Воспроизводство крупного рогатого скота

Свойства мочи приводят к обширному некрозу тканей на вентральной поверхности живота и предрасполагают животное к локальной инфекции. Над скопившейся мочой следует сделать несколько дренажных разрезов на вентральной поверхности живота, чтобы обеспечить её отток из тканей. Если направлять эти разрезы параллельно подкожным венам живота, риск кровотечения будет минимальным. Кроме того, ампутация и удаление дистальной части полового члена облегчают отток через отверстие препуция.¹⁵ Выживаемость животных после лечения разрыва уретры, по имеющимся данным, составляет 93%.²³

Разрыв мочевого пузыря

У ценных племенных животных и животных-компаньонов показано первичное ушивание мочевого пузыря через лапаротомный доступ. Лапаротомия на стоящем животном может обеспечить достаточный доступ при разрывах краниодорсальной стенки, однако наилучший доступ к мочевому пузырю даёт вентральный парамедианный разрез. Разрыв мочевого пузыря может представлять собой одиночный дефект краниодорсальной или краниовентральной стенки либо множественные небольшие отверстия, возникшие вследствие хронического перерастяжения и некроза. Для определения локализации и типа разрыва у молодых животных необходима контрастная цистография, а у взрослых — диагностическая операция. У животных, предназначенных на убой, разрыв дорсальной стенки часто закрывается фибрином, если удаётся восстановить проходимость мочевыводящих путей с помощью промежностной или седалищной уретростомии. Мы предпочитаем вводить катетер Фолея непосредственно в просвет мочевого пузыря через седалищную уретростому. Катетер фиксируют швом и оставляют до отправки животного на убой.

Для ценных животных, у которых обструкция мочевыводящих путей сохраняется, имеется травма уретры средней или тяжёлой степени либо дефект мочевого пузыря недоступен для первичного ушивания, лучшим вариантом является трубчатая цистостомия. Даже у животных, предназначенных на убой, эту трубку можно оставлять на 4 недель и более.⁵² Некоторые животные начинают нормально мочиться без дополнительных вмешательств.⁵²

Тяжёлую уремию и нарушения электролитного баланса необходимо устранить до проведения общей анестезии; мочу из брюшной полости в любом случае необходимо удалить. Для этого можно использовать троакар с канюлей для рубца или фенестрированный торакальный катетер. Дренирование брюшной полости следует проводить постепенно (в течение 30 мин или дольше), предпочтительно при поддерживающей внутривенной инфузионной терапии. Это необходимо сделать до укладки животного для любой операции, поскольку избыток жидкости в брюшной полости сдавливает диафрагму и каудальную полую вену, ухудшая состояние пациента. Быстрое удаление мочи из брюшной полости во время операции может привести к резкому падению артериального давления и смерти.

Выживаемость бычков-кастратов с разрывом мочевого пузыря, по имеющимся данным, составляет 90% после трубчатой цистостомии⁵² по сравнению с 55%⁵³–86%⁵⁴ после ушивания мочевого пузыря с уретротомией или без неё и трансуретральной катетеризации. Самопроизвольное заживление мочевого пузыря происходит приблизительно у 50% животных после уретротомии и дренирования брюшной полости.²³

Стриктура уретры

Стриктуры уретры у крупного рогатого скота могут возникать после мочекаменной болезни или в результате её лечения. Бужирование (баллонную дилатацию) можно проводить пищеводным баллонным дилататором размером до 8 по шкале Френча при давлении 207 кПа, раздувая баллон на 1 мин

и затем спуская его на 45 с. Процедуру повторяют три раза подряд. Её успех зависит от количества, длины и расположения стриктур. По нашему опыту, устранение стриктур дистальной части полового члена, особенно его головки, бывает успешным в умеренной степени. В качестве альтернативы один из нас (R.N.S.) применил лазерную абляцию через седалищную уретротомию для лечения локальной циркулярной стриктуры уретры у быка. Впоследствии клинических признаков стриктуры не наблюдалось. Для ценных племенных животных возможна также установка трансуретрального стента.

Послеоперационный уход

Животным с азотемией рекомендуется внутривенное введение жидкостей для восполнения потерь при диурезе после устранения обструкции; это также может помочь предотвратить закупорку уретры или катетера клеточным детритом.³⁶ Предпочтительным раствором является физиологический раствор; при необходимости дополнительно вводят другие электролиты. Применение противомикробных препаратов следует продолжать не менее 5–7 дней после операции, а если катетер оставлен на месте — дольше. Оптимальны бета-лактамы; у цефалоспоринов при применении согласно инструкции обычно сравнительно короткие сроки ожидания. Хлорид аммония рекомендуется давать внутрь ежедневно в дозе 200–400 mg/kg до достижения подкисления мочи. Нерассасывающиеся швы следует снять через 10–14 дней после операции. Чтобы избежать повторной обструкции, необходимо устранить факторы рациона, среды и содержания, предрасполагающие к образованию мочевых камней.

Профилактика

В идеале следует определить состав мочевых камней, чтобы точно подобрать меры профилактики и контроля. Рацион необходимо скорректировать так, чтобы соотношение кальция и фосфора составляло 1.5–2.0 : 1. Содержание магния в рационе следует ограничить до уровня ниже 0.2%. Крайне важно достаточное потребление воды. Следует проверить доступность источников воды и её качество. Потребление воды можно повысить, добавляя в рацион хлорид натрия. Для снижения pH мочи и предотвращения образования апатитных, струвитных и карбонатных камней в рацион можно добавлять хлорид аммония. В неблагополучных районах самок можно выпасать на пастбищах с кормовыми растениями, богатыми кремнием, чтобы снизить заболеваемость силикатным уролитиазом.

Список литературы

1. Udall R, Chow F. Этиология мочекаменной болезни и борьба с ней. Adv Vet Sci Comp Med 1969;13:29–57.

2. Hawkins W. Экспериментальное воспроизведение мочекаменной болезни и борьба с ней. J Am Vet Med Assoc 1965;147:1321–1323.

3. Larson B. Выявление, лечение и профилактика мочекаменной болезни у крупного рогатого скота. Vet Med 1996;91:366–377.

4. Hardisty J, Dillman R. Факторы, предрасполагающие к мочекаменной болезни у крупного рогатого скота на откормочных площадках. Iowa State University Veterinarian 1971;33:77–81.

5. Parrah J, Hussain S, Moulvi B, Singh M, Athar H. Анализ мочевых камней у крупного рогатого скота: обзор 30 случаев. Isr J Vet Med 2010;65:103–107.

6. Sharma A, Mogha I, Singh G, Amarpal, Aithal H. Частота обструкции уретры у животных. Indian J Anim Sci 2007;77:455–456.

7. Marsh H, Safford JW. Влияние отсроченной кастрации на развитие уретры у телят. J Am Vet Med Assoc 1957;130:342–344.

8. Frank F, Meinershagen W, Scrivner L, Keith T, Baron R. Мочекаменная болезнь. 1. Частота образования камней в мочевом пузыре, свойства мочи и диаметры уретры у бычков-кастратов на откормочных площадках. Am J Vet Res 1961;22:899–901.

1. Yamada H, Abe N, Sota K, Kameya T. Ультразвуковое выявление камней в почечной лоханке у здоровых молочных коров. J Japan Vet Med Assoc 1991;44:108–111.

2. Todhunter P, Baird A, Wolfe D. Отсутствие эрекции как последствие обструктивной мочекаменной болезни у козла. J Am Vet Med Assoc 1996;209:650–652.

3. Divers T. Заболевания мочевыводящих путей у крупного рогатого скота. Bov Pract 1989;24:150–153.

4. Winter R, Hawkins L, Holterman D, Jones S. Катетеризация как эффективный метод лечения уретральных камней у крупного рогатого скота. Vet Med 1987;82:1261–1268.

5. Wolfe D. Мочекаменная болезнь. В кн.: Wolfe DF, Moll HD (ред.) Хирургия мочеполовой системы крупных животных , 2-е изд. Балтимор: Williams & Wilkins, 1998, с. 349–354.

6. Sockett D, Knight A, Fettman M, Kiehl A, Smith J, Arnold S. Метаболические изменения при экспериментально вызванном разрыве мочевого пузыря у крупного рогатого скота. Cornell Vet 1986;76:198–212.

7. Hooper R, Taylor T. Хирургия мочевыводящих путей. Vet Clin North Am Food Anim Pract 1995;11:95–121.

8. Donecker J, Bellamy J. Изменения биохимических показателей крови у крупного рогатого скота с разрывом мочевого пузыря и уретры. Can Vet J 1982;23:355–357.

9. Wilson D, Macwilliams P. Оценка результатов клинико-лабораторных исследований при экспериментально вызванном разрыве мочевого пузыря у телят до начала функционирования рубца. Can J Vet Res 1998;62:140–143.

10. Floeck M. Ультразвуковое исследование при заболеваниях мочевыводящих путей у крупного рогатого скота. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2009;25:651–667.

11. Parrah D, Moulvi B, Malik H и др. Абдоминоцентез и анализ перитонеальной жидкости в клинических случаях обструктивной мочекаменной болезни у крупного рогатого скота. Vet Practitioner 2011;12:218–222.

12. Skarda R. Местная и регионарная анестезия у жвачных животных и свиней. Vet Clin North Am Food Anim Pract 1996;12:579–626.

13. Scheel E, Paton I. Мочевые конкременты у крупного рогатого скота на откорме: сообщение о лечении аминопромазином. J Am Vet Med Assoc 1960;137: 665–667.

14. Gasthuys F, Steenhaut M, De Moor A, Sercu K. Хирургическое лечение обструкции уретры, вызванной уролитиазом, у самцов крупного рогатого скота: обзор 85 случаев. Vet Rec 1993;133:522–526.

15. Oehme F, Tillmann H. Диагностика и лечение уролитиаза у жвачных животных. J Am Vet Med Assoc 1965;147:1331–1339.

16. Van Metre D, House J, Smith B и др. . Обструктивный уролитиаз у жвачных животных: медикаментозное лечение и хирургия уретры. Comp Cont Educ Pract Vet 1996;18:317–327.

17. Walker D. Хирургия полового члена у крупного рогатого скота: часть I. Mod Vet Pract 1979;60:839–843.

18. Streeter R, Washburn K, Higbee R, Bartels K. Лазерная литотрипсия конкремента уретры через седалищную уретротомию у кастрированного бычка. J Am Vet Med Assoc 2001;219:640–643.

19. Verwilghen D, Ponthier J, Van Galen G и др. . Применение радиальной экстракорпоральной ударно-волновой терапии при лечении уролитиаза уретры у лошадей: предварительное исследование. J Vet Intern Med 2008;22:1449–1451.

20. Rocken M, Furst A, Kummer M, Mosel G, Tschanz T, Lischer CJ. Эндоскопически ассистированная электрогидравлическая ударно-волновая литотрипсия у стоящих лошадей под седацией. Vet Surg 2012;41:620–624.

21. Kilic E, Ozba B, Atalan G. Катетеризация корзинчатым катетером: метод удаления конкрементов из уретры крупного рогатого скота. Indian Vet J 2003;80:43–45.

22. Oehme F. Устройство для извлечения мочевых конкрементов при нехирургическом лечении уролитиаза у быков. Vet Med Small Anim Clin 1968;63:53–57.

23. Halland S, House J, George L. Уретроскопия и лазерная литотрипсия для диагностики и лечения обструктивного уролитиаза у коз и вислобрюхих свиней. J Am Vet Med Assoc 2002;220:1831–1834.

24. Halland S, Phelps M, House J. Новые методы лечения и профилактики обструктивного уролитиаза у мелких жвачных животных и вислобрюхих свиней. В кн.: Материалы 18-го ежегодного форума по ветеринарной медицине Американского колледжа ветеринарной внутренней медицины . Лейквуд, штат Колорадо: ACVIM, 2000, с. 268–270.

25. Haven M, Bowman K, Engelbert T, Blikslager A. Хирургическое лечение уролитиаза у мелких жвачных животных. Cornell Vet 1993;83:47–55.

26. Rakestraw P, Fubini S, Gilbert R, Ward J. Цистостомия с установкой трубки для лечения обструктивного уролитиаза у мелких жвачных животных. Vet Surg 1995;24:498–505.

27. Ewoldt J, Anderson D, Miesner M, Saville W. Ближайшие и отдалённые результаты и факторы, позволяющие прогнозировать выживаемость после хирургической цистостомии с установкой трубки для лечения обструктивного уролитиаза у мелких жвачных животных. Vet Surg 2006;35:417–422.

28. Van Metre D, House J, Smith B и др. . Обструктивный уролитиаз у жвачных животных: хирургическое лечение и профилактика. Comp Cont Educ Pract Vet 1996;18:S275–S289.

29. Van Metre D, Smith B. Клиническое ведение случаев уролитиаза у мелких жвачных животных. В кн.: Материалы 9-го ежегодного форума по ветеринарной медицине Американского колледжа ветеринарной внутренней медицины, Новый Орлеан, штат Луизиана. ACVIM, 1991, с. 555–557.

30. Parrah J, Moulvi B, Hussain S, Bilal S, Ridwana. Сравнительная эффективность цистостомии с установкой трубки и цистотомии с оставлением постоянного уретрального катетера при лечении обструктивного уролитиаза у крупного рогатого скота. Indian J Vet Surg 2010;31:81–85.

31. Cockcroft P. Растворение конкрементов, вызывающих обструкцию уретры, у барана. Vet Rec 1993;132:486.

32. Streeter R, Washburn K, Mccauley C. Чрескожная цистостомия с установкой трубки и промывание мочевого пузыря для лечения обструктивного уролитиаза у козы. J Am Vet Med Assoc 2002;221:546–549.

33. Amarpal, Kinjavdekar P, Aithal H, Pawde A, Pratap K. Лечение обструктивного уролитиаза у вола методом цистостомии с установкой трубки. Indian Vet J 2010;87:65–67.

34. Parrah J, Moulvi B, Hussain S, Bilal S. Инновационный метод цистостомии с установкой трубки для лечения клинических случаев обструктивного уролитиаза у крупного рогатого скота. Veterinarski Arhiv 2011;81:321–337.

35. Van Metre D, Fubini S. Уролитиаз у овец и коз: ещё один фрагмент головоломки. Vet Surg 2006;35:413–416.

36. Fazili M, Malik H, Bhattacharyya H, Buchoo B, Moulvi B, Makhdoomi D. Малоинвазивная хирургическая цистотомия с установкой трубки для лечения обструктивного уролитиаза у мелких жвачных животных с неповреждённым мочевым пузырём. Vet Rec 2010;166:528–531.

37. Franz S, Dadak A, Schoffmann G и др. . Лапароскопически ассистированная имплантация мочевого катетера у баранов. J Am Vet Med Assoc 2008;232:1857–1862.

38. Gill M, Sod G. Уретропластика с использованием трансплантата слизистой оболочки щеки для устранения промежностной уретростомы у кастрированного козла. Vet Surg 2004;33:382–385.

39. Hunter B, Huber M, Riddick T. Лапароскопически ассистированная марсупиализация мочевого пузыря у козла с рецидивирующей обструкцией уретры после промежностной уретростомии. J Am Vet Med Assoc 2012;241:778–781.

40. May K, Moll H, Duncan R, Moon M, Pleasant R, Howard R. Экспериментальная оценка марсупиализации мочевого пузыря у козлов. Vet Surg 2002;31:251–258.

41. May K, Moll H, Wallace L, Pleasant R, Howard R. Марсупиализация мочевого пузыря при лечении обструктивного уролитиаза у козлов. Vet Surg 1998;27:583–588.

42. Fortier L, Gregg A, Erb H, Fubini S. Обструктивный уролитиаз у коз: необходимость 2-го хирургического вмешательства и смертность после чрескожной трубчатой цистостомии, хирургической трубчатой цистостомии или марсупиализации мочевого пузыря. Vet Surg 2004;33:661–667.

43. Canpolat I, Bulut S. Экспериментальная оценка марсупиализации мочевого пузыря у баранчиков и телят. Indian Vet J 2005; 82:398–400.

44. Hastings D. Постоянные катетеры для лечения бычков с разрывом мочевого пузыря. J Am Vet Med Assoc 1965;147:1329–1330.

45. Prasad B, Sharma SN, Singh J, Kohli RN. Хирургическое восстановление и лечение разрыва мочевого пузыря у волов. Indian Vet J 1978; 55:905–911.

46. Sharma S, Vikash K. Разрыв мочевого пузыря у крупного рогатого скота и его лечение: ретроспективное исследование 156 случаев. Intas Polivet 2011;12:375–378.

Глава 20

Подготовка быков-пробников

Гретхен Гриссетт

Кафедра клинических наук, Колледж ветеринарной медицины, Университет штата Канзас, Манхэттен, Канзас, США

Введение

Исторически залогом успешной программы искусственного осеменения (ИО) было точное выявление охоты. Даже при использовании доступных сегодня программ синхронизации охоты и ИО в установленное время выявление охоты остаётся важным: оно позволяет оценивать эффективность протокола, оперативно выявлять и устранять проблемы, а также определять животных, которых можно осеменить вне установленного «окна ИО».

Существует несколько способов выявления охоты, включая нанесение краски на корень хвоста, индикаторы садки, самоклеящиеся индикаторные наклейки и визуальное наблюдение. Все эти способы основаны на том, что во время охоты корова стоит неподвижно при садке. Поэтому при их применении можно пропустить самок со слабо выраженной или непродолжительной охотой.¹ Безусловно, наиболее эффективно выявляет охоту бык; его присутствие само по себе также даёт положительный эффект.² Следовательно, при проведении программы ИО использование быка-пробника (некастрированного, но стерилизованного самца) — наиболее надёжный способ выявления охоты.

При выборе способа подготовки быка-пробника необходимо учитывать несколько факторов; потребности и ожидания у каждого животновода будут различаться. Помимо очевидной необходимости сделать быка бесплодным, следует учитывать статус стада (открытое или закрытое). Если стадо открытое, важным фактором становится передача инфекций половым путём, и при выборе хирургической операции для подготовки быка-пробника необходимо предусмотреть предотвращение введения полового члена при садке. Кроме того, с животноводом следует обсудить ожидаемый срок использования животного. В среднем быки-пробники остаются в стаде 1–3 лет.¹ Снижение полового влечения — наиболее частая причина выбраковки; следующие по частоте причины — чрезмерные размеры и агрессивность.³ Таким образом, основные цели хирургической подготовки быка-пробника — сделать его бесплодным, предотвратить введение полового члена и тем самым передачу инфекций половым путём, не допуская при этом чрезмерного снижения полового влечения.^4,5

Правильный выбор быка также является важной частью подготовки быка-пробника. Идеальный бык должен быть умеренно крупным, иметь спокойный нрав и легко поддаваться обращению. Он также должен быть свободен от заразных заболеваний. Разумеется, быку необходимо сильное половое влечение, однако у годовалых быков его бывает трудно оценить.⁴Операцию по подготовке быка-пробника необходимо проводить заблаговременно до случного сезона, чтобы

оставалось время для заживления и восстановления после операции. В идеале её следует проводить у быков моложе 272 kg, главным образом потому, что с ними легче работать и во время операции кровотечение бывает менее выраженным.⁴

Операции по подготовке быка-пробника можно разделить на две категории: препятствующие прохождению спермы и обеспечивающие стерильность (вазэктомия, эпидидимэктомия) и предотвращающие введение полового члена (транслокация полового члена и препуция, пенопексия, формирование препуциального кармана). В зависимости от потребностей и ожиданий животновода для подготовки быка-пробника можно использовать любую из этих операций или их сочетание.

Вазэктомия

Как отмечалось выше, вазэктомия делает быка бесплодным, но не препятствует нормальному половому поведению и спариванию. Операцию можно проводить при фиксации быка в стоячем или лежачем положении либо в станке с возможностью наклона, если он имеется. Обычно хирургический доступ выполняют по передней поверхности шейки мошонки. Однако при фиксации в стоячем положении доступ выполняют по задней поверхности шейки мошонки.

Шерсть на шейке мошонки следует выстричь и асептически подготовить операционное поле. В предполагаемом месте разреза над каждым семенным канатиком следует инфильтрировать ткани раствором лидокаина 2%. Над каждым семенным канатиком делают разрез длиной 3-cm через кожу и мясистую оболочку мошонки. Затем семенной канатик выделяют, подводя под него целиком кровоостанавливающий зажим. Семявыносящий проток определяют пальпацией. Это плотное образование проходит с медиальной стороны семенного канатика и имеет диаметр примерно 2–3 mm. После его обнаружения осторожно рассекают влагалищную оболочку, соблюдая особую осторожность, чтобы не повредить мышцу, поднимающую яичко, или лозовидное венозное сплетение и не вызвать обильного кровотечения. После рассечения влагалищной оболочки семявыносящий проток выделяют другим кровоостанавливающим зажимом (рисунок 20.1).

На расстоянии примерно 3–5 mm друг от друга накладывают две лигатуры из рассасывающегося шовного материала № 0.^4,5 Участок семявыносящего протока между двумя лигатурами удаляют. Кожу ушивают узловыми швами с перекрещиванием нити, используя нерассасывающийся шовный материал. Для профилактики послеоперационной инфекции можно назначить антибиотики,