Воспроизводство крупного рогатого скота

Bao B, Garverick H. Экспрессия генов стероидогенных ферментов и рецепторов гонадотропинов в фолликулах крупного рогатого скота в ходе фолликулярных волн: обзор. J Anim Sci 1998;76:1903–1921.

Evans A, Fortune J. Отбор доминантного фолликула у крупного рогатого скота происходит при отсутствии различий в экспрессии матричной рибонуклеиновой кислоты рецепторов гонадотропинов. Endocrinology 1997; 138:2963–2971.

Ginther O, Beg M, Donadeu F, Bergfelt D. Механизм отклонения в развитии фолликулов у сельскохозяйственных животных с овуляцией одной яйцеклетки. Anim Reprod Sci 2003; 78:239–257.

Ginther O, Bergfelt D, Beg M, Kot K. Отбор фолликула у крупного рогатого скота: взаимосвязь скорости роста, ранга по диаметру и способности к доминированию. Biol Reprod 2001;65:345–350.

Evans A, Ireland J, Winn M и др.. Идентификация генов, участвующих в апоптозе и развитии доминантного фолликула в ходе фолликулярных волн у крупного рогатого скота. Biol Reprod 2004;70:1475–1484.

Mihm M, Baker P, Ireland J и др.. Молекулярные доказательства того, что рост доминантных фолликулов у крупного рогатого скота сопровождается снижением зависимости от фолликулостимулирующего гормона и повышением зависимости от лютеинизирующего гормона. Biol Reprod 2006;74:1051–1059.

Beg M, Bergfelt D, Kot K, Wiltbank M, Ginther O. Факторы фолликулярной жидкости и экспрессия генов в клетках гранулёзы, связанные с отклонением в развитии фолликулов у крупного рогатого скота. Biol Reprod 2001;64:432–441.

Ginther O, Bergfelt D, Beg M, Meira C, Kot K. Влияние внутрифолликулярной инъекции инсулиноподобного фактора роста 1 на механизм отклонения в развитии фолликулов у тёлок и кобыл in vivo. Biol Reprod 2004;70:99–105.

Rivera G, Fortune J. Протеолиз белков, связывающих инсулиноподобный фактор роста, -4 и -5 в фолликулярной жидкости крупного рогатого скота: значение для отбора и доминирования фолликулов яичника. Endocrinology 2003;144:2977–2987.

Liu Z, Youngquist R, Garverick A, Antoniou E. Молекулярные механизмы, регулирующие отбор фолликула яичника у крупного рогатого скота. Mol Reprod Dev 2009;76:351–366.

Mihm M, Baker P, Fleming L, Monteiro A, O’Shaughnessy P. При выделении доминантного фолликула из когорты фолликулов у крупного рогатого скота повышается экспрессия мРНК генов, связанных с развитием новых тканей. Reproduction 2008;135:253–265.

Skinner M, Schmidt M, Savenkova M, Sadler-Riggleman I, Nilsson E. Регуляция транскриптомов клеток гранулёзы и теки в ходе развития антральных фолликулов яичника. Mol Reprod Dev 2008;75:1457–1472.

Lopez H, Sartori R, Wiltbank M. Репродуктивные гормоны и рост фолликулов при развитии одного или нескольких доминантных фолликулов у крупного рогатого скота. Biol Reprod 2005;72:788–795.

Quirk S, Hickey G, Fortune J. Рост и регрессия фолликулов яичника в фолликулярную фазу полового цикла у тёлок со спонтанным и индуцированным PGF-2a лютеолизом. J Reprod Fertil 1986;77:211–219.

Ko J, Kastelic J, Del Campo M, Ginther O. Влияние доминантного фолликула на динамику фолликулов яичника в течение полового цикла у тёлок. J Reprod Fertil 1991;91:511–519.

Sartori R, Haughian J, Shaver R, Rosa G, Wiltbank M. Сравнение функции яичников и уровня циркулирующих стероидов в половых циклах у тёлок голштинской породы и лактирующих коров. J Dairy Sci 2004;87:905–920.

Fricke P, Wiltbank M. Влияние молочной продуктивности на частоту двойной овуляции у молочных коров. Theriogenology 1999;52: 1133–1143.

Vasconcelos J, Sartori R, Oliveira H, Guenther J, Wiltbank M. Уменьшение размера овулирующего фолликула приводит к уменьшению размера образующегося впоследствии жёлтого тела и снижению частоты наступления стельности. Theriogenology 2001; 56:307–314.

Jaiswal R, Singh J, Adams G. Закономерности развития мелких антральных фолликулов в яичнике крупного рогатого скота. Biol Reprod 2004; 71:1244–1251.

Richards J, Midgley A. Действие белковых гормонов: ключ к пониманию развития фолликулярных и лютеиновых клеток яичника. Endocrinology 1976;98:929–934.

Wandji S, Fortier M, Sirard M. Различия в реакции тканей яичника на гонадотропины и простагландин E2 в ходе пренатального и постнатального развития крупного рогатого скота. Biol Reprod 1992; 46:1034–1041.

Itoh T, Kacchi M, Abe H, Sendai Y, Hoshi H. Рост, формирование полости и выработка эстрадиола преантральными фолликулами крупного рогатого скота при культивировании в бессывороточной среде. Biol Reprod 2002; 67:1099–1105.

Fricke P, Al-Hassan M, Roberts A, Reynolds L, Redmer D, Ford J. Влияние обработки гонадотропинами на размер, количество и пролиферацию клеток антральных фолликулов у коров. Domest Anim Endocrinol 1997;14:171–180.

Tanaka Y, Nakada K, Moriyoshi M, Sawamukai Y. Появление и количество фолликулов, а также изменение концентрации FSH в сыворотке крови у плодов крупного рогатого скота женского пола. Reproduction 2001; 121:777–782.

Singh J, Dominguez M, Jaiswal R, Adams G. Простой ультразвуковой тест для прогнозирования ответа на суперовуляцию у крупного рогатого скота. Theriogenology 2004;62:227–243.

Xu Z, Garverick H, Smith G, Smith M, Hamilton S, Youngquist R. Экспрессия матричных рибонуклеиновых кислот рецепторов фолликулостимулирующего и лютеинизирующего гормонов в фолликулах крупного рогатого скота в течение первой фолликулярной волны. Biol Reprod 1995;53:951.

Peng X, Hsueh A, Lapolt P, Bjersing L, Ny T. Локализация экспрессии матричной рибонуклеиновой кислоты рецептора лютеинизирующего гормона в различных типах клеток яичника в ходе развития фолликулов и овуляции. Endocrinology 1991;129:3200–3207.

Lawrence T, Beers W, Gilula N. Передача гормонального стимула посредством межклеточной коммуникации. Nature 1978;272: 501–506.

Marsh J. Стимулирующее действие лютеинизирующего гормона на аденилатциклазу в жёлтом теле крупного рогатого скота. J Biol Chem 1970;245: 1596–1603.

Cooke B. Передача сигнала через циклический AMP-зависимые и циклический AMP-независимые механизмы регуляции стероидогенеза. Mol Cell Endocrinol 1999;151:25–35.

Kosugi S, Van Dop C, Geffner M, Rabl W, Carel J, Chaussain J. Характеристика гетерогенной мутации, вызывающей конститутивную активацию рецептора лютеинизирующего гормона при семейном преждевременном половом созревании мальчиков. Hum Mol Genet 1995;4:183–188.

Russell D, Robker R. Молекулярные механизмы овуляции: координация через кумулюсный комплекс. Hum Reprod Update 2007;13:289–312.

Park J, Su Y, Ariga M, Law E, Jin S, Conti M. EGF-подобные факторы роста как посредники действия LH в овулирующем фолликуле. Science 2004;303:682–684.

Murdoch W, Gottsch M. Протеолитические механизмы превращения овулирующего фолликула в жёлтое тело. Connect Tissue Res 2003;44:50–57.

Richards J, Russell D, Robker R, Dajee M, Alliston T. Молекулярные механизмы овуляции и лютеинизации. Mol Cell Endocrinol 1998;145:47–54.

Zolti M, Meirom R, Shemesh M и др. . Клетки гранулёзы как источник и мишень фактора некроза опухоли альфа. FEBS Lett 1990;261:253–255.

Klipper E, Tatz E, Kisliouk T и др. . Индукция гепараназы в клетках гранулёзы крупного рогатого скота под действием лютеинизирующего гормона: возможная роль в процессе овуляции. Endocrinology 2009;150:413–421.

Clements J, Mukhtar A, Holland A, Ehrlich A, Fuller P. Экспрессия генов семейства калликреинов в яичнике крысы: локализация в клетках гранулёзы. Endocrinology 1995;136:1137–1144.

Tribulo P. Влияние OIF семенной плазмы на функцию яичников у крупного рогатого скота . Магистерская диссертация, Университет Саскачевана, Саскатун, 2012, с. 76.

Hyttel P, Xu K, Smith S, Greve T. Ультраструктура созревания ооцитов крупного рогатого скота in vitro. J Reprod Fertil 1986;78:615–625.

Tornell J, Billig H, Hillensjo T. Возобновление мейоза в ооцитах крыс сопровождается снижением уровня циклического гуанозин-3′,5′-

Adams G, Nasser L, Bo G, Mapletoft R, Garcia A, Del Campo M. Ответ фолликулов яичников на суперстимуляцию при волне 1 по сравнению с волной 2 у тёлок. Theriogenology 1994;42:1103–1113.

Evans A, Adams G, Rawlings N. Развитие фолликулов и гормональные изменения у тёлок до наступления половой зрелости в возрасте от 2 до 36 недель. J Reprod Fertil 1994;102:463–470.

Evans A, Adams G, Rawlings N. Эндокринные изменения и изменения фолликулов яичников, предшествующие первой овуляции у тёлок до наступления половой зрелости. J Reprod Fertil 1994;100:187–194.

Ginther O, Kot K, Kulick L, Martin S, Wiltbank M. Связь между ФСГ и волнами роста фолликулов яичников в течение последних шести месяцев беременности у крупного рогатого скота. J Reprod Fertil 1996;108:271–279.

Crowe M. Возобновление циклической активности яичников после отёла у коров мясных и молочных пород. Reprod Domest Anim 2008;43(доп. 5):20–28.

Santos J, Rutigliano H, Sá Filho M. Факторы риска, влияющие на возобновление эстральных циклов после отёла и выживаемость эмбрионов у лактирующих молочных коров. Anim Reprod Sci 2009;10:207–221.

Walsh S, Williams E, Evans A. Обзор причин низкой фертильности у высокопродуктивных молочных коров. Anim Reprod Sci 2011;123:127–138.

Rajamahendran R, Taylor C. Характеристика активности яичников у молочных коров после отёла с помощью ультразвукового исследования и анализа динамики концентрации прогестерона. Anim Reprod Sci 1990;22:171–180.

Tanaka T, Arai M, Ohtani S и др. . Влияние числа отёлов на динамику фолликулов и возобновление овариального цикла у молочных коров после отёла. Anim Reprod Sci 2008;108:134–143.

Savio J, Boland M, Hynes N, Roche J. Возобновление фолликулярной активности у молочных коров в ранний послеродовой период. J Reprod Fertil 1990;88:569–579.

Savio J, Boland M, Roche J. Развитие доминантных фолликулов и продолжительность овариальных циклов у молочных коров после отёла. J Reprod Fertil 1990;88:581–591.

Murphy M, Boland M, Roche J. Характер роста фолликулов и возобновление функции яичников у подсосных коров мясных пород после отёла. J Reprod Fertil 1990;90:523–533.

Rhodes F, McDougall S, Burke C, Verkerk G, Macmillan K. Обзор по приглашению: лечение коров с затяжным послеродовым анэструсом. J Dairy Sci 2003;86:1876–1894.

Erickson B, Reynolds R, Murphree R. Характеристики яичников и воспроизводительная способность коров старшего возраста. Biol Reprod 1976;15:555–560.

Klein J, Sauer M. Оценка фертильности женщин старшего репродуктивного возраста. Am J Obstet Gynecol 2001;185:758–770.

Stensen M, Tanbo T, Storeng R, Byholm T, Fedorcsak P. Стандартные системы морфологической оценки при лечении с применением вспомогательных репродуктивных технологий не отражают возрастного снижения качества ооцитов и эмбрионов. Reprod Biomed Online 2010;21:118–125.

Malhi P, Adams G, Singh J. Крупный рогатый скот как модель для изучения репродуктивного старения у женщин: характеристики фолликулов, жёлтого тела и эндокринной системы. Biol Reprod 2005;73:45–53.

Malhi P, Adams G, Pierson R, Singh J. Крупный рогатый скот как модель репродуктивного старения: ответ на синхронизацию овариальных циклов и суперовуляцию. Theriogenology 2006;66:1257–1266.

Malhi P, Adams G, Mapletoft R, Singh J. Способность ооцитов к развитию на модели репродуктивного старения у крупного рогатого скота. Reproduction 2007;134:233–239.

Seguin B. Управление репродуктивным циклом у молочного крупного рогатого скота. В кн.: Материалы ежегодного собрания Общества териогенологии , 1987, с. 300–308.

Kastelic J, Ginther O. Факторы, влияющие на происхождение овулирующего фолликула у тёлок при индуцированном лютеолизе. Anim Reprod Sci 1991;26:13–24.

Savio J, Boland M, Hynes N, Mattiacci M, Roche J. Овулирует ли первый доминантный фолликул эстрального цикла у тёлок после лютеолиза на 7-й день? Theriogenology 1990;33:677–687.

Evans A, Mossa F, Fair T и др. . Причины и последствия вариации числа фолликулов яичников у крупного рогатого скота. Soc Reprod Fertil Suppl 2010;67:421–429.

Fortune J. Рост и развитие фолликулов яичников у млекопитающих. Biol Reprod 1994;50:225–232.