Воспроизводство крупного рогатого скота

1. Milvae R. Роль простагландинов жёлтого тела в регуляции функций жёлтого тела у крупного рогатого скота. J Anim Sci 1986;62(доп. вып. 2):72–78.

2. Niswender G, Davis T, Griffith R и др. Судья, присяжные и палач: саморегуляция функции жёлтого тела. Soc Reprod Fertil Suppl 2007;64:191–206.

3. Hansel W, Alila H, Dowd J, Milvae R. Различия в происхождении и механизмах регуляции малых и больших лютеиновых клеток крупного рогатого скота. J Reprod Fertil Suppl 1991;43:77–89.

4. Hansel W, Alila H, Dowd J, Yang X. Регуляция стероидогенеза в малых и больших лютеиновых клетках крупного рогатого скота. Aust J Biol Sci 1987;40:331–347.

5. McCracken JA, Baird DT, Carlson JC, Goding JR, Barcikowski B. Роль простагландинов в регрессии жёлтого тела. J Reprod Fertil Suppl 1973;18:133–142.

6. Lauderdale J, Seguin B, Stellflug J и др. Фертильность крупного рогатого скота после инъекции PGF2a. J Anim Sci 1974;38:964–967.

7. Odde K. Обзор методов синхронизации половой охоты у коров после отёла. J Anim Sci 1990;68:817–830.

8. Wiltbank M, Shiao T, Bergfelt D, Ginther O. Рецепторы простагландина F2α в жёлтом теле крупного рогатого скота на ранней стадии его развития. Biol Reprod 1995;52:74–78.

9. Wiltbank M. Как сведения о гормональной регуляции функции яичников помогли лучше понять программы осеменения в заданные сроки. В кн.: Материалы Общества териогенологии , 1997, с. 83–97.

10. Nasser L, Adams G, Bó G, Mapletoft R. Реакция яичников на суперовуляторную стимуляцию в зависимости от начала фолликулярной волны у тёлок. Theriogenology 1993;40:713–724.

11. Adams G, Nasser L, Bó G, Garcia A, Del Campo M, Mapletoft R. Суперовуляторный ответ фолликулов яичников волны 1 по сравнению с волной 2 у тёлок. Theriogenology 1994;42:1103–1113.

12. Macmillan K, Peterson A. Новое внутривлагалищное устройство для высвобождения прогестерона у крупного рогатого скота (CIDR-B) для синхронизации половой охоты, повышения частоты наступления стельности и лечения анэструса. Anim Reprod Sci 1993;33:1–25.

13. Mihm M, Baguisi A, Boland M, Roche J. Связь между продолжительностью доминирования овуляторного фолликула и частотой наступления стельности у тёлок мясных пород. J Reprod Fertil 1994;102:123–130.

14. Austin E, Mihm M, Ryan M, Williams D, Roche J. Влияние продолжительности доминирования овуляторного фолликула на начало половой охоты и фертильность тёлок. J Anim Sci 1999;77:2219–2226.

15. Rhodes F, McDougall S, Burke C, Verkerk G, Macmillan K. Обзор по приглашению редакции: лечение коров с длительным послеродовым анэструсом. J Dairy Sci 2003;86:1876–1894.

16. Yavas Y, Walton J. Отсутствие половых циклов после отёла у подсосных коров мясных пород: обзор. Theriogenology 2000;54:25–55.

17. Gümen A, Guenther J, Wiltbank M. Размер фолликулов и ответ на протокол Ovsynch в сравнении с выявлением половой охоты у лактирующих молочных коров с овуляцией и без неё. J Dairy Sci 2003;86:3184–3194.

18. Nation D, Morton J, Cavalieri J, Macmillan K. Факторы, связанные с частотой встречаемости «коров-призраков» в молочных стадах Австралии. Proc NZ Soc Anim Prod 2001;61:180–183.

19. Garverick H. Фолликулярные кисты яичников у молочных коров. J Dairy Sci 1997;80:995–1004.

20. Peter A. Новые сведения о кистозной дегенерации яичников у крупного рогатого скота. Reprod Domest Anim 2004;39:1–7.

21. Ambrose D, Schmitt E, Lopes F, Mattos R, Thatcher W. Реакции яичников и эндокринной системы при лечении фолликулярных кист яичников у молочных коров гонадотропин-рилизинг-гормоном и простагландином F2альфа с применением или без применения экзогенного прогестерона. Can Vet J 2004;45:931–937.

22. Gümen A, Wiltbank M. Изменение действия эстрадиола на гипоталамус вследствие отсутствия воздействия прогестерона может вызывать образование фолликулярных кист у крупного рогатого скота. Biol Reprod 2002;66:1689–1695.

23. Colazo M, Martinez M, Kastelic J, Mapletoft R, Carruthers T. Седалищно-прямокишечная ямка как альтернативный путь введения простагландина крупному рогатому скоту. Can Vet J 2002;43:535–541.

24. Brown L, Odde K, King M, LeFever D, Neubauer C. Сравнение схемы с применением меленгестрола ацетата и простагландина F2α с Syncro-Mate B для синхронизации половой охоты у тёлок мясных пород. Theriogenology 1988;30:1–12.

25. Deutscher G. Увеличение интервала с семнадцати до девятнадцати дней в программе синхронизации половой охоты у тёлок с применением меленгестрола ацетата и простагландина. Prof Anim Sci 2000;16:164–168.

26. Lamb G, Nix D, Stevenson J, Corah L. Увеличение интервала между применением MGA и простагландина F2α с 17 до 19 дней в схеме синхронизации половой охоты у тёлок. Theriogenology 2000;53:691–698.

27. Zimbelman R, Smith L. Регуляция овуляции у крупного рогатого скота с помощью меленгестрола ацетата. I. Влияние дозы и пути введения. J Reprod Fertil 1966;11:185–191.

28. Kojima F, Bader J, Stegner J и др. Замена меленгестрола ацетата (MGA) внутривлагалищными устройствами EAZI-BREED CIDR (CIDR) в протоколе MGA Select для тёлок мясных пород. J Anim Sci 2004;82(прил. 1):225 (аннотация).

29. Mallory D, Wilson D, Busch D, Ellersieck M, Smith M, Patterson D. Сравнение длительных протоколов синхронизации половой охоты на основе прогестинов у тёлок мясных пород. J Anim Sci 2010;88:3568–3578.

30. Leitman N, Busch D, Mallory D и др.Сравнение длительных протоколов синхронизации эструса с применением CIDR у тёлок мясных пород. Anim Reprod Sci 2009;114:345–355.

31. Patterson D, Corah L, Brethour J. Реакция допубертатных тёлок Bos taurus и Bos indicu s × Bos taurus на меленгестрола ацетат с применением или без применения гонадотропин-рилизинг-гормона. Theriogenology 1990;33:661–668.

32. Galvão K, Sá Filho M, Santos J. Сокращение интервала между предварительной синхронизацией и началом искусственного осеменения в фиксированное время повышает фертильность молочных коров. J Dairy Sci 2007;90:4212–4218.

33. Navanukraw C, Redmer D, Reynolds L, Kirsch J, Grazul-Bilska A, Fricke P. Модифицированный протокол предварительной синхронизации повышает результативность искусственного осеменения в фиксированное время у лактирующих молочных коров. J Dairy Sci 2004;87:1551–1557.

34. Herlihy M, Giordano J, Souza A и соавт. Предварительная синхронизация по протоколу Double-Ovsynch повышает результативность первого после отёла искусственного осеменения у лактирующих молочных коров. J Dairy Sci 2012;95: 7003–7014.

35. Bridges G, Helser L, Grum D, Mussard M, Day M. Сокращение интервала между введением GnRH и PGF2a с 7 до 5 дней и удлинение проэструса повышают частоту стельности после искусственного осеменения в фиксированное время у коров мясных пород. Theriogenology 2008;69:843–851.

36. Kasimanickam R, Day M, Rudolph J, Hall J, Whittier W. Две дозы простагландина повышают частоту стельности после искусственного осеменения в фиксированное время при 5-дневном протоколе синхронизации на основе прогестерона у коров мясных пород. Theriogenology 2009;71:762–767.

37. Whittier W, Kasimanickam R, Currin J, Schramm H, Vlcek M. Влияние сроков второго введения простагландина F 2 альфа при 5-дневном протоколе CO-Synch на основе прогестерона на частоту стельности после искусственного осеменения у коров мясных пород. Theriogenology 2010;74:1002–1009.

38. Bridges G, Ahola J, Brauner C и соавт. Определение оптимального способа введения PGF2α при 5-дневном протоколе CO-Synch + CIDR у подсосных коров мясных пород. J Anim Sci 2012;90:4814–4822.

39. Xu Z, Burton L, Macmillan K. Лечение молочных коров с послеродовым анэструсом прогестероном, эстрадиолом и хорионическим гонадотропином лошадей. NZ Vet J 1997;45:205–207.

40. Bryan M, Bó G, Mapletoft R, Emslie F. Применение хорионического гонадотропина лошадей для лечения молочных коров с анэструсом при использовании 6- или 7-дневных протоколов с гонадотропин-рилизинг-гормоном и прогестероном. J Dairy Sci 2013;96:122–131.

41. Baruselli P, Reis E, Marques M, Nasser L, Bó G. Применение гормональных препаратов для повышения воспроизводительных показателей мясного крупного рогатого скота с анэструсом в тропическом климате. Anim Reprod Sci 2004; 82–83:479–486.

42. Cutaia L, Tribulo R, Moreno D, Bó G. Частота стельности у лактирующих коров мясных пород после применения устройств, высвобождающих прогестерон, бензоата эстрадиола и хорионического гонадотропина лошадей (eCG). Theriogenology 52003;9:216 (аннотация).

43. Veneranda G, Filippi L, Racca D, Cutaia L, Bó G. Частота стельности у молочных коров после применения интравагинальных устройств с прогестероном и GnRH либо бензоата эстрадиола и eCG. Reprod Fertil Dev 2008;20:91 (аннотация).

Диагностика стельности: ректальная пальпация

David Christiansen

Кафедра патбиологии и популярной медицины, Колледж ветеринарной медицины, Государственный университет Миссисипи, Старквилл, Миссисипи, США

Вступление

Диагностика стельности - бесценный инструмент для производителя крупного рогатого скота, который пытается сохранить максимальную рентабельность. Что касается мясного скота, значительная часть затрат на выращивание телят связана с кормлением и уходом за стельной маткой, особенно в зимние месяцы. Коровы, которые являются открытыми (не стельными), увеличат стоимость содержания стада, не предоставляя при этом доход для производителя. Точно так же в молочном производстве корова, которая не может забеременеть своевременно, в конечном итоге будет производить меньше молока, что увеличивает стоимость, но не увеличивает доход. Тест на стельность, который определил бы беременных и открытых коров до того, как они вернутся в течку, позволив тем самым осеменить их повторно в следующую охоту, помог бы минимизировать межотельный интервал и тем самым максимизировать прибыль, особенно в программе, использующей искусственное осеменение (ИО). Кроме того, идеальный тест на стельность будет минимально инвазивным, простым в выполнении, требующим небольших вложений в оборудование, расходные материалы и время, даст быстрые результаты, позволяющие производителю принимать решения, и иметь высокую чувствительность и специфичность. Наконец, во многих стадах очень полезна способность оценить стадию стельности, пол плода и наличие патологических изменений репродуктивных органов.

В настоящее время существует три надежных метода диагностики состояния стельности коровы: трансректальная пальпация, трансректальное ультразвуковое исследование и эндокринное тестирование. Хотя ни один из них не отвечает всем критериям идеального теста, у каждого есть свои преимущества и недостатки. Производитель и ветеринарный врач должны тщательно рассмотреть каждый тест и определить, какой из них наиболее полезен для данных условий. Из этих методов наиболее часто используется трансректальная пальпация, которая в большинстве случаев соответствует большинству критериев (Таблица 34.1).

Диагностика стельности путем трансректальной пальпации - это навык, которым можно легко овладеть и отточить до высокой чувствительности и специфичности с хорошим пониманием нормальной анатомии и физиологии коровы.

Хорошее понимание стельности и развития плода также позволяет опытному пальпатору точно определить стадию стельности. Подробное обсуждение нормальной анатомии, физиологии и беременности можно найти в главах 21 и 25. Имея знание и практику пальпатор может достигать очень точных результатов, достигая 100% точности уже на 30–35-й день беременности.

Трансректальное исследование репродуктивного тракта начинается с идентификации шейки матки, которая состоит из волокнистой хрящевой ткани и твердая на ощупь (ощущение шейки цыпленка) и служит ориентиром расположения репродуктивных органов. В небеременной или раннебеременной матке шейка, как правило, находится внутри или на краю тазовой полости. У многорожавших коров и с увеличением срока беременности матка растягивается (по весу матки и ее содержимого) более краниально и вентрально. Важно помнить, что шейка матки относительно подвижна, и, возможно, придется прощупать тазовый канал и область над краем таза, пока она не будет найдена. После идентификации шейка матки может быть захвачена и использована для втягивания тела и рогов матки назад, чтобы обеспечить лучший доступ и осмотр этих структур. Кроме того, пальпатор может следовать рукой за шейкой матки до тела матки и обнаруживать раздвоение рогов. В этом месте вентральная межроговая связка может использоваться для втягивания рогов и расположения их вдоль тазового дна для облегчения тщательной пальпации каждого рога. Сразу за кончиком каждого рога могут прощупываться яичники. По мере развития беременности размеры и вес плода и внутриутробных жидкостей сделают невозможным ретракцию шейки матки и матки в целом, и их необходимо будет изучить в том положении, в котором они находятся.

Окончательный диагноз на стельность основан на выявлении структур, которые могут возникнуть только в том случае, если корова действительно беременна; если ни один из них не может быть идентифицирован, корову следует считать нестельной или отложить постановку диагноза. Четыре таких структуры могут быть легко пальпированы и считаются основными признаками беременности: хориоаллантоисное (мембранное) скольжение, амниотический пузырь, плацентома и плод.

Таблица 34.1 Сравнение различных методов диагностики стельности.

Кроме того, могут быть пальпированы другие изменения в репродуктивном тракте, которые считаются положительными признаками стельности. К ним относятся невозможность втянуть шейку матки, жидкость внутри матки или флюктуация, увеличение диаметра и асимметрия рога(ов) матки, а также увеличение и пульсация (ощущение жужжания) средней маточной артерии.

Основные признаки стельности

Смещение оболочки

Мембранное скольжение обычно пальпируется к 30–32 дню беременности, а иногда уже к 28 дням у телок в большом роге и к 50–60 дню беременности в обоих рогах. После идентификации шейки матки и ретракции матки каждый рог можно осторожно зажать между большим и остальными пальцами и слегка приподнять. Если есть стельность, вы можете почувствовать отчетливое ощущение потрескивания, когда мембрана выскальзывает из захваченных стенок матки. На 32-й день беременности она ощущается как нить, а к 45-му дню словно небольшая струна выскальзывает из пальцев в роге плодовместилище. К 60-му дню она ощущается в обоих рогах как несколько более крупная струна, а к 75-му дню ощущение больше похоже на то, как кусок пряжи выскальзывает из пальцев. Мембранное скольжение наиболее часто используется до 90 дня беременности.

Амниотический пузырь

Амниотический пузырь представляет собой очень рыхлый, заполненный жидкостью мешочек, окружающий и защищающий эмбрион на ранних сроках беременности. Он может пальпироваться в виде небольшого узла или шишки внутри маточного рога диаметром около 6–7 мм к 32–35 дням (5 неделям) беременности. Через 6 недель беременности он будет 1,5 см в диаметре, а через 7 недель он будет 3,5–5 см в диаметре. К 8 неделям пузырь будет иметь размер 6–7 см, он теряет упругость, что позволяет пальпировать плод примерно на 60-й день. По мере того, как это происходит, сам пузырь становится труднее идентифицировать и, как правило, его больше не используют для определения стельности.

Плод

По мере того, как плод становится ощутимым примерно через 55–60 дней, его длина составляет около 5–6 см, и можно почувствовать, как он плавает в жидкости беременного рога, осторожно обхватив рог пальцами и скользя ими вдоль него. Альтернативно, стенку матки можно слегка постукивать пальцами, создавая волну жидкости и вызывая отталкивание плода от пальцев (так называемая перекличка). По мере развития беременности могут быть более легко идентифицированы части плода, такие как голова, копыта и ноги, что позволяет новичку чувствовать себя более комфортно при диагностике. К 3-м месяцам беременности матка и плод достигают достаточных размеров и веса, чтобы заставить их опуститься за край таза в брюшную полость, а к 4–5 месяцам плод может опускаться в брюшную полость достаточно далеко, что делает пальпацию самого плода трудной или невозможной, особенно у крупных коров с глубоким телом. Обычно к 7 месяцам плод вырастает настолько большим, что становится легко доступным и может снова использоваться для определения статуса беременности.

Плацентомы

Плацентомы (иногда называемые непрофессионалами «пуговицами») состоят из материнского карункула и котиледона плода. С опытом они могут пальпироваться уже в 75–80 дней беременности в виде мягких выступов размером с горошину или шишек на внутренней стенке матки, но к 90-му дню становятся немного более твердыми и легко пальпируемыми. В это время они имеют размер с десятицентовую монету, а к 5 месяцам стельности достигнут размера полудолларовой монеты. В середине беременности, когда плод становится все труднее исследовать, плацентомы могут стать лучшим ориентиром для точной диагностики стельности. Должны быть определены по крайней мере три плацентомы, что грантирует, что яичники не будут приняты за них.

Косвенные признаки стельности

Когда стельность достигает 60 дней и более, вес плода и плодных жидкостей тянет шейку матки за край таза в брюшную полость.