Воспроизводство крупного рогатого скота

Добавление лошадиного хорионического гонадотропина

Лошадиный хорионический гонадотропин (eCG) добавляется в протоколы синхронизации как средство ускорения развития фолликулов. Использование eCG в протоколах воспроизводства улучшает репродуктивную эффективность у сезонно телящихся, анестральных коров. Добавление 4000 МЕ eCG при удалении прогестеронового устройства способствовало получению 74% стельностей на 49-й день случного сезона.⁶⁵ Включение eCG через 6 или 7 дней протокола GPG/P4 увеличило оплодотворяемость на 28-день после осеменения (с 52,3% до 58,6%) и сократило средний день до зачатия у анэстральных молочных коров.⁶⁶ У южноамериканских лактирующих мясных коров на пастбищном содержании и молочных лактирующих анэстральных коров, добавление eCG увеличило оплодотворяемость на 10–15% после ИО в фиксированное время по сравнению с тем же протоколом без eCG.^67–69

Заключение

В настоящее время существуют протоколы синхронизации эструса и овуляции для успешного достижения приемлемой фертильности после осеменения в естественную охоту или в фиксированное время без выявления охоты. Кроме того, успех достигается у самок, у которых могут отсутствовать циклы на момент начала лечения. Инициирование фертильной овуляции у перибубертальных телок и ациклических коров, вероятно, является основным способом, с помощью которого производители могут улучшить фертильность при синхронизации охоты и в протоколах ИО по времени. Использование основанной на IVPD синхронизации перед осеменением коров и телок повышает фертильность более эффективно, чем другие гормональные синхронизирующие вмешательства. Разработка протоколов синхронизации, которые уменьшают влияние факторов, связанных с снижением синхронности течки и/или овуляции, предоставят производителям крупного рогатого скота эффективные и действенные инструменты для улучшения генетики. Поскольку местоположение, разница в пастбищах, рацион, порода, упитанность, сервис-период, климат и географическое положение могут влиять на успех протоколов синхронизации, следует учитывать эти переменные факторы, чтобы повысить успешность синхронизации.

1. Ginther O, Bergfelt D, Kulick L, Kot K. Пульсирующий характер изменений системных концентраций FSH и LH в период развития фолликулярной волны у крупного рогатого скота. Theriogenology 1998;50:507–519.

2. Ginther O, Bergfelt D, Beg M, Kot K. Отбор фолликула у крупного рогатого скота: роль лютеинизирующего гормона. Biol Reprod 2001;64:197–205.

3. Savio J, Thatcher W, Morris G, Entwhistle K, Drost M, Mattiacci M. Влияние создания низких концентраций прогестерона в плазме с помощью интравагинального устройства, высвобождающего прогестерон, на смену фолликулов и оплодотворяемость крупного рогатого скота. J Reprod Fertil 1993;98:77–84.

4. Bo G, Adams G, Pierson R, Mapletoft R. Экзогенное управление началом фолликулярной волны у крупного рогатого скота. Theriogenology 1995;43:31–40.

5. Austin J, Mihm M, Ryan M, Williams D, Roche J. Влияние продолжительности доминирования овуляторного фолликула на начало охоты и плодовитость тёлок. J Anim Sci 1999;77:2219–2226.

6. Kastelic J, Knopf L, Ginther O. Влияние дня введения простагландина на отбор и развитие овуляторного фолликула у тёлок. Anim Reprod Sci 1990;23:169–180.

7. Kastelic J, Ginther O. Факторы, влияющие на происхождение овуляторного фолликула у тёлок с индуцированным лютеолизом. Anim Reprod Sci 1991;26:13–24.

8. Roche J, Mihm M, Diskin M, Ireland J. Обзор регуляции роста фолликулов у крупного рогатого скота. J Anim Sci 1998;76:16–23.

9. Twagiramungu H, Guilbault L, Dufour J. Синхронизация волн роста фолликулов яичника с помощью агониста гонадотропин-рилизинг-гормона для повышения точности определения времени охоты у крупного рогатого скота: обзор. J Anim Sci 1995;73:3141–3151.

10. Ryan M, Mihm M, Roche J. Влияние введения GnRH до или после установления доминирования фолликула на гонадотропный ответ и судьбу соответствующей фолликулярной волны у молочных коров после отёла. J Reprod Fertil Abstr Ser 1998;21:61.

11. Bo G, Adams G, Caccia M, Martinez M, Pierson R, Mapletoft R. Начало фолликулярной волны в яичниках после обработки прогестагеном и эстрадиолом у крупного рогатого скота. Anim Reprod Sci 1995;39:193–204.

12. Martinez M, Adams G, Bergfelt D, Kastelic J, Mapletoft R. Влияние LH или GnRH на доминантный фолликул первой фолликулярной волны у тёлок. Anim Reprod Sci 1999;57:23–33.

13. Vasconcelos J, Silcox R, Rosa G, Pursley J, Wiltbank M. Доля животных с синхронизированной овуляцией, размер овуляторного фолликула и частота наступления стельности при начале синхронизации овуляции в разные дни полового цикла у лактирующих молочных коров. Theriogenology 1999;52:1067–1078.

14. Moreira F, Orlandi C, Risco CA, Mattos R, Lopes F, Thatcher W. Влияние предварительной синхронизации и бычьего соматотропина на частоту наступления стельности при искусственном осеменении в фиксированные сроки у лактирующих молочных коров. J Dairy Sci 2001;84:1646–1659.

15. Wiltbank J, Sturges J, Wideman D, LeFever D, Faulkner L. Управление охотой и овуляцией с помощью подкожных имплантатов и эстрогенов у мясного крупного рогатого скота. J Anim Sci 1971;33:600–606.

Ссылки

1. Diskin M, Austin E, Roche J. Экзогенная гормональная регуляция активности яичников у крупного рогатого скота. Domest Anim Endocrinol 2002;23:211–228.

2. Ginther O. Отбор доминантного фолликула у крупного рогатого скота и лошадей. Anim Reprod Sci 2000;60/61:61–79.

3. Adams G, Matteri R, Ginther O. Влияние прогестерона на фолликулы яичника, начало фолликулярных волн и концентрацию циркулирующего фолликулостимулирующего гормона у тёлок. J Reprod Fertil 1992;95: 627–640.

4. Ginther O, Kot K, Kulick L, Wiltbank M. Появление и расхождение фолликулов в ходе развития фолликулярных волн у крупного рогатого скота. Theriogenology 1997;48:75–87.

5. Ginther O, Bergfelt D, Kulick L, Kot K. Отбор доминантного фолликула у крупного рогатого скота: начало расхождения фолликулов менее чем за 8 часов вследствие снижения концентрации FSH. Theriogenology 1999;52:1079–1093.

6. Bó G, Adams G, Pierson R, Tribulo H, Caccia M, Mapletoft R. Динамика фолликулярных волн после введения эстрадиола--17β тёлкам с прогестагеновым имплантатом и без него. Theriogenology 1994;41:1555–1569.

7. Martínez M, Kastelic J, Bó G, Caccia M, Mapletoft R. Влияние эстрадиола и некоторых его эфиров на высвобождение гонадотропинов и динамику фолликулов яичника у мясного крупного рогатого скота, получавшего CIDR. Anim Reprod Sci 2005;86:37–52.

8. Martínez M, Kastelic J, Mapletoft R. Влияние эстрадиола на высвобождение гонадотропинов, охоту и овуляцию у мясного крупного рогатого скота, получавшего CIDR. Domest Anim Endocrinol 2007;33:77–90.

9. Bó G, Baruselli P, Moreno D и др. Управление развитием фолликулярных волн в программах переноса эмбрионов с самостоятельно назначаемыми сроками у крупного рогатого скота. Theriogenology 2002;57:53–72.

10. Caccia M, Bó G. Начало фолликулярной волны после введения бензоата эстрадиола и прогестерона мясным тёлкам с имплантированным CIDR-B. Theriogenology 1998;49:341 (аннотация).

11. Colazo M, Martínez M, Small J и др. Влияние валерата эстрадиола на динамику фолликулов яичника и ответ на суперовуляцию у крупного рогатого скота, получавшего прогестин. Theriogenology 2005;63:1454–1468.

1. Milvae R. Роль простагландинов жёлтого тела в регуляции функций жёлтого тела у крупного рогатого скота. J Anim Sci 1986;62(доп. вып. 2):72–78.

2. Niswender G, Davis T, Griffith R и др. Судья, присяжные и палач: саморегуляция функции жёлтого тела. Soc Reprod Fertil Suppl 2007;64:191–206.

3. Hansel W, Alila H, Dowd J, Milvae R. Различия в происхождении и механизмах регуляции малых и больших лютеиновых клеток крупного рогатого скота. J Reprod Fertil Suppl 1991;43:77–89.

4. Hansel W, Alila H, Dowd J, Yang X. Регуляция стероидогенеза в малых и больших лютеиновых клетках крупного рогатого скота. Aust J Biol Sci 1987;40:331–347.

5. McCracken JA, Baird DT, Carlson JC, Goding JR, Barcikowski B. Роль простагландинов в регрессии жёлтого тела. J Reprod Fertil Suppl 1973;18:133–142.

6. Lauderdale J, Seguin B, Stellflug J и др. Фертильность крупного рогатого скота после инъекции PGF2a. J Anim Sci 1974;38:964–967.

7. Odde K. Обзор методов синхронизации половой охоты у коров после отёла. J Anim Sci 1990;68:817–830.

8. Wiltbank M, Shiao T, Bergfelt D, Ginther O. Рецепторы простагландина F2α в жёлтом теле крупного рогатого скота на ранней стадии его развития. Biol Reprod 1995;52:74–78.

9. Wiltbank M. Как сведения о гормональной регуляции функции яичников помогли лучше понять программы осеменения в заданные сроки. В кн.: Материалы Общества териогенологии , 1997, с. 83–97.

10. Nasser L, Adams G, Bó G, Mapletoft R. Реакция яичников на суперовуляторную стимуляцию в зависимости от начала фолликулярной волны у тёлок. Theriogenology 1993;40:713–724.

11. Adams G, Nasser L, Bó G, Garcia A, Del Campo M, Mapletoft R. Суперовуляторный ответ фолликулов яичников волны 1 по сравнению с волной 2 у тёлок. Theriogenology 1994;42:1103–1113.

12. Macmillan K, Peterson A. Новое внутривлагалищное устройство для высвобождения прогестерона у крупного рогатого скота (CIDR-B) для синхронизации половой охоты, повышения частоты наступления стельности и лечения анэструса. Anim Reprod Sci 1993;33:1–25.

13. Mihm M, Baguisi A, Boland M, Roche J. Связь между продолжительностью доминирования овуляторного фолликула и частотой наступления стельности у тёлок мясных пород. J Reprod Fertil 1994;102:123–130.

14. Austin E, Mihm M, Ryan M, Williams D, Roche J. Влияние продолжительности доминирования овуляторного фолликула на начало половой охоты и фертильность тёлок. J Anim Sci 1999;77:2219–2226.

15. Rhodes F, McDougall S, Burke C, Verkerk G, Macmillan K. Обзор по приглашению редакции: лечение коров с длительным послеродовым анэструсом. J Dairy Sci 2003;86:1876–1894.

16. Yavas Y, Walton J. Отсутствие половых циклов после отёла у подсосных коров мясных пород: обзор. Theriogenology 2000;54:25–55.

17. Gümen A, Guenther J, Wiltbank M. Размер фолликулов и ответ на протокол Ovsynch в сравнении с выявлением половой охоты у лактирующих молочных коров с овуляцией и без неё. J Dairy Sci 2003;86:3184–3194.

18. Nation D, Morton J, Cavalieri J, Macmillan K. Факторы, связанные с частотой встречаемости «коров-призраков» в молочных стадах Австралии. Proc NZ Soc Anim Prod 2001;61:180–183.

19. Garverick H. Фолликулярные кисты яичников у молочных коров. J Dairy Sci 1997;80:995–1004.

20. Peter A. Новые сведения о кистозной дегенерации яичников у крупного рогатого скота. Reprod Domest Anim 2004;39:1–7.

21. Ambrose D, Schmitt E, Lopes F, Mattos R, Thatcher W. Реакции яичников и эндокринной системы при лечении фолликулярных кист яичников у молочных коров гонадотропин-рилизинг-гормоном и простагландином F2альфа с применением или без применения экзогенного прогестерона. Can Vet J 2004;45:931–937.

22. Gümen A, Wiltbank M. Изменение действия эстрадиола на гипоталамус вследствие отсутствия воздействия прогестерона может вызывать образование фолликулярных кист у крупного рогатого скота. Biol Reprod 2002;66:1689–1695.

23. Colazo M, Martinez M, Kastelic J, Mapletoft R, Carruthers T. Седалищно-прямокишечная ямка как альтернативный путь введения простагландина крупному рогатому скоту. Can Vet J 2002;43:535–541.

24. Brown L, Odde K, King M, LeFever D, Neubauer C. Сравнение схемы с применением меленгестрола ацетата и простагландина F2α с Syncro-Mate B для синхронизации половой охоты у тёлок мясных пород. Theriogenology 1988;30:1–12.

25. Deutscher G. Увеличение интервала с семнадцати до девятнадцати дней в программе синхронизации половой охоты у тёлок с применением меленгестрола ацетата и простагландина. Prof Anim Sci 2000;16:164–168.

26. Lamb G, Nix D, Stevenson J, Corah L. Увеличение интервала между применением MGA и простагландина F2α с 17 до 19 дней в схеме синхронизации половой охоты у тёлок. Theriogenology 2000;53:691–698.

27. Zimbelman R, Smith L. Регуляция овуляции у крупного рогатого скота с помощью меленгестрола ацетата. I. Влияние дозы и пути введения. J Reprod Fertil 1966;11:185–191.

28. Kojima F, Bader J, Stegner J и др. Замена меленгестрола ацетата (MGA) внутривлагалищными устройствами EAZI-BREED CIDR (CIDR) в протоколе MGA Select для тёлок мясных пород. J Anim Sci 2004;82(прил. 1):225 (аннотация).

29. Mallory D, Wilson D, Busch D, Ellersieck M, Smith M, Patterson D. Сравнение длительных протоколов синхронизации половой охоты на основе прогестинов у тёлок мясных пород. J Anim Sci 2010;88:3568–3578.

30. Leitman N, Busch D, Mallory D и др.Сравнение длительных протоколов синхронизации эструса с применением CIDR у тёлок мясных пород. Anim Reprod Sci 2009;114:345–355.

31. Patterson D, Corah L, Brethour J. Реакция допубертатных тёлок Bos taurus и Bos indicu s × Bos taurus на меленгестрола ацетат с применением или без применения гонадотропин-рилизинг-гормона. Theriogenology 1990;33:661–668.

32. Galvão K, Sá Filho M, Santos J. Сокращение интервала между предварительной синхронизацией и началом искусственного осеменения в фиксированное время повышает фертильность молочных коров. J Dairy Sci 2007;90:4212–4218.

33. Navanukraw C, Redmer D, Reynolds L, Kirsch J, Grazul-Bilska A, Fricke P. Модифицированный протокол предварительной синхронизации повышает результативность искусственного осеменения в фиксированное время у лактирующих молочных коров. J Dairy Sci 2004;87:1551–1557.

34. Herlihy M, Giordano J, Souza A и соавт. Предварительная синхронизация по протоколу Double-Ovsynch повышает результативность первого после отёла искусственного осеменения у лактирующих молочных коров. J Dairy Sci 2012;95: 7003–7014.

35. Bridges G, Helser L, Grum D, Mussard M, Day M. Сокращение интервала между введением GnRH и PGF2a с 7 до 5 дней и удлинение проэструса повышают частоту стельности после искусственного осеменения в фиксированное время у коров мясных пород. Theriogenology 2008;69:843–851.

36. Kasimanickam R, Day M, Rudolph J, Hall J, Whittier W. Две дозы простагландина повышают частоту стельности после искусственного осеменения в фиксированное время при 5-дневном протоколе синхронизации на основе прогестерона у коров мясных пород. Theriogenology 2009;71:762–767.

37. Whittier W, Kasimanickam R, Currin J, Schramm H, Vlcek M. Влияние сроков второго введения простагландина F 2 альфа при 5-дневном протоколе CO-Synch на основе прогестерона на частоту стельности после искусственного осеменения у коров мясных пород. Theriogenology 2010;74:1002–1009.

38. Bridges G, Ahola J, Brauner C и соавт. Определение оптимального способа введения PGF2α при 5-дневном протоколе CO-Synch + CIDR у подсосных коров мясных пород. J Anim Sci 2012;90:4814–4822.

39. Xu Z, Burton L, Macmillan K. Лечение молочных коров с послеродовым анэструсом прогестероном, эстрадиолом и хорионическим гонадотропином лошадей. NZ Vet J 1997;45:205–207.

40. Bryan M, Bó G, Mapletoft R, Emslie F. Применение хорионического гонадотропина лошадей для лечения молочных коров с анэструсом при использовании 6- или 7-дневных протоколов с гонадотропин-рилизинг-гормоном и прогестероном. J Dairy Sci 2013;96:122–131.

41. Baruselli P, Reis E, Marques M, Nasser L, Bó G. Применение гормональных препаратов для повышения воспроизводительных показателей мясного крупного рогатого скота с анэструсом в тропическом климате. Anim Reprod Sci 2004; 82–83:479–486.

42. Cutaia L, Tribulo R, Moreno D, Bó G. Частота стельности у лактирующих коров мясных пород после применения устройств, высвобождающих прогестерон, бензоата эстрадиола и хорионического гонадотропина лошадей (eCG). Theriogenology 52003;9:216 (аннотация).

43. Veneranda G, Filippi L, Racca D, Cutaia L, Bó G. Частота стельности у молочных коров после применения интравагинальных устройств с прогестероном и GnRH либо бензоата эстрадиола и eCG. Reprod Fertil Dev 2008;20:91 (аннотация).

Диагностика стельности: ректальная пальпация

David Christiansen

Кафедра патбиологии и популярной медицины, Колледж ветеринарной медицины, Государственный университет Миссисипи, Старквилл, Миссисипи, США

Вступление

Диагностика стельности - бесценный инструмент для производителя крупного рогатого скота, который пытается сохранить максимальную рентабельность. Что касается мясного скота, значительная часть затрат на выращивание телят связана с кормлением и уходом за стельной маткой, особенно в зимние месяцы. Коровы, которые являются открытыми (не стельными), увеличат стоимость содержания стада, не предоставляя при этом доход для производителя. Точно так же в молочном производстве корова, которая не может забеременеть своевременно, в конечном итоге будет производить меньше молока, что увеличивает стоимость, но не увеличивает доход. Тест на стельность, который определил бы беременных и открытых коров до того, как они вернутся в течку, позволив тем самым осеменить их повторно в следующую охоту, помог бы минимизировать межотельный интервал и тем самым максимизировать прибыль, особенно в программе, использующей искусственное осеменение (ИО). Кроме того, идеальный тест на стельность будет минимально инвазивным, простым в выполнении, требующим небольших вложений в оборудование, расходные материалы и время, даст быстрые результаты, позволяющие производителю принимать решения, и иметь высокую чувствительность и специфичность. Наконец, во многих стадах очень полезна способность оценить стадию стельности, пол плода и наличие патологических изменений репродуктивных органов.

В настоящее время существует три надежных метода диагностики состояния стельности коровы: трансректальная пальпация, трансректальное ультразвуковое исследование и эндокринное тестирование. Хотя ни один из них не отвечает всем критериям идеального теста, у каждого есть свои преимущества и недостатки. Производитель и ветеринарный врач должны тщательно рассмотреть каждый тест и определить, какой из них наиболее полезен для данных условий. Из этих методов наиболее часто используется трансректальная пальпация, которая в большинстве случаев соответствует большинству критериев (Таблица 34.1).

Диагностика стельности путем трансректальной пальпации - это навык, которым можно легко овладеть и отточить до высокой чувствительности и специфичности с хорошим пониманием нормальной анатомии и физиологии коровы.

Хорошее понимание стельности и развития плода также позволяет опытному пальпатору точно определить стадию стельности. Подробное обсуждение нормальной анатомии, физиологии и беременности можно найти в главах 21 и 25. Имея знание и практику пальпатор может достигать очень точных результатов, достигая 100% точности уже на 30–35-й день беременности.

Трансректальное исследование репродуктивного тракта начинается с идентификации шейки матки, которая состоит из волокнистой хрящевой ткани и твердая на ощупь (ощущение шейки цыпленка) и служит ориентиром расположения репродуктивных органов. В небеременной или раннебеременной матке шейка, как правило, находится внутри или на краю тазовой полости. У многорожавших коров и с увеличением срока беременности матка растягивается (по весу матки и ее содержимого) более краниально и вентрально. Важно помнить, что шейка матки относительно подвижна, и, возможно, придется прощупать тазовый канал и область над краем таза, пока она не будет найдена. После идентификации шейка матки может быть захвачена и использована для втягивания тела и рогов матки назад, чтобы обеспечить лучший доступ и осмотр этих структур. Кроме того, пальпатор может следовать рукой за шейкой матки до тела матки и обнаруживать раздвоение рогов. В этом месте вентральная межроговая связка может использоваться для втягивания рогов и расположения их вдоль тазового дна для облегчения тщательной пальпации каждого рога. Сразу за кончиком каждого рога могут прощупываться яичники. По мере развития беременности размеры и вес плода и внутриутробных жидкостей сделают невозможным ретракцию шейки матки и матки в целом, и их необходимо будет изучить в том положении, в котором они находятся.

Окончательный диагноз на стельность основан на выявлении структур, которые могут возникнуть только в том случае, если корова действительно беременна; если ни один из них не может быть идентифицирован, корову следует считать нестельной или отложить постановку диагноза. Четыре таких структуры могут быть легко пальпированы и считаются основными признаками беременности: хориоаллантоисное (мембранное) скольжение, амниотический пузырь, плацентома и плод.