Воспроизводство крупного рогатого скота

Тем не менее, многочисленные полевые испытания показывают, что максимальная оплодотворяемость не может быть достигнута при использовании правила "утро-вечер". Снижение частоты выявления охоты может повлиять на успех, когда ИО основано преимущественно на правиле "утро-вечер". Самые высокие показатели зачатия у молочных коров наблюдались при ИО через 4–12 часов после начала эструса.²⁹

Заключение

Правильная техника осеменения требует технических и управленческих навыков. Уровень успеха варьируется от отличного до разочаровывающе низкого. Технические навыки включают в себя концентрацию, внимание к деталям, четкое понимание репродуктивной анатомии и умение определять место введения спермы и правильное положение катетера при осеменении. Навыки управления включают правильное хранение спермы и обращение с сосудом для спермы. Благодаря скрупулезным усилиям и вниманию к деталям программа искусственного осеменения может быть успешной при в исполнении фермерских инсеминаторов. Тем не менее, успешные программы ИО зависят не только от правильных навыков и управления, но и от значительных знаний о рисках и различных подводных камнях.

Периодическая оценка параметров ИО, таких как количество доз на плодотворное осеменение и оплодотворяемость, должна проводиться по мере необходимости с корректировками, которые могут включать обращение за профессиональной помощью. Инсминаторы стада должны периодически посещать курсы переподготовки, чтобы пересмотреть свои методы и быть в курсе новых разработок и рекомендаций, касающихся техники ИО.

Ссылки

1. Foote R. История искусственного осеменения: избранные заметки и выдающиеся деятели. J Anim Sci 2002;80(доп. вып. E):E22–E32.

2. Watson P. Последние достижения и представления в области криоконсервации сперматозоидов и оценки их функций после оттаивания. Reprod Fertil Dev 1995;7:871–891.

3. Saacke R, Lineweaver J, Aalseth E. Правила обращения с замороженной спермой. В сб.: Материалы 12-й конференции NAAB по искусственному осеменению мясного крупного рогатого скота , 1997, p. 49.

4. Hammerstedt R, Graham J, Nolan J. Криоконсервация сперматозоидов млекопитающих: что им приходится выдерживать. J Androl 1990;11: 73–88.

5. Ballester J, Johannisson A, Saravia F и соавт. Жизнеспособность после оттаивания доз спермы быков для искусственного осеменения с низким числом сперматозоидов. Theriogenology 2007;68:934–943.

6. Pickett B, Berndtson W. Сохранение сперматозоидов быков путём замораживания в соломинках: обзор. J Dairy Sci 1974;57:1287–1301.

7. Almquist J, Rosenberg J, Branas R. Влияние продолжительности оттаивания в тёплой воде на оплодотворяющую способность сперматозоидов быков, хранящихся в пластиковых соломинках. J Dairy Sci 1979;62:772–775.

8. Barth A, Bowman P. Определение наилучшего практического метода оттаивания спермы быков. Can Vet J 1988;29:366–369.

9. Kaproth M, Rycroft H, Gilbert G и соавт. Влияние метода оттаивания спермы на долю успешных осеменений в четырёх крупных коммерческих стадах молочных тёлок. Theriogenology 2005;63:2535–2549.

1. DeJarnette J, Marshall C. Влияние метода оттаивания соломинок на подвижность сперматозоидов и долю успешных осеменений молочных коров зависит от быка-производителя и разбавителя. J Dairy Sci 2005;88:3868–3875.

2. Kaproth M, Parks J, Grambo G, Rycroft H, Hertl J, Gröhn Y. Влияние подготовки и заполнения нескольких инструментов для осеменения на долю успешных осеменений в двух крупных коммерческих молочных стадах. Theriogenology 2002;57:909–921.

3. Dalton J, Ahmadzadeh A, Shafii B, Price W, DeJarnette J. Влияние одновременного оттаивания нескольких соломинок со спермой 0.5-mL и очерёдности осеменения на долю успешных осеменений молочного крупного рогатого скота. J Dairy Sci 2004;87:972–975.

4. Oliveira L, Arruda R, de Andrade A и соавт. Влияние очерёдности осеменения после одновременного оттаивания нескольких соломинок со спермой на долю успешных осеменений при искусственном осеменении в заданное время у лактирующих коров породы нелоре, телившихся неоднократно. Theriogenology 2012;78:1800–1813.

5. Karagiannidis A. Распределение кальция в сперматозоидах и семенной плазме быков в связи с холодовым шоком. J Reprod Fertil 1976;46:83–90.

6. Saacke R. Подходы к фасовке и использованию спермы. В сб.: Материалы 8-й конференции NAAB по искусственному осеменению мясного крупного рогатого скота , 1994, p. 15.

7. Marshall C, Graves W, Meador J, Swain J, Anderson J. Сравнение оплодотворяемости при введении спермы в тело матки и в оба рога матки у молочного крупного рогатого скота. J Dairy Sci 1989;72(доп. вып. 1):455 (аннотация).

8. Graves W, Dowlen H, Kiess G, Riley T. Оценка методов осеменения с введением спермы в тело матки или в оба рога матки. J Dairy Sci 1991;74:3454–3456.

9. Senger P, Becker W, Davidge S, Hillers J, Reeves J. Влияние осеменения в рог матки на частоту зачатия у молочного крупного рогатого скота. J Anim Sci 1988;66:3010–3016.

10. Andersson M, Taponen J, Koskinen E, Dahlbom M. Влияние осеменения дозами по 2 или 15 миллионов сперматозоидов после замораживания и оттаивания

и места введения спермы на частоту наступления стельности у молочных коров. Theriogenology 2004;61:1583–1588.

1. Verberckmoes S, Van Soom A, Dewulf J, Thys M, de Kruif A. Осеменение крупного рогатого скота малыми дозами спермы с использованием устройства Ghent. Theriogenology 2005;64:1716–1728.

2. López-Gatius F, Hunter R. Интрафолликулярное осеменение для лечения бесплодия у молочных коров. Theriogenology 2011;75: 1695–1698.

3. López-Gatius F, Yániz J, Santolaria P и др. Репродуктивные показатели лактирующих молочных коров, которым вводили клопростенол во время осеменения. Theriogenology 2004;62:677–689.

4. Cooper M, Newman S, Schermerhorn E, Foote R. Сокращения матки и оплодотворяемость после массажа клитора у молочного крупного рогатого скота в период течки. J Dairy Sci 1985;68:703–708.

5. Dransfield M, Nebel R, Pearson R, Warnick L. Выбор времени осеменения молочных коров, у которых течку выявляли с помощью радиотелеметрической системы. J Dairy Sci 1998;81;1874–1882.

6. Walker W, Nebel R, McGilliard M. Время овуляции относительно проявления садочной активности у молочного крупного рогатого скота. J Dairy Sci 1996;79: 1555–1561.

7. Brackett B, Oh Y, Evans J, Donawick W. Оплодотворение и раннее развитие яйцеклеток коровы. Biol Reprod 1980;23:189–205.

8. Senger P. Проблема выявления течки: новые концепции, технологии и возможности. J Dairy Sci 1994;77:2745–2753.

9. Foote RH. Время искусственного осеменения и оплодотворяемость молочного крупного рогатого скота. J Dairy Sci 1979;62:355–358.

10. Trimberger G. Эффективность воспроизводства молочного крупного рогатого скота при искусственном осеменении через различные промежутки времени до и после овуляции . Исследовательский бюллетень Сельскохозяйственной опытной станции Небраски, том 153. Сельскохозяйственный колледж Университета Небраски: 1948.

Фармакологическое регулирование эстральных циклов

Ram Kasimanickam

Департамент ветеринарных клинических наук, Колледж ветеринарной медицины, Университет штата Вашингтон, Пуллман, Вашингтон, США

Вступление

Репродуктивная компетентность является основным аспектом, влияющим на производственный и экономический успех молочного и мясного скотоводства. Для стад, в которых используется искусственное осеменение (ИО), обнаружение эструса (скорость выявления - насколько быстро после отела выявлена охота ) и скорость отела являются двумя основными детерминантами межотельного интервала. Экономические последствия низкой эффективности и низкой точности выявления эструса являются основными причинами, по которым ведутся исследовательские программы по воспроизводству крупного рогатого скота, направленные на разработку практических протоколов воспроизводства. Важными требованиями для любого эффективного протокола эстральной синхронизации являются предсказуемые и высокие ответные реакции на него эструса и овуляции в течение определенного интервала времени, после чего следует более высокая оплодотворяемость при однократном осеменении, проводимом в предопределенное время.¹ Для достижения лучшего контроля эстрального цикла у коров необходимо синхронизировать появление новых фолликулярных волн, обеспечить лютеиновую фазу, завершить лютеиновую фазу и синхронизировать овуляцию.

Фолликулярная динамика яичников

Рост овариальных фолликулов у крупного рогатого скота происходит по отчетливым волнообразным схемам во время эстрального цикла, во время беременности и при определенных анэстральных состояниях.² У каждой фолликулярной волны продолжительность жизни составляет 7– 10 дней (в диапазоне 6–12 дней, в зависимости от наличия двух или трех волн за цикл и продолжительности цикла 18 или 24 дней) по мере того, как фолликул проходит через различные стадии развития, а именно появление, отбор или атрезию, а также доминирование и атрезию или доминирование и овуляцию. Появление новой фолликулярной волны подтверждается кратковременным (1–2 дня) увеличением фолликулостимулирующего гормона (ФСГ), совпадающим с ее появлением. Пиковые концентрации ФСГ возникают непосредственно перед появлением волны, а затем снижаются в течение нескольких дней; одновременно, фолликулы растут и достигают приблизительно 8,0 мм в диаметре.^3,4

В основном эти фолликулы растут с постоянной и сходной скоростью, а затем эта группа растущих фолликулов делится на один доминантный и несколько подчиненных фолликулов. Как правило, отклонение начинается, когда диаметр самых больших фолликулов достигает 8,0 мм.^3,4 По времени этот процесс различается у коров и составляет приблизительно 8 часов.⁵ После того как установлено функциональное доминирование, выбранный доминантный фолликул продолжает расти, в то время как остальные фолликулы, появившиеся в составе той же фолликулярной волны, прекращают рост и становятся атретичными. Отбор доминантного фолликула происходит во время снижения концентрации ФСГ; тем не менее, доминантный фолликул продолжает расти (несмотря на ФСГ в концентрациях надира - нижний предел ) до тех пор, пока он не овулирует или не претерпевает атрезию.⁶ На последних стадиях отбора доминантного фолликула, по-видимому, происходит переход его зависимости от ФСГ к лютеинизирующему гормону (ЛГ).⁶ Выбранный доминантный фолликул особым образом экспрессирует мРНК для рецепторов ЛГ в клетках гранулезы, которые, вероятно, являются ключом к продолжению его роста под воздействием ЛГ.^6,7 Эстроген-активные доминантные фолликулы в значительной степени зависят от ЛГ; положительная обратная связь эстрогена высвобождает большое количество гонадотропин-рилизинггормона (ГнРГ), что приводит к увеличению ЛГ и овуляции доминирующего фолликула.^6,7 И наоборот, если доминантный фолликул не может овулировать, это приводит к тому, что его рост продолжается в зависимости от увеличения частоты пульсации ЛГ, которая, в случае пролонгации, может привести к персистенции доминантного фолликула.⁸ Следовательно, гормональные препараты, которые модифицируют секрецию как ФСГ, так и ЛГ явно влияют на судьбу фолликулярной волны. Манипуляции с фолликулярной волной, в свою очередь, могут изменять системные гормональные концентрации, внутрифолликулярную среду и ооцит. Таким образом, доминантный фолликул, способный к овуляции, присутствует только в определенные моменты времени во время каждой волны. Следовательно, интервал от экзогенно индуцированного лютеолиза и/или прекращения лечения прогестагеном до эструса и овуляции зависит от стадии фолликулярной волны при лютеолизе и/или при отмене прогестагена (в зависимости от того, что происходит в последнюю очередь, если это не происходит одновременно); коровы с отобранным доминантным фолликулом придут в охоту в течение 2–3 дней, в то время как у тех, у которых рост фолликулов находится на стадии предварительного отбора, охота наступит через 3–7 дней.^9–12