Воспроизводство крупного рогатого скота

Ультрасонография имеет важное значение для понимания стадии развития фолликула яичника по дню эстрального цикла и чувствительности фолликула к ГнРГ. Эта информация и УЗИ внесли значительный вклад в понимание того, что время введения ГнРГ относительно дня эстрального цикла и стадии доминирования фолликулов имеет решающее значение для обновления фолликулов и управления овуляцией и, следовательно, для достижения приемлемых показателей оплодотворяемости, особенно когда используется осеменение по фиксированному времени (TAI) . Понимание рекрутирования, отбора, доминирования и атрезии фолликулов яичников дало понимание того, почему протоколы эстральной синхронизации, основанные на прогестагене и PGF2α, приводили проявлению охоты в течение 4–6 дней, и к различиям в оплодотворяемости по TAI. Протоколы синхронизации охоты, основанные на прогестагене и PGF2α, контролируют продолжительность жизни ЖТ, но не контролируют фолликулы яичников. Контроль каждого из этих звеньев важен для минимизации отклонений в наступлении охоты и достижения приемлемой оплодотворяемости по TAI.

Использование прогестерона / прогестагенов и PGF2 α

Компания Roche⁶⁸ исследовала синхронизацию охоты и осеменения у молочного и мясного скота с использованием спиралей Silastic, пропитанных P4 (прогестерон) , обернутых вокруг стержня из нержавеющей стали и введенных во влагалище (интравагинальное устройство, высвобождающее P4, PRID) на 12 дней плюс внутримышечная инъекция 5 мг EB (бензоат эстрадиола) и 50 мг P4 в кукурузном масле во время введения PRID. Контрольная группа была искусственно осеменена во время охоты, а коровы с PRID также были искусственно осеменены во время охоты, выявленной в течение 2-6 дней после удаления PRID. Синхронность охоты составила 86% у молочных коров (n = 159) и 81% у молочных телок (n = 253). Коэффициенты отела (процент отелившихся) по первому искусственному осеменению для контрольных животных и животных, осемененных по синхронизированной с PRID охотой составили 49 и 45% для молочных коров и 45 и 53% для молочных телок. Во втором исследовании мясных коров разделили на группы: контрольную с ИО по естественной охоте (n = 14), PRID с ИО по выявленной синхронизированной охоте (n = 16), PRID с ИО через 48 часов после удаления PRID (n = 14) и PRID плюс 100 мкг GnRH через 30 часов с ИО через 48 часов после удаления PRID (n = 23). PR составил 71, 69, 21 и 52% соответственно. В третьем исследовании мясные телки были разделены на контрольную группу с ИО по естественной охоте (n = 24), PRID с ИО через 56 часов после удаления PRID (n = 26), PRID с ИО через 74 часа после удаления PRID (n = 25) и PRID с ИО через 56 и 74 часа после удаления PRID (n = 25). PR составил 58, 65, 46 и 68% соответственно. Smith и др.⁶⁹ исследовали результаты синхронизации охоты и осеменения телок голштинской породы с использованием PRID плюс PGF2α. В этом исследовании, в отличие от предыдущего исследования, импланты PRID применялись в течение 6 или 7 дней, и на 6-й день вводили внутримышечно 25 мг PGF2α. Телок разделили на группы: контрольную группу с ИО по естественной охоте в течение 25 дней (n = 79); PRID в течение 6 дней с ИО через 1–5 дней после удаления PRID (n = 80) и PRID в течение 7 дней с ИО через 1–5 дней после удаления PRID (n = 83). В охоте выявлено 97, 99 и 99% животных соответственно. PR (здесь это оплодотворяемость) составил 72, 82 и 73% соответственно. Во втором исследовании эстральную синхронизацию исследовали при двойной инъекции 25 мг PGF2α с интервалом в 11 дней. Коров разделили на группы: контрольную с ИО по охоте, выявленной в течение 25 дней (n = 91); группу, которой вводили 25 мг PGF2α дважды через 11 дней с TAI (ИО по фиксир.времени) через 80 часов (n = 90), и группу с установленным в течение 7 дней PRID и TAI через 84 часа (n = 93). Частота выявления эструса составила 93, 84 и 94% соответственно. PR составил 73, 52 и 66% соответственно.

Эти данные документально подтверждают эффективность синхронизации эструса при использовании только PRID плюс PGF2α или PGF2α, но PR выше при использовании PRID плюс PGF2α по сравнению с одним PGF2α.

Moody и соавт.⁷⁰ синхронизировали охоту, скармливая 0,5 мг MGA ежедневно телкам в течение 6 дней (MGA6, n = 32) или 7 дней (MGA7, n = 31), и вводили 25 мг PGF2α на 6 день коровам каждой группы; контрольная группа (n = 33) и животные, получавшие MGA, были искусственно осеменены при обнаружении эструса. Уровень зачатия при первом осеменении составил 58% (контрольная группа), 44% (MGA6) и 61% (MGA7). PR составил 18, 25 и 42% для соответствующих групп, осемененных в течение 5 дней и 61, 47 и 65% для соответствующих групп, осемененных в течение 19 дней.

Lucy и др.⁷¹ опубликовали результаты масштабного полевого испытания, посвященного изучению синхронизации эструса с использованием интравагинального импланта, высвобождающего P4, содержащего 1,38 г P4 (контролируемое внутреннее высвобождающее лекарство устройство, CIDR), введенного на 7 дней плюс 25 мг PGF2α на 6-й день. Коров искусственно осеменяли по охоте, выявленной в течение 31 дня для группы контроля и 3 дня для группы CIDR. Для контрольных коров и нормально циклирующих коров с CIDR частота выявления охоты составила 82 и 72%, частота оплодотворения составила 64 и 63%, а PR составил 58 и 46%. Для контрольных коров и нециклирующих в начале исследования коров с CIDR частота выявления охоты составила 67 и 45%, частота оплодотворения - 58 и 57%, а PR - 42 и 26%. Для контрольных телок и циклирующих телок с CIDR выявляемость в охоте составила 87 и 80%, оплодотворяемость - 61 и 61%, а PR - 64 и 49%. Для контрольных телок и нециклирующих телок CIDR выявляемость в охоте составила 54 и 48%, оплодотворемость - 56 и 58%, а PR - 31 и 28%. Eazi-Breed CIDR® (CIDR®, Pfizer), специально предназначенный для использования с PGF2α для синхронизации течки у мясного скота и молочных телок, был одобрен FDA CVM в 1997 году.⁷²

Прогестагены, PGF2 α и GnRH

Приход животных в охоту можно заблокировать прогестагенами, синхронизируя охоту после удаления блока P4, но, как правило, фертильность снижается, когда коров искусственно осеменяют во время синхронизированной охоты. В наше время доступны коммерческие продукты, содержащие прогестагены. Как известно PGF2α будет регрессировать ЖТ у крупного рогатого скота, и были разработаны программы синхронизации эструса с использованием PGF2α, но его введение неэффективно, если коровы не циклируют в период лечения. PGF2α и его различные аналоги коммерчески доступны. ГнРГ можно использовать в протоколах синхронизации эструса и управления воспроизводством, чтобы обновить фолликулярную волну, вызвав овуляцию и образование ЖТ. Существуют многочисленные протоколы управления охотой и осеменением для мясного и молочного скота, которые включают прогестагены, PGF2α и GnRH в различных комбинациях. Протоколы осеменения с коэффициентами стельности по TAI порядка 55% и выше взяты из исследований по разведению коров Bos taurus; коровы Bos indicus показали не столь хороший результат.^73,74 Однако, Williams и др.⁷⁵ разработали протокол осеменения (GnRH плюс PGF2α в день введения CIDR с его установкой на 5 дней, PGF2α в день удаления CIDR, GnRH и TAI через 66 часов с оплодотворяемостью более 50%) у крупного рогатого скота с генетикой Bos indicus.

Итоги

Протоколы эстральной синхронизации и управления воспроизводством можно найти в ряде статей^76–78 , а специфические протоколы и сводные данные можно найти в Johnson.⁷⁹ Кроме того, обновленные протоколы управления воспроизводством мясного скота ежегодно публикуются в каждом из справочников мясных быков-производителей AI Company, а протоколы для молочного скота теперь доступны в Совете по воспроизводству молочного скота (Dairy Cattle Reproduction Council). Обратите внимание, что главы 31, 32 и 33 охватывают определение течки, искусственное осеменение и фармакологический контроль эстрального цикла. Основная цель этой главы заключалась в том, чтобы представить историческую перспективу достижений в этой области.

Выводы

Обнародованные исследования привели к прикладным исследованиям, которые привели к появлению продуктов для синхронизации эструса и управления воспроизводством крупного рогатого скота, доступных сегодня. Такие исследования внесли значительный и положительный вклад в животноводство и общество. Протоколы половой синхронизации и управления разведением крупного рогатого скота расширяют использование ИО, способствуя росту генетического потенциала к производству мяса и молока и необходимы для осуществления коммерческого эмбриотрансфера. Использование протоколов может повысить эффективность производства мяса и молока, способствуя как экономической жизнеспособности предприятия, так и положительному воздействию на окружающую среду. Рентабельность протоколов положительна для большинства мясных и молочных предприятий, и существуют протоколы для удовлетворения потребностей большинства мясных и молочных предприятий в управлении племенным производством. Протоколы основаны на биологии коровы, а гормоны, используемые в протоколах, одобрены FDA CVM и документально подтверждены как безопасные для животных и окружающей среды, эффективны, а продукты животного происхождения безопасны для употребления в пищу человеком.

Что касается потребителей, производители, которые используют эти протоколы, удовлетворяют потребности потребителей, предоставляя высококачественную говядину и молочные продукты по приемлемой цене, снижают производственное воздействие на окружающую среду за счет повышения эффективности производства, а используемые гормоны не имеют негативных последствий для благополучия животных.

Ссылки

1. Wiltbank J. Потребности в исследованиях воспроизводства мясного крупного рогатого скота. J Anim Sci 1970;31:755–762.

2. Wiltbank J. Программы управления стадом для повышения эффективности воспроизводства мясного крупного рогатого скота. J Anim Sci 1974;38:58–67.

3. Odde K. Обзор методов синхронизации течки у коров после отёла. J Anim Sci 1990;68:817–830.

4. Chenault J, Boucher J, Hafs H. Синхронизация течки у коров мясных пород и тёлок мясных и молочных пород с помощью внутривлагалищных вкладышей с прогестероном и простагландина F2α с применением или без применения гонадотропин-рилизинг-гормона. Prof Anim Sci 2003;19:116–123.

5. Kesler D. Синхронизация течки у тёлок. Prof Anim Sci 2003;19:96–108.

6. Kojima F. Половой цикл у крупного рогатого скота: физиология, эндокринология и фолликулярные волны. Prof Anim Sci 2003;19:83–95.

7. Lamb G, Dahlen C, Brown D. Ультразвуковое исследование репродуктивной системы для наблюдения за развитием структур яичников и плода, выживаемостью эмбрионов и двойнями у коров мясных пород. Prof Anim Sci 2003;19: 135–143.

8. Mapletoft R, Martinez M, Colazo M, Kastelic J. Применение внутривлагалищных устройств с контролируемым высвобождением препарата для регуляции воспроизводства крупного рогатого скота. J Anim Sci 2003;81(электронное приложение 2):E28–E36.

9. Patterson D, Kojima F, Smith M. Обзор методов синхронизации течки у ремонтных тёлок мясных пород и коров после отёла.J Anim Sci 2003;81(электронное приложение 2):E166–E177.

10. Patterson D, Kojima F, Smith M. Методы синхронизации половых циклов у коров мясных пород после отёла с помощью ацетата меленгестрола.Prof Anim Sci 2003;19:109–115.

11. Stevenson J, Johnson S, Milliken G. Частота послеродовой анэструсии у подсосных коров мясных пород: методы стимуляции течки, овуляции и зачатия.Prof Anim Sci 2003;19:124–131.

12. Trimberger G, Hansel W. Частота зачатия и функция яичников после регуляции течки инъекцией прогестерона у молочного скота.J Anim Sci 1955;14:224–232.

13. Nellor J, Cole H. Гормональная регуляция течки и овуляции у тёлок мясных пород.J Anim Sci 1956;15:650–661.

14. Duncan G, Ericsson R, Zimbelman R. Механизмы регуляции функции яичников: материалы второго семинара Brook Lodge по проблемам репродуктивной биологии.J Reprod Fertil Suppl 1966;1:1–136.

15. Hansel W, Malven P, Black D. Регуляция полового цикла у крупного рогатого скота.J Anim Sci 1961; 20:621–625.

16. Zimbelman R. Определение минимальной эффективной дозы 6α-метил-17α-ацетоксипрогестерона для регуляции полового цикла у крупного рогатого скота.J Anim Sci 1963;22:1051–1058.

17. Hansel W, Donaldson L, Wagner W, Brunner M. Сравнение методов синхронизации полового цикла у мясного крупного рогатого скота в условиях откормочной площадки.J Anim Sci 1966;25:497– 503.

18. Upjohn: история Repromix^®, с. -1216. Компания TUCO Products Company,подразделение компании Upjohn Company, 1965, Каламазу, штат Мичиган.

19. Wiltbank J, Zimmerman D, Ingalls J, Rowden W. Применение прогестагенных соединений отдельно или в сочетании с эстрогеном для синхронизации течки.J Anim Sci 1965;24:990–994.

20. Wiltbank J, Shumway R, Parker W, Zimmerman D. Продолжительность течки, время овуляции и частота оплодотворения у тёлок мясных пород после синхронизации течки ацетофенидом дигидроксипрогестерона.J Anim Sci 1967;26:764–767.

21. Wiltbank J, Sturges J, Wideman D, LeFever D, Faulkner L. Регуляция течки и овуляции у крупного рогатого скота с помощью подкожных имплантатов и эстрогенов.J Anim Sci 1971;33:600–606.

22. Spitzer J, Miksch E, Wiltbank J. Синхронизация после применения норгестомета и 5 или 6 mg EV.J Anim Sci 1976;43:305 (аннотация).

23. Spitzer J, Jones D, Miksch E, Wiltbank J. Синхронизация течки у мясного крупного рогатого скота. III. Полевое исследование на тёлках с применением имплантата с норгестометом и инъекций норгестомета и валерата эстрадиола. Theriogenology 1978;10:223–229.

24. Miksch E, LeFever D, Mukembo G, Spitzer J, Wiltbank J. Синхронизация течки у мясного крупного рогатого скота. II. Влияние инъекции норгестомета и эстрогена в сочетании с имплантатом с норгестометом у тёлок и коров. Theriogenology 1978;10:201–221.

25. Управление по контролю качества пищевых продуктов и лекарственных средств. Syncro-Mate-BR.Федеральный реестр 47 FR 55477, декабрь 10, 1982.

26. Zimbelman R, Smith L. Контроль овуляции у крупного рогатого скота с помощью меленгестрола. I. Влияние дозы и способа введения. J Reprod Fertil 1966;11:185–191.

27. Zimbelman R, Smith L. Контроль овуляции у крупного рогатого скота с помощью меленгестрола. II. Влияние на размер и активность фолликулов. J Reprod Fertil 1966;11:193–201.

28. Bloss R, Northam J, Smith L, Zimbelman R. Влияние перорального применения ацетата меленгестрола на продуктивность крупного рогатого скота на откорме. J Anim Sci 1966;25:1048–1053.

29. Imwalle D, Fernandez D, Schillo K. Ацетат меленгестрола подавляет предовуляторный выброс лютеинизирующего гормона, проявление половой охоты и овуляцию у телок мясных пород. J Anim Sci 2002;80:1280–1284.

30. Lauderdale J. Применение MGA (ацетата меленгестрола) в животноводстве. В кн.: Meissonier E, Mitchell-Vigneron J (ред.) Анаболические препараты в животноводстве: аспекты общественного здравоохранения, аналитические методы и регулирование. Симпозиум, состоявшийся в Париже в феврале 15–17, 1983 . Париж: OIE, 1983.

31. Управление по контролю качества пищевых продуктов и лекарственных средств США. MGA. Federal Register 33 FR 2602. Февраль 6, 1968.

1. Zimbelman R, Lauderdale J, Sokolowski J, Schalk T. Оценка безопасности и фармакологических свойств ацетата меленгестрола у крупного рогатого скота и других животных: обзор. J Am Vet Med Assoc 1970;157:1528–1536.

2. Siros J, Fortune J. Удлинение полового цикла у крупного рогатого скота низкими дозами экзогенного прогестерона: модель для изучения доминирования фолликулов в яичнике. Endocrinology 1990;127:916–925.

3. Stock A, Fortune J. Доминирование фолликулов в яичнике у крупного рогатого скота: связь между продолжительным ростом овуляторного фолликула и эндокринными показателями. Endocrinology 1993;132:1108–1114.

4. Savio J, Thatcher W, Badinga L, de la Sota R, Wolfenson D. Регуляция смены доминантных фолликулов в течение полового цикла у коров. J Reprod Fertil 1993;97:197–203.

5. Savio J, Thatcher W, Morris G, Entwistle G, Drost M, Mattiacci M. Влияние низкой концентрации прогестерона в плазме при использовании интравагинального устройства, высвобождающего прогестерон, на смену фолликулов у крупного рогатого скота. J Reprod Fertil 1993;98:77–84.

6. Wehrman M, Roberson M, Cupp A и др. . Повышение уровня экзогенного прогестерона при синхронизации половой охоты снижает уровень эндогенного 17β-эстрадиола и повышает вероятность зачатия у коров. Biol Reprod 1993;49:214–220.

7. Sanchez T, Wehrman M, Bergfeld E и др. . Частота наступления беременности у коров и телок выше, если во время лечения прогестином для синхронизации сроков половой охоты присутствует желтое тело. Biol Reprod 1993;49:1102–1107.

8. FDA CVM. Сведения в открытом доступе. NADA 141–200.

9. Kurzroc R, Lieb C. Биохимические исследования спермы человека. II. Действие спермы на матку человека. Proc Soc Exp Biol Med 1930;28:268–272.

10. Goldblatt M. Вещество в семенной жидкости, снижающее артериальное давление. J Soc Chem Ind 1933;52:1056–1057.

11. von Euler U. Вещество в пузырьковой железе, снижающее артериальное давление. J Physiol 1935;84:21P.

12. Duncan G, Ericsson R, Zimbelman R. Механизмы регуляции функции яичников: материалы Второго семинара в Брук-Лодж по проблемам биологии размножения. J Reprod Fertil Suppl 1966;1:1–136.

13. Lauderdale J. Влияние PGF2α на беременность и половые циклы крупного рогатого скота. J Anim Sci 1972;35:246 (аннотация).

14. Liehr R, Marion G, Olson H. Влияние простагландина на половые циклы крупного рогатого скота. J Anim Sci 1972;35:247 (аннотация).

15. Rowson L, Tervit R, Brand A. Применение простагландина для синхронизации половой охоты у крупного рогатого скота. J Reprod Fertil 1972;29:145 (аннотация).

16. Louis T, Hafs H, Seguin B. Прогестерон, LH, половая охота и овуляция после введения простагландина F2α. Proc Soc Exp Biol Med 1973;143:152–155.

17. Inskeep E. Возможности применения простагландинов для управления репродуктивными циклами домашних животных. J Anim Sci 1973;36:1149–1157.

18. Lauderdale J, Seguin B, Stellflug J и др. . Фертильность крупного рогатого скота после инъекции PGF2α. J Anim Sci 1974;38:964–967.

19. Peters J, Welch J, Lauderdale J, Inskeep E. Синхронизация половой охоты у мясного крупного рогатого скота с помощью PGF2α и бензоата эстрадиола. J Anim Sci 1977;45:230–235.

20. Lauderdale J, Moody E, Kasson C. Влияние дозы PGF2α на возобновление течки и наступление беременности у крупного рогатого скота. J Anim Sci 1977;45(приложение 1):181 (аннотация).

21. Lauderdale J, McAllister J, Kratzer D, Moody E. Применение простагландина F2α (PGF2α) в воспроизводстве крупного рогатого скота. Acta Vet Scand Suppl 1981;77:181–191.

22. Управление по контролю качества пищевых продуктов и лекарственных средств. Лютализ^® стерильный раствор. 1979, 1981 FDA CVM, сведения в открытом доступе. NADA 108–901.

23. Kittock R, Brittand J, Convey E. Влияние GnRH на уровень LH и прогестерона у коров с кистами яичников. J Anim Sci 1972;35:1120 (аннотация).

24. Mauer R, Rippel R. Реакция крупного рогатого скота на синтетический гонадотропин-рилизинг-гормон. J Anim Sci 1972;35:249 (аннотация).

25. Zolman J, Convey E, Britt J, Hafs H. Высвобождение бычьего лютеинизирующего гормона под действием очищенного свиного и синтетического гонадотропин-рилизинг-гормона. Proc Soc Exp Biol Med 1973;142:189–193.

26. Kaltenbach C, Dunn T, Kiser T, Corah L, Akbar A, Niswender G. Высвобождение FSH и LH у тёлок мясных пород под действием синтетического гонадотропин-рилизинг-гормона. J Anim Sci 1974;38:357–362.

27. Thatcher W, Macmillan K, Hansen P, Drost M. Представления о регуляции функции жёлтого тела эмбрионом и фолликулами яичников для повышения плодовитости. Theriogenology 1989;31:149–164.

28. Twagiramungu H, Guilbault L, Prouix J, Dufour J. Влияние Syncro-Mate-B и простагландина F2α на синхронизацию течки и плодовитость мясного крупного рогатого скота. Can J Anim Sci 1992;72:31–39.

29. Twagiramungu H, Guilbault L, Prouix J, Dufour J. Синхронизация течки и плодовитость мясного крупного рогатого скота при двух инъекциях бусерелина и простагландина. Theriogenology 1992;38:1131–1144.

30. Twagiramungu H, Guilbault L, Prouix J, Villeneuve P, Dufour J. Влияние агониста гонадотропин-рилизинг-гормона (бусерелина) на синхронизацию течки и плодовитость коров мясных пород. J Anim Sci 1992;70:1904–1910.

31. Schmitt E, Diaz T, Drost M, Thatcher W. Применение агониста GnRH в протоколе осеменения в установленное время у крупного рогатого скота. J Anim Sci 1994;72(приложение 1):292 (аннотация).

32. Управление по контролю качества пищевых продуктов и лекарственных средств. Цисторелин^® . FDA CVM, сведения в открытом доступе, 1986. NADA 098–379.

33. Pierson R, Ginther O. Ультразвуковое исследование яичников крупного рогатого скота. Theriogenology 1984;21:495–504.

34. Savio J, Keenan L, Boland M, Roche J. Характер роста доминантных фолликулов в течение полового цикла у тёлок. J Reprod Fertil 1988;83:663–671.

35. Sirois J, Fortune J. Динамика фолликулов яичников в течение полового цикла у тёлок по данным ультразвукового исследования в реальном времени. Biol Reprod 1988;39:308–317.

36. Ginther O, Knopf L, Kastelic J. Временные взаимосвязи между процессами в яичниках крупного рогатого скота в течение половых циклов с двумя и тремя волнами роста фолликулов. J Reprod Fertil 1989;87:223–230.

37. Roche J. Доля отелившихся коров после осеменения по окончании 12-дневного применения силиконовых спиралей, пропитанных прогестероном. J Anim Sci 1976;43:164–169.

38. Smith R, Pomerantz A, Beal W, McCann J, Pilbeam T, Hansel W. Осеменение тёлок голштинской породы в заранее установленное время после синхронизации полового цикла с применением прогестерона и простагландина. J Anim Sci 1984;58:792–800.

39. Moody E, McAllister J, Lauderdale J. Влияние PGF2α и MGA на регуляцию полового цикла у крупного рогатого скота. J Anim Sci 1978;47(приложение 1):36 (аннотация).

40. Lucy M, Billings H, Butler W и др. . Эффективность интравагинального устройства с прогестероном и инъекции PGF2α для синхронизации течки и сокращения времени до наступления беременности у коров мясных пород после отёла, тёлок мясных пород в период полового созревания и тёлок молочных пород. J Anim Sci 2001;79:982–995.

41. Управление по контролю качества пищевых продуктов и лекарственных средств. Eazi-Breed™ CIDR^® (CIDR) 1997. 73. Mikeska J, Williams G. Время наступления предовуляторных эндокринных изменений, течки и овуляции у самок помеси брахманской и герефордской пород при синхронизации с помощью норгестомета и валерата эстрадиола. J Anim Sci 1988;66:939–946.

42. Lemaster J, Yelich J, Kempfer J и др. . Эффективность применения GnRH в сочетании с простагландином F2α для синхронизации течки у крупного рогатого скота пород Bos indicus. J Anim Sci 2001;79:309–316.

43. Williams G, Sanko R, Allen C и др. . Данные о том, что регрессия жёлтого тела в начале 5-дневного протокола синхронизации Co-Synch + CIDR значительно повышает частоту наступления беременности при искусственном осеменении в установленное время у Bos indicus — крупный рогатый скот с примесью крови этого вида. J Anim Sci 2011;89:251.

44. Kesler J. Разработка протоколов синхронизации эструса у мясного крупного рогатого скота. В кн.: Материалы конференции «Прикладные репродуктивные стратегии в мясном скотоводстве» , Биллингс , Монтана, 2007, с. 47–61.

45. Lamb G, Larson J, Dahlen C. Протоколы синхронизации эструса у коров. В кн.: Материалы конференции «Прикладные репродуктивные стратегии в мясном скотоводстве» , Биллингс , Монтана, 2007, с. 99–114.

46. Patterson D, Busch D, Leitman N, Wilson D, Mallory D, Smith M. Протоколы синхронизации эструса у тёлок. В кн.: Материалы конференции «Прикладные репродуктивные стратегии в мясном скотоводстве» , Биллингс , Монтана, 2007, с. 63–97.

47. Johnson S. Протоколы синхронизации эструса и овуляции. В кн.: Материалы конференции «Прикладные репродуктивные стратегии в мясном скотоводстве» , Биллингс , Монтана, 2007, с. 115–126.