Воспроизводство крупного рогатого скота

Они могут быть вызваны разбитыми кристаллами в преобразователе или поврежденными проводами, соединяющими кристаллы с источником питания в устройстве. Потеря нескольких кристаллов может быть незаметна, но потеря многих значительно ухудшит качество изображения.

Будущее

Технологии, применяемые в медицине, адаптируются к ветеринарной практике. Было описано использование трехмерного ультразвука у кобыл⁴⁷ , и он может иметь преимущества перед двумерной визуализацией для выявления аномалий и возраста плода. Ультразвук с цветным допплером широко изучался на лошадях и, в меньшей степени, на коровах.⁴⁸ В настоящее время целесообразно использовать цветное ультразвуковое допплерографическое оборудование для оценки жизнеспособности плода у крупного рогатого скота. В будущем можно будет использовать изменения кровотока в структурах яичников и матки для более точной оценки стадии эстрального цикла и прогнозирования овуляции. Некоторые полевые ультразвуковые аппараты уже оснащены возможностями цветного допплера в дополнение к стандартному ультразвуку в B-режиме.

Прочее использование

Ультразвук имеет множество применений, выходящих за рамки этой главы. Хорошо описано ультразвуковое исследование мужских репродуктивных органов.⁴⁹ С помощью ультразвука можно оценить другие системы органов для диагностики или прогнозирования заболевания^.50

Литература

1. Ginther O. Ультразвуковая визуализация и репродукция животных: основы . Кросс-Плейнс, Висконсин: Equiservices Publishing, 1995.

2. Ginther O. Ультразвуковая визуализация и репродукция животных: крупный рогатый скот . Кросс-Плейнс, Висконсин: Equiservices Publishing, 1998.

3. DesCôteaux L, Gnemmi G, Colloton J. Практический атлас ультразвукового исследования репродуктивной системы жвачных и верблюдовых . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2010.

4. Colloton J. Применение ультразвукового исследования в управлении воспроизводством молочного скота. В кн.: Risco CA, Melendez Retamal P (ред.) Ветеринарное обеспечение молочного производства . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2011, с. 99–116.

5. Stroud B. Ультразвуковое исследование репродуктивной системы крупного рогатого скота (DVD). Редвуд-Сити, Калифорния: BioTech Productions, 1996.

6. Carriere P, DesCôteaux L, Durocher J. Ультразвуковое исследование репродуктивной системы коровы (CD-ROM). Монреаль: Монреальский университет, 2005.

7. Curran S, Pierson R, Ginther O. Ультразвуковая картина зародыша коровы с 10-го по 20-й день. J Am Vet Med Assoc 1986;189:1289–1302.

8. Romano J. Ранняя диагностика стельности у молочного скота методом трансректального ультразвукового исследования. Theriogenology 2006;66:1034–1041.

9. Kahn W. Ультразвуковая фетометрия у крупного рогатого скота. Theriogenology 1989;31:1105–1121.

10. White I. Ультразвуковое сканирование в реальном времени для диагностики стельности и определения срока беременности у крупного рогатого скота. Vet Rec 1985;117:5–8.

11. Làbernia J, López-Gatius F, Santolaria P, López-Béjar M, Rutllant J. Влияние факторов содержания на потери беременности у молочного скота. Theriogenology 1996;45:1247–1253.

12. Santos J, Thatcher W, Chebel R, Cerri R, Galvão K. Влияние частоты гибели эмбрионов у крупного рогатого скота на эффективность программ синхронизации эструса. Anim Reprod Sci 2004;82–82:513–535.

13. Bech-Sabàt G, López-Gatius F, Yániz JL и др. . Факторы, влияющие на уровень прогестерона в плазме крови в ранний плодный период у высокопродуктивных коров. Theriogenology 2008;69:426–432.

14. López-Gatius F, Làbernia J, Santolaria P, López-Béjar M, Rutllant J. Влияние нарушений репродуктивной функции до зачатия на прерывание беременности у молочных коров. Theriogenology 1996;46:643–648.

15. López-Gatius F, Santolaria P, Yániz J, Rutllant J, López-Béjar M. Факторы, влияющие на потерю беременности в период с 38-го по 90-й день стельности у лактирующих молочных коров одного стада. Theriogenology 2002;57:1251–1261.

16. Silva-del-Río N, Colloton J, Fricke P. Факторы, влияющие на потерю беременности при одноплодной и двойневой стельности в высокопродуктивном молочном стаде. Theriogenology 2009;71:1462–1471.

17. García-Ispierto I, López-Gatius F, Santolaria P и др. . Связь теплового стресса в периимплантационный период с ранней гибелью плода у молочного крупного рогатого скота. Theriogenology 2006;65:799–807.

18. Kastelic J, Ginther O. Судьба зародыша и жёлтого тела после вызванной гибели эмбриона у тёлок. J Am Vet Med Assoc 1989;194:922–928.

19. Lopez H, Caraviello D, Satter L, Fricke P, Wiltbank M. Связь уровня молочной продуктивности с множественной овуляцией у лактирующих молочных коров. J Dairy Sci 2005;88: 2783–2793.

20. Van Vleck LD, Gregory KE. Генетическая тенденция и влияние среды в популяции крупного рогатого скота, отбираемого по признаку рождения двоен. J Anim Sci 1996;74:522–528.

21. López-Gatius F, Hunter R. Самопроизвольная редукция близнецовых эмбрионов на поздней стадии развития: частота возникновения и клиническое значение у молочного крупного рогатого скота. Theriogenology 2005;63:118–125.

22. Van Saun R. Сравнение показателей голштинских коров с одноплодной и двойневой стельностью до и после отёла. В: Труды 34-й ежегодной конференции Американской ассоциации ветеринарных специалистов по крупному рогатому скоту . Оберн, Алабама: AABP, 2001, с. 204.

23. Andreu-Vázquez C, García-Ispierto I, Ganau S, Fricke P, LópezGatius F. Влияние двойневой стельности на последующие показатели воспроизводства и продолжительность продуктивного использования высокопродуктивных молочных коров. Theriogenology 2012;78:2061–2070.

24. Callahan C, Horstman L. Точность выявления двойневой стельности у молочных коров методом ректальной пальпации. Theriogenology 1990;1:322–324.

25. Silva-del-Río N, Kirkpatrick J, Fricke P. Наблюдаемая частота однояйцевых двоен у голштинского молочного скота. Theriogenology 2006;66:1292–1299.

26. López-Gatius F, García-Ispierto I, Hunter R. Факторы, влияющие на самопроизвольную редукцию жёлтых тел и близнецовых эмбрионов в поздний эмбриональный и ранний плодный периоды у молочных коров с множественной овуляцией. Theriogenology 2010;73:293–299.

27. López-Gatius F, Szenci O, Bech-Sabat G и др. . Факторы неинфекционной природы, влияющие на гибель эмбрионов на поздних стадиях развития и плодов на ранних стадиях в высокопродуктивных молочных стадах на северо-востоке Испании. Magyar Allatorvosok Lapja 2009;131:515–531.

28. Andreu-Vázquez C, Garcia Ispierto I, López-Bejár M, de Sousa N, Beckers JF, López-Gatius F. Клиническое значение искусственно вызванной редукции одного из близнецов у молочного крупного рогатого скота. Theriogenology 2011;76:512–521.

29. Curran S, Kastelic J, Ginther O. Определение пола плода крупного рогатого скота при ультразвуковом исследовании по расположению полового бугорка. Anim Reprod Sci 1989;19:217–227.

30. Stroud B. Определение пола плода крупного рогатого скота: неотредактированная версия (DVD). Редвуд-Сити, Калифорния: BioTech Productions, 1996.

31. Singh J, Pierson R, Adams G. Характеристики ультразвукового изображения жёлтого тела у крупного рогатого скота: связь со структурными и функциональными особенностями. J Reprod Fertil 1998;112:19–29.

32. Souza A, Silva E, Cunha A и др. . Ультразвуковая оценка толщины эндометрия незадолго до осеменения в установленный срок как предиктор фертильности высокопродуктивных молочных коров. Theriogenology 2011; 75:722–733.

1. Kastelic J, Pierson R, Ginther O. Ультразвуковая морфология жёлтых тел и их центральных полостей. J Am Vet Med Assoc 1990;194:922–928.

2. Wiltbank M, Gümen A, Sartori R. Физиологическая классификация состояний, сопровождающихся отсутствием овуляции, у крупного рогатого скота. Theriogenology 2002;57:21–52.

3. Braw-Tal R, Pen, S, Roth Z. Кисты яичников у высокопродуктивных молочных коров. Theriogenology 2009;72:690–698.

4. Stevenson J. Почему вокруг кист столько шума? Hoard’s Dairyman 2006 (октябрь), с. 682.

5. Bicalho R, Galvão K, Guard C, Santos J. Повышение точности выявления функционального жёлтого тела у молочных коров. Theriogenology 2008;70:199–207.

6. Galvão K, Sá Fihlo M, Santos J. Сокращение интервала между предварительной синхронизацией и началом искусственного осеменения в назначенное время повышает плодовитость молочных коров. J Dairy Sci 2007;90: 4212–4218.

7. Bulman D, Lamming G. Случаи длительной активности жёлтого тела у нестельных молочных коров. Vet Rec 1977;100:550–552.

8. Lamming G, Darwash A. Использование профилей концентрации прогестерона в молоке для характеристики причин сниженной плодовитости у дойных коров. Anim Reprod Sci 1998;52:175–190.

9. Gnemmi G. Яичник коровы. В кн.: DesCôteaux L, Gnemmi G, Colloton J (ред.) Практический атлас репродуктивной ультрасонографии жвачных и верблюдовых . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2010, с. 55–56.

10. López-Helguera I, López-Gatius F, Garcia-Ispierto I. Влияние состояния половых путей в послеродовой период на последующие

показатели воспроизводства высокопродуктивных молочных коров. Theriogenology 2012;77:1334–1342.

1. Durocher J, Morin N, Blondin P. Влияние гормональной стимуляции на фолликулярный ответ и способность ооцитов крупного рогатого скота к развитию в условиях коммерческого предприятия. Theriogenology 2006;65:102–115.

2. Singh J, Dominguez M, Jaiswal R, Adams G. Простой ультразвуковой тест для прогнозирования ответа на суперовуляционную стимуляцию у крупного рогатого скота. Theriogenology 2004;62:227–243.

3. Stroud B. Пересадка эмбрионов крупного рогатого скота, экстракорпоральное оплодотворение, специальные процедуры и клонирование. В кн.: DesCôteaux L, Gnemmi G, Colloton J (ред.) Практический атлас репродуктивной ультрасонографии жвачных и верблюдовых . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2010, с. 131–132.

4. Savio J, Boland M, Roche J. Развитие доминантных фолликулов и продолжительность яичниковых циклов у молочных коров после отёла. J Reprod Fertil 1990;88:581–591.

5. Kotoyori Y, Yokoo N, Ito K и др. . Трёхмерная ультразвуковая визуализация плода лошади. Theriogenology 2012;77:1480–1486.

6. Ginther O. Ультразвуковая визуализация и репродукция животных: цветная допплерография . Кросс-Плейнс, Висконсин: Equiservices Publishing, 2007.

7. Gnemmi G, Lefebvre R. Анатомия и ультрасонография репродуктивных органов быка. В кн.: DesCôteaux L, Gnemmi G, Colloton J (ред.) Практический атлас репродуктивной ультрасонографии жвачных и верблюдовых . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2010, с. 143–162.

8. Buczinski S (ред.). Ультразвуковое исследование крупного рогатого скота. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2009;25:553–822.

Здоровье мясного стада для оптимального воспроизводства

Терри Дж. Энгелькен и Тайлер М. Долман

Кафедра ветеринарной диагностики и медицины продуктивных животных, Центр ветеринарной медицины им. Ллойда, Колледж ветеринарной медицины, Эймс, Айова, США

Вступление

Эффективность воспроизводства является наиболее важным выходным параметром, влияющим на прибыльность предприятия по производству мясных коров/телят.¹ Хотя существует множество причин для снижения репродуктивных показателей и сохранности телят, инфекционные заболевания являются основной причиной и часто играют ключевую роль. Репродуктивное заболевание может проявляться разными способами, в зависимости от патогена. Ранняя эмбриональная смерть, аборт на позднем сроке, «синдром слабых телят» и задержка с оплодотворением - все это распространенные клинические сценарии. Тем не менее, конечный результат заключается в том, что у хозяйства на продажу будут отъемные телята с меньшим весом. Крайне важно, чтобы ветеринарный врач мог понять взаимосвязь этих инфекционных агентов с риском заражения, сроками потери стельности, диагностической информацией о стаде и продуктивностью стада. Только тогда могут быть разработаны комплексные программы иммунизации для всей фермы, которые позволят минимизировать потери, связанные с репродуктивными патогенами.

Использование диагностики

Крайне важно, чтобы при разработке программы охраны здоровья стада использовалась диагностическая информация. Выбор вакцин для использования в программе и графиках работы с коровами каждого производителя зависит от присутствия конкретного патогена в стаде или географического района и от риска интродукции ( внедрения) .² Важно определить категорию или период репродуктивных потерь, поскольку репродуктивные патогены имеют тенденцию встречаться на определенных стадиях стельности. Классически эти категории были определены как ранняя гестационная, средняя гестационная, поздняя гестационная и перипартуриентная (Таблица 37.1). Определение того, когда происходят гестационные потери, является первым шагом в понимании этиологии этих потерь и представляет собой отправную точку для построения программы вакцинации. Использование диагностических инструментов в случаях аборта может быть очень полезным и может быть очень неприятным из-за диагностических ограничений и сложностей.

В случаях аборта этиологический диагноз выявляется менее чем в 50% случаев.³ Тем не менее, благодаря осознанным усилиям диагностических лабораторий ряд достижений в диагностике улучшил выявление определенных патогенных микроорганизмов.⁴ Хотя этиологическая диагностика может быть сложной, благодаря ей могут быть выявлены инфекционные агенты, вызывающие аборты. В таблице 37.2 показаны многочисленные патогенные микроорганизмы, которые связаны с абортами у коров, период беременности, на который они обычно влияют, и общие диагностические процедуры, используемые для их выявления.^2,5–9 Некоторые патогены считаются распространенными репродуктивными агентами, а некоторые редко идентифицируются. Кроме того, определенные патогены могут быть более распространенными в определенных географических районах.³ Диагностические лаборатории имеют различные возможности по ведению аборта. Для практиков разумно иметь тесные рабочие отношения с лабораторией. Консультации диагноста иногда необходимы для разработки системного подхода к абортам. Соответствующие образцы тканей и биологических жидкостей являются более полезными, чем прочие, и важны комплексные представления.

Адекватная информация, включая историю стада, представленная в диагностическую лабораторию является наиболее важным шагом к точному диагнозу.⁴ Обследование по поводу аборта может быть дорогостоящим, а иногда и не приносящим прибыли. В наилучших интересах предоставить диагностической лаборатории необходимую информацию, чтобы минимизировать затраты и максимизировать успех диагностики. Даже несмотря на то, что инфекционные агенты составляют большую часть описанной этиологии, практикующие врачи, производители и диагносты должны осознавать, что аборты не ограничиваются инфекционными агентами.⁹ Неинфекционные причины, такие как окружающая среда, токсины, питание и генетика, тоже должны рассматриваться как возможные источники репродуктивных нарушений.

Серологический отбор может быть использован в диагностических обследованиях при абортах, но результаты всегда следует интерпретировать с осторожностью. Отдельные образцы сыворотки практически не имеют значения при диагностике причин абортов.