Воспроизводство крупного рогатого скота

Поскольку надлежащие методы отбора проб и их обработки непосредственно связаны с лабильной природой патогена, Общество териогенологии рекомендует ветеринарам пройти подготовку перед предоставлением образцов T. fetus.¹⁵ В некоторых штатах требуют или рассматривают возможность обучения и сертификации ветеринаров по взятию образцов T. fetus, прежде чем лаборатории примут от них образцы.

В стадах, о которых известно, что они заражены T. fetus, следует использовать серийное тестирование в сочетании с изменениями в управлении для создания стада без заболевания.⁵ Поскольку нет никакого законного или эффективного лечения для быков, зараженных T. fetus, эти быки должны быть отправлены на убой.^1,5 Расположение зараженных животных должно быть согласовано с руководителями. Не существует законного или эффективного лечения инфицированных коров, но поскольку самки обычно сами устраняют инфекцию, можно рассмотреть иные варианты, кроме убоя.^1,3,6 Положительные коровы могут содержаться в отдельном стаде и осеменяться ИО. В стадах с известными положительными случаями, нестельные положительные коровы должны быть выбракованы, абортированные плоды должны быть проверены на наличие T. fetus, а вакцинация может быть использована для ограничения воздействия заболевания.^1,16

Заключение

В 1947 году д-р Дейв Бартлетт суммировал практические меры борьбы с трихомониазом при естественном осеменении крупного рогатого скота на два основных принципа: не допускать осеменения восприимчивых коров инфицированными быками и осеменения восприимчивыми быками инфицированных коров.¹⁷

Эти принципы составляют основу борьбы с трихомониазом сегодня и могут быть достигнуты благодаря вниманию к деталям, знаниям о болезни и здравому смыслу. Следует избегать смешивания животных из разных стад. Ограниченный случной сезон и своевременная диагностика стельности могут повысить вероятность более раннего выявления проблемы.

Старших быков следует заменить более молодыми, и проверять всех быков перед введением в стадо и перед каждым сезоном размножения. Выявленных при диагностике стельности холостых коров, следует отбраковать. Абортировавших коров или имеющих заметные выделения, следует отбраковывать, а абортированные плоды или любые выделения следует проверять на наличие T. fetus. Существует вакцина против T. fetus, и хотя эффективность вакцины исторически считалась ограниченной, было показано, что она уменьшает негативное влияние заболевания у самок. Недавняя работа Cobo и соавт.¹⁶ указывает на то, что вакцинация быков также может быть полезной. ИО с использованием спермы от быков с отрицательным анализом на трихомониаз, явно ограничивает распространение болезни, хотя техники ИО должны придерживаться жестких процедур профилактики заболеваний. Вакцинация от других репродуктивных заболеваний облегчит проблему трихомониаза в стаде с репродуктивной недостаточностью.

Как и в случае многих других проблем со здоровьем стада, командный подход, задействующий производителей, ветеринаров и руководящий персонал, является наилучшим способом разработки и реализации эпидемиологически обоснованных протоколов биобезопасности для предотвращения внедрения венерического трихомониаза. Надлежащее тестирование имеет первостепенное значение для предотвращения заражения, а также для оздоровления инфицированных стад. Точность тестирования напрямую связана с качеством образца, что, в свою очередь, напрямую связано с его надлежащим сбором, обработкой и доставкой.

Ссылки

1. BonDurant R. Венерические заболевания крупного рогатого скота: естественное течение, диагностика и роль вакцин в борьбе с ними. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2005;21:383–408.

2. Edmondson M. Борьба с трихомонозом крупного рогатого скота у самок. Clin Theriogenol 2013;5:225–230.

3. Corbeil B, Campero M, Hoosear V, BonDurant H. Обнаружение трихомонад разных видов в половых путях быков, использовавшихся и не использовавшихся для разведения. Vet Parasitol 2008;154:226–232.

4. Peter D, Fales W, Miller R и др. Tritrichomonas foetus Инфекция в стаде крупного рогатого скота в штате Миссури. J Vet Diagn Invest 1995;7:278–280.

5. Ondrak J, Keen J, Rupp G, Kennedy J, McVey D, Baker W. Повторные исследования методом культивирования и ПЦР для выявления быков — носителей Tritrichomonas foetus в заражённом стаде штата Небраска. J Am Vet Med Assoc 2010;237:1068–1073.

6. Ho M, Conrad P, Conrad P, LeFebvre R, Perez E, BonDurant R. Выявление трихомоноза крупного рогатого скота с помощью специфического ДНК-зонда и системы ПЦР-амплификации. J Clin Microbiol 1994;32:98–104.

7. Cobo E, Favetto P, Lane V и др. Чувствительность и специфичность культурального исследования и ПЦР образцов смегмы быков, экспериментально заражённых Tritrichomonas foetus . Theriogenology 2007;68: 853–860.

8. Rae D, Crews J, Greiner E, Donovan G. Эпидемиология Tritrichomonas foetus в популяциях быков мясных пород во Флориде. Theriogenology 2004;61:605–618.

9. Strickland L, Wolfe D, Carson R и др. Поверхностная архитектоника эпителия полового члена и препуция быков. Clin Theriogenol 2011;3:362 (аннотация).

10. Mukhufhi N, Irons P, Michel A, Peta F. Оценка ПЦР-теста для диагностики Tritrichomonas foetus у быков: влияние способа отбора проб, условий хранения и транспортной среды на результаты теста. Theriogenology 2003;60:1269–1278.

11. BonDurant R, Campero C, Anderson M, Van Hoosear K. Выявление Tritrichomonas foetus методом полимеразной цепной реакции в культивированных изолятах, цервиковагинальной слизи и тканях заражённых тёлок и плодов, фиксированных формалином. J Vet Diagn Invest 2003;15:579–584.

12. Montilla H, Estill C, Villarroel A, Bounpheng M. Материалы конференции Американской ассоциации американских ветеринарных диагностов,

• 52-я ежегодная конференция, 7–14 октября 2009 г., Сан-Диего, Калифорния. Дата обращения: 1 января 2011 г.; www.aavld.org/assets/ documents/2009%20Proceedings%20Book%20_92309.pdf

• Parker S, Campbell J, Ribble C, Gajadhar A. Факторы, связанные с отбором проб, влияют на чувствительность диагностического теста на Tritrichomonas foetus у быков. Can J Vet Res 2003;67:138–141.

• McMillan L, Lew A. Усовершенствованное выявление Tritrichomonas foetus в диагностических образцах от крупного рогатого скота с помощью нового метода ПЦР в реальном времени на основе зондов. Vet Parasitol 2006;141:204–215.

• Позиция по вопросу тестирования на Tritrichomonas foetus. Общество териогенологов. Доступно по адресу http://www.therio.org/?page=P ositionStatement#TRitri

• Cobo E, Corbiel L, Gershwin C, BonDurant R. Клеточный и антительный ответ в препуции быков после вакцинации и/или экспериментального заражения Tritrichomonas foetus . Vaccine 2010;28:361–370.

• Bartlett D, Hanson E, Teeter K. Обнаружение Tritrichomonas foetus в пробах из препуция инфицированных быков. J Am Vet Med Assoc 1947;110(839):114–120.

Глава 57

Инфекционные агенты: Лептоспироз

Daniel L. Grooms

Кафедра клинических наук о крупных животных, Колледж ветеринарной медицины, Мичиганский государственный университет, Ист-Лансинг, Мичиган, США

Вступление

Бычий лептоспироз считается причиной значительных репродуктивных потерь, включая бесплодие, раннюю эмбриональную смерть, аборты, мертворождение и рождение слабых телят. Кроме того, было описано несколько других нерепродуктивных клинических проявлений лептоспироза.¹

Лептоспироз встречается во всем мире и вызывается спирохетами - бактериями, принадлежащими к роду Лептоспира. Лептоспирозу подвержены все виды млекопитающих, включая человека, и он является серьезным зоонозным заболеванием.² Лептоспира может быть классифицирована на нескольких разных уровнях. Наиболее точная классификация основана на геномовиде, который устанавливается путем анализа генетической последовательности. Лептоспиры также классифицируются на серовары на основе антигенного родства. Было идентифицировано более 200 различных сероваров патогенных лептоспир.³

Серовары могут быть дополнительно определены генотипическим анализом, например, есть два генотипа серовара Hardjo, которые имеют значение у крупного рогатого скота, серовар Hardjo тип hardjoprajitno и тип hardjobovis.

Эпидемиология лептоспироза

Распространенность

Лептоспиры встречаются во всем мире, хотя различные серовары могут быть эндемичными только в определенных географических регионах. Наиболее распространенными сероварами в Соединенных Штатах являются Hardjo, Grippotyphosa и Pomona; однако, другие серовары также могут быть обнаружены и связаны с репродуктивными потерями. Серологические исследования неоднократно показали, что наиболее распространенной причиной лептоспироза у крупного рогатого скота является заражение сероваром Hardjo.^4–7 Как упоминалось ранее, были определены два генетически различных типа серовара Hardjo: серовар Hardjo типа hardjobovis и серовар Hardjo типа hardjoprajitno. Серовар Hardjo типа hardjobovis распространен в популяции крупного рогатого скота во всем мире, включая Северную Америку,⁵ в то время как тип hardjoprajitno был обнаружен в основном в Соединенном Королевстве.

В ограниченных исследованиях, проведенных в Соединенных Штатах, распространенность серовара Hardjo в стаде составила около 60% в молочных хозяйствах⁶ и 40% в мясных.⁷ В Онтарио, Канада, у 8% обследованных молочных стад и 44% мясных стад, которые не были вакцинированы против лептоспироза, было обнаружено, что у коров серологически положительный результат на серовар Hardjo,⁸ тогда как в западной Канаде серопревалентность, по-видимому, значительно меньше в обследованных мясных стадах.⁹ Распространенность в стадах может варьировать в зависимости от региона, при этом более высокие показатели более вероятны в умеренном климате.^7,10 В крупном исследовании в 49 штатах, в котором обследовали выбракованных коров, отобранных на убой, процент серологически положительного скота на серовар Leptospira был значительно выше в штатах южного яруса и западного побережья, чем в других районах США.⁴ В исследованиях отдельных взрослых коров серопревалентность к серовару Hardjo колеблется от 10 до 30% как в Соединенных Штатах, так и в Канаде. Более высокие показатели серопревалентности можно ожидать в отдельных стадах, которые являются эндемически инфицированными.

Точные данные о частоте абортов, связанных с лептоспирозом, в Северной Америке отсутствуют. В Северной Ирландии лептоспироз был признан ответственным за более половины всех абортов у коров, а в одном исследовании серовар Hardjo был идентифицирован как возбудитель в 97% случаев.¹¹ В ранее процитированном исследовании, проведенном в Онтарио, Канада, серовар Hardjo был связан с 6% абортов, в то время как участие Pomona в абортах не было подтверждено.⁸ В Соединенных Штатах, многочисленные диагностические лабораторные исследования случаев, в которых был установлен точный диагноз, показали, что лептоспира была выявлена у менее чем 10% абортированных плодов.¹² В целом из-за сложности постановки окончательного диагноза в случае абортов у крупного рогатого скота, вероятно, что эти обследования занижают истинную распространенность лептоспиральных абортов.

Носители в сравнении со случайными хозяевами

Животных можно разделить на носителей (естественный источник лептоспиральной инфекции для своего собственного вида) и случайных хозяев лептоспир. Различные серовары Leptospira связаны с одним или несколькими хозяевами-носителями, которые служат резервуарами для их передачи. Животные могут быть носителями для одних сероваров, но случайными или второстепенными хозяевами для других.