для успешного поддержания беременности у крс превышает продолжительность эстрального цикла, и поэтому беременная самка должна быстро распознать наличие концепта. У крупного рогатого скота этот сигнал включает в себя секрецию концептом интерферона-тау (ИФН-тау), который дополнительно стимулирует лютеотропные и антилютеолитические сигналы. Хотя в некоторых исследованиях эти слова используют взаимозаменяемо, далее мы будем обозначать лютеотропин как сигнал, который стимулирует лютеиновую секрецию прогестерона, в то время как антилютеолитические вещества действуют как сигнал, который блокирует лютеолиз, подавляя или маскируя эндогенные лютеолитические сигналы. Материнское распознавание сигнала беременности происходит до имплантации зародыша, которая начинается на третьей неделе беременности и классифицируется как поверхностное прикрепление у крупного рогатого скота.

Несколько биологических опытов были сосредоточены на выявлении веществ, участвующих в продлении срока функционирования желтого тела у крс. В большинстве из этих более ранних исследований изучалась продолжительность эстрального цикла у небеременных животных, которым вводили экстракт гипофиза. В 1965 году ученые из Корнельского университета сообщили, что лютеинизирующий гормон (ЛГ) является лютеотропином для крупного рогатого скота, и инъекции экстрактов гипофиза или очищенного бычьего ЛГ продлевают эстральный цикл коров на 11 или 16 дней соответственно. Этот опыт подтвердил лютеотропное действие ЛГ, который может служить эндогенным биохимическим сигналом от концептуса; однако, кроме приматов и кобыл, никакие другие млекопитающие не обладают обеими генетическими субъединицами для хорионического гонадотропина. Следовательно, хорионический гонадотропин, обладающий свойствами ЛГ, не является сигналом для материнского признания беременности у крупного рогатого скота. Тем не менее, эти ранние исследования внесли фундаментальный вклад в основу изучения различий в механизмах продления продолжительности жизни желтого тела у разных видов млекопитающих, что является важным компонентом «концептматеринской перекрестной связи» во время материнского распознавания беременности.

^{Эти первые результаты побудили исследователей изучить другие} потенциальные вещества, продуцируемые концептом, которые могут оказывать лютеотропное и/или антилютеолитическое влияние, предотвращая лютеолиз во время пульсирующего высвобождения простагландина F2α. Внутриматочная инфузия эстрадиола-17β и ПГЕ2 продлевали срок жизни желтого тела у крс, а также секрецию прогестерона на 5–6 дней по сравнению с нестельной контрольной группой.² Лютеотропное действие эстрадиола-17β скорее всего косвенно, поскольку эстрогены блокировали индуцированную ЛГ секрецию прогестерона у культивируемых лютеиновых клеток коров.³ Косвенное воздействие внутриматочного эстрадиола-17β на увеличение продолжительности жизни лютеинового тела может проявляться в виде увеличения маточного и/или яичникового кровотока. У свиноматок, овец и коров локальное увеличение кровоснабжения в беременном роге матки происходит одновременно с материнским распознаванием беременности.⁴ Кроме того, это местное увеличение кровотока в матке может помочь перенаправить транспорт простагландина из рога матки в прилежащий яичник через маточно-яичниковое сплетение. ПГЕ2 непосредственно стимулирует секрецию прогестерона и продукцию циклического АМФ бычьими лютеиновыми клетками in vitro точно так же, как и ЛГ.⁵ Кроме того, и эндометрий и желтое тело экспрессируют полный путь биосинтеза простагландина и дифференциальная экспрессия этих компонентов во время критического периода материнского признания беременности (дни 15–17 эстрального цикла) может оказывать лютеотропное или антилютеолитическое действие.

Интерферон-тау, впервые идентифицированный как белок бычьего трофобласта^1,7 , распознается как материнский признак сигнала беременности у крупного рогатого скота.⁸ Секреция интерферона-тау эмбриональными клетками трофобласта наиболее высока между 15 и 17 днями и наблюдается до 28 дня беременности; более того, недостаточный ответ эндометрия на ИФН-тау, верятно, является одной из основных причин неправильного производства и действия ПГФ2α и ПГЕ2, что приводит к невынашиванию беременности. Культивируемые in vitro культуры клеток эндометрия коров с повышенными концентрациями ИФН-тау продуцируют преимущественно ПГЕ2 по сравнению с ПГФ2α.⁹