Воспроизводство крупного рогатого скота

GnRH PGF2α GnRH
ввести CIDR извлечь CIDR ИО
утро утро утро
CIDR ®
День 0 5 8

Рисунок 38.1 5-дневный 72-часовой протокол CIDR-CoSynch (Rabaglino и др.⁴¹ ).

Как и в случае с лактирующими коровами, на телках можно использовать протоколы синхронизации овуляции, которые позволяют искусственно осеменять их по времени, избегая тем самым проблем с выявлением охоты. Однако, менее 4% молочных стад использовали синхронизированное ИО при воспроизводстве телок.¹³ Столь малое применение можно объяснить снижением оплодотворяемости по ИО (30–40%), полученной по стандартным протоколам Ovsynch, по сравнению с ИО по выявленной охоте (50– 60%).¹² Из-за различий в динамике фолликулов между коровами и телками³⁹ молочные телки могут проявлять охоту близко к инъекции PGF2α, тем самым вызывая асинхронность при синхронизации ИО. Тем не менее, применение внутривлагалищного импланта с контролируемым высвобождением лекарственного средства (CIDR), содержащего прогестерон, во время протокола Ovsynch улучшает синхронизацию овуляции во время ИО по времени.⁴⁰ Модификации стандартной программы Ovsynch путем инъекции гонадотропинрилизинг-гормона (GnRH) и введения CIDR, инъекции PGF2α и удаления CIDR через 5 дней, а затем через 72 часа ИО одновременно со второй инъекцией ГнРГ (5-дневный CIDR-CoSynch через 72 часа) (рис. 38.1) привели к адекватной оплодотворяемости по ИО (50– 60%).^41,42

Прибыль от молочных ремонтных телок увеличивается до максимума, когда телки телятся в возрасте от 23 до 25 месяцев, вследствие более высокой пожизненной продуктивности молока и более низких затрат на выращивание.⁴³ Таким образом, для сохранения генетического прогресса и максимальной прибыльности программы воспроизводства телок должны включать ИО и стремиться к отелу. около 24 месяцев. Принимая во внимание оптимальную фертильность, наблюдаемую по 5-дневному протоколу CIDR-CoSynch 72 часа, основным экономическим преимуществом будет увеличение числа стельных телок после того, как они достигнут случных параметров, что должно привести к более молодому возрасту при отелах и снизить затраты на кормление.⁴⁴ Как и в случае лактирующих коров, включение выявления охоты в программу синхронизации ИО увеличило бы количество стельных телок и снизило бы стоимость одной стельности.

Заключение

Успешные репродуктивные показатели имеют решающее значение для экономической жизнеспособности молочной фермы. Разработка и применение программ FTAI теперь позволяют производителям повысить количество осемененных животных, чтобы своевременно получать больше стельных коров по окончании ДПО. Признание взаимосвязи между здоровьем коров и репродуктивной эффективностью имеет важное значение. Поскольку здоровье в послеродовом периоде оказывает серьезное влияние на фертильность молочных коров, важно, чтобы программы по кормлению и здоровью были разработаны таким образом, чтобы свести к минимуму риск заражения и снизить распространенность перипартуриентных заболеваний. Для борьбы с инфекционными причинами бесплодия необходима эффективная программа вакцинации. Должны существовать процедуры для сбора и оценки данных, относящихся к управлению воспроизводством стада, чтобы определить, нужны ли изменения для улучшения фертильности.

Репродуктивная недостаточность чаще связана с человеческим фактором, чем с самими животными. Таким образом, молочные фермы с успешной репродуктивной программой имеют хорошо обученных и ответственных сотрудников, которые соблюдают указанные процедуры управления стадом.

Примечание редактора

Для ознакомления с более конкретным и подробным описанием управления молочным производством читатель может обратиться к замечательному тексту, отредактированному автором этой главы, «Dairy Production Medicine», который также доступен от WileyBlackwell.

Ссылки

1. De Vries A. Экономическая ценность стельности у молочного крупного рогатого скота. J Dairy Sci 2006;89:3876–3885.

2. Santos J. Внедрение программ управления воспроизводством в молочных стадах. Cattle Practice 2008;16:5-1.

3. Giordano J, Fricke P, Wiltbank C, Cabrera E. Экономическая система поддержки принятия решений при выборе программ управления воспроизводством на молочных фермах. J Dairy Sci 2011;94:6216–6232.

4. Ribeiro E, Lima F, Ayres H и др. Влияние послеродовых заболеваний на воспроизводство молочных коров на пастбищном содержании. J Dairy Sci 2011;94(доп. 1):63 (аннотация).

5. Martinez N, Risco C, Lima F и др.Оценка уровня кальция, энергетического статуса и функции нейтрофилов в околородовой период у молочных коров с низким или высоким риском развития заболеваний матки. J Dairy Sci 2012;95:7158–7172.

6. Hammon D, Evjen I, Dhiman T, Goff J, Walters J. Функция нейтрофилов и энергетический статус у коров голштинской породы с заболеваниями матки. Vet Immunol Immunopathol 2006;113:21–29.

7. Dubuc T, Duffield T, Leslie K, Walton J, LeBlanc S. Факторы риска послеродовых заболеваний матки у молочных коров. J Dairy Sci 2010; 93:5764–5771.

8. Butler S, Marr L, Pelton H, Radcliff P, Butler C, Butler R. Инсулин восстанавливает чувствительность к GH при отрицательном энергетическом балансе, вызванном лактацией у молочных коров: влияние на экспрессию IGF-I и рецептора GH 1A. J Endocrinol 2003;176:205–217.

9. Hileman S, Lubbers L, Jansen T, Lehman M. Изменение числа клеток гипоталамуса, содержащих рецепторы эстрогенов, в ответ на ограничение кормления у ягнят-самок. Neuroendocrinology 1999; 69:430–437.

10. Santos J, Rutigliano H, Sá Filho M. Факторы, влияющие на возобновление половых циклов после отёла и выживаемость эмбрионов у лактирующих молочных коров. Anim Reprod Sci 2009;110:207–221.

11. Santos J, Bisinotto R, Ribeiro E и др. Применение знаний о питании и физиологии для улучшения воспроизводства молочного крупного рогатого скота. Soc Reprod Fertil Suppl 2010;67:387–403.

12. Ribeiro E, Galvão K, Thatcher W, Santos JEP. Экономические аспекты применения репродуктивных технологий в молочных стадах. Anim Reprod 2012;9:370–387.

13. Национальная система мониторинга здоровья животных. Молочное скотоводство 2007. Часть IV. Справочник по здоровью молочного крупного рогатого скота и методам управления стадом в США, 2007 . Форт-Коллинс , Колорадо: USDA, 2009.

1. De Vries A. Экономика воспроизводства. В кн.: Risco CA, Melendez Retamal P (ред.) Ветеринария молочного скотоводства . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2011, с. 139–151.

2. Caraviello D, Weigel A, Fricke P и др. Обзор методов управления воспроизводством молочного крупного рогатого скота на крупных коммерческих фермах США. J Dairy Sci 2006;89:4723–4735.

3. LeBlanc S. Экономика улучшения воспроизводства в молочных стадах. WCDS Adv Dairy Technol 2007;19:201–214.

4. Bisinotto R, Santos J. Применение гормональных препаратов для повышения частоты наступления стельности у крупного рогатого скота. Reprod Fertil Dev 2011;24:258–266.

5. Wiltbank M, Sartori R, Herlihy M и др. . Управление развитием доминантного фолликула у лактирующих молочных коров. Theriogenology 2011;76:1568–1582.

6. Galvão N, Federico P, De Vries A, Schuenemann M. Экономическое сравнение программ воспроизводства в молочных стадах, основанных на выявлении охоты, применении Ovsynch или сочетании обоих методов. J Dairy Sci 2013;96:2681–2693.

7. De Vries A, Steenholdt C, Risco C. Частота наступления стельности и молочная продуктивность в молочных стадах Флориды и Джорджии при естественном осеменении и искусственном осеменении. J Dairy Sci 2005;88:948–956.

8. Overton M, Sischo W. Сравнение показателей воспроизводства при искусственном осеменении и естественном осеменении быками-производителями в молочных хозяйствах Калифорнии. Theriogenology 2005;64:603–613.

9. Lima F, Risco C, Thatcher M и др. Сравнение показателей воспроизводства у лактирующих молочных коров при естественном осеменении и искусственном осеменении в фиксированное время. J Dairy Sci 2009;92:5456–5466.

10. Lima F, De Vries A, Risco C, Santos J, Thatcher W. Экономическое сравнение программ естественного осеменения и искусственного осеменения в фиксированное время в молочном скотоводстве. J Dairy Sci 2010;93:4404–4413.

11. Colloton J. Применение ультразвукового исследования в управлении воспроизводством молочного крупного рогатого скота. В кн.: Risco CA, Melendez Retamal P (ред.) Ветеринария молочного скотоводства . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2011, с. 99–116.

12. Humblot F, Camous S, Martal J. Специфический белок беременности B, концентрации прогестерона и эмбриональная смертность на ранних сроках стельности у молочных коров. J Reprod Fertil 1988;83:215–223.

13. Breed M, Guard C, White M, Smith M, Warnick L. Сравнение диагностики стельности у молочного крупного рогатого скота с помощью коммерческого иммуноферментного анализа и ректальной пальпации. J Am Vet Med Assoc 2009;235:292–297.

14. Roche J. Ранняя гибель эмбрионов у крупного рогатого скота. В кн.: Morrow DA (ред.) Современные методы лечения в ветеринарной репродуктологии , 2-е изд. Филадельфия: WB Saunders, 1986, с. 200–204.

15. Moore D, Overton M, Chebel R, Truscott ML, BonDurant RH. Оценка факторов, влияющих на гибель эмбрионов у молочного крупного рогатого скота. J Am Vet Med Assoc 2005;226:1112–1118.

16. Barker R, Schrick F, Lewis M, Dowlen H, Oliver S. Влияние клинического мастита в начале лактации на репродуктивные показатели коров джерсейской породы.J Dairy Sci 1988;81:1285–1290.

17. Pinedo P, Melendez P, Villagomez-Cortez, J, Risco C. Влияние высокого содержания соматических клеток на репродуктивные показатели молочного крупного рогатого скота в Чили.J Dairy Sci 2009;92:1575–1580.

18. Beam S, Butler W. Энергетический баланс и развитие фолликулов яичников до первой овуляции после отёла у молочных коров при трёх уровнях содержания жира в рационе.Biol Reprod 1997;56:133–142.

19. Patton J, Kenny D, McNamara Sи др.Взаимосвязь между молочной продуктивностью, энергетическим балансом, показателями плазмы крови и воспроизводством у коров голштино-фризской породы.J Dairy Sci 2007;90:649–658.

20. Corteze V. Иммунология и вакцинация молочного крупного рогатого скота. В кн.: Risco CA, Melendez Retamal P (ред.)Медицина молочного животноводства. Эймс, штат Айова: Wiley-Blackwell, 2011, с. 165–174.

21. Overton M, Risco C, Dalton J. Отбор и содержание быков-производителей для естественной случки в молочных стадах. В кн.:Материалы ежегодной конференции Американской ассоциации ветеринарных специалистов по крупному рогатому скоту, 2003, с. 57–62.

22. Overton M. Анализ данных учёта в молочном животноводстве и оценка продуктивности. В кн.: Risco CA, Melendez Retamal P (ред.)Медицина молочного животноводства. Эймс, штат Айова: Wiley-Blackwell, 2011, с. 271–302.

23. Santos J, Thatcher W, Chebel R, Cerri R, Galvão K. Влияние частоты гибели эмбрионов у крупного рогатого скота на эффективность программ синхронизации половой охоты.Anim Reprod Sci 2004;83:513–535.

24. Pinedo P, Risco C, Melendez P. Ретроспективное исследование связи продолжительности сухостойного периода с субклиническим маститом, удоем, репродуктивными показателями и выбраковкой молочных коров в Чили.J Dairy Sci 2011;94:106–115.

25. Stevenson, J, Dalton J, Santos J, Sartori R, Ahmadzadeh A, Chebel R. Влияние протоколов синхронизации на развитие фолликулов и концентрации эстрадиола и прогестерона у тёлок молочных пород.J Dairy Sci 2008;91:3045–3056.

26. Savio D, Keenan M, Boland P, Roche J. Характер роста доминантных фолликулов в течение полового цикла у тёлок.J Reprod Fertil 1988;83:663–671.

27. Rivera H, Lopez H, Fricke P. Применение внутривлагалищных вкладышей, высвобождающих прогестерон, в протоколе синхронизации перед искусственным осеменением в фиксированное время и для синхронизации повторного наступления половой охоты у голштинских тёлок.J Dairy Sci 2005;88:957–968.

28. Rabaglino M, Risco C, Thatcher M, Kim I, Santos J, Thatcher W. Применение одной инъекции простагландина F2α в пятидневном протоколе CoSynch + CIDR для синхронизации и повторной синхронизации половой охоты у тёлок молочных пород.J Dairy Sci 2010;93:1050–1058.

29. Lima F, Ayres H, Favoreto M и др. Влияние введения ГнРГ в начале 5-дневной программы искусственного осеменения в фиксированное время и времени индукции овуляции относительно осеменения на динамику процессов в яичниках и фертильность тёлок молочных пород.J Dairy Sci 2011;94:4997–5004.

30. Head H. Нормативные показатели для тёлок: системы выращивания, темпы роста и лактация. В кн.: Van Horn HH, Wilcox CJ, DeLorenzo DA (ред.)Охрана здоровья крупных молочных стад. Шампейн, штат Иллинойс: American Dairy Science Association, 1992, с. 422–433.

31. Ettema J, Santos J. Влияние возраста при отёле на лактацию, воспроизводство, здоровье и доходность у голштинских коров первой лактации на коммерческих фермах.J Dairy Sci 2004;87:2730–2742.

Стратегии диагностического тестирования стада

Robert L. Larson

Клинические науки, Колледж ветеринарной медицины, Канзасский государственный университет, Манхэттен, Канзас, США

Вступление

Ветеринарные врачи помогают владельцам продуктивных животных достичь определенных целей по воспроизводству стада. Они включают в себя высокий процент стельных самок после покрытия быками (то есть повышение фертильности или минимизация бесплодия); сведение к минимуму воздействия инфекционных, метаболических и других заболеваний, которые могут привести к потере стельности или иным патологиям; и повышение генетической ценности стада путем отбора и наращивания поголовья экономически лучших родительских животных. Для оценки эффективности воспроизводства в хозяйстве у ветврачейпрактиков есть ряд тестов, пригодных для скрининга, мониторинга и диагностики групп животных и отдельных особей. Обычно используемые диагностические процедуры включают лабораторные тесты на возбудителей инфекционных заболеваний, такие как серология, иммуногистохимия, полимеразная цепная реакция (ПЦР), выделение вируса и бактериальный посев. Эти тесты могут быть использованы для выявления инфекционных заболеваний у внешне здоровых животных и для изучения вспышек заболеваний. Кроме того, ветеринары используют диагностические процедуры для изучения отдельных видов скота и целого стада, чтобы найти и изменить предотвратимые риски, для оценки здоровья племенных быков и телок, для оценки упитанности, для диагностики стельности посредством ректальной пальпации матки или ультразвукового ректального исследования, и для оценки кормов и рационов (пищевой и токсикологической).

Определение полезности диагностического теста

Реальный вопрос, с которым сталкиваются ветеринарные врачи, заключается в том, использовать ли имеющиеся диагностические тесты для скрининга конкретного стада на предмет определенного состояния.¹ Входные данные, необходимые для логического вывода, включают данные о распространенности состояния или заболевания, чувствительности и специфичности диагностического теста, эпидемиологии заболеваний или состояний, а также экономические затраты на лечение или профилактику состояния.² Обзор литературы и математические пособия, такие как компьютерные таблицы, - это инструменты, используемые для расчета прогностических значений диагностических тестов после тестирования, экономической ценности тестирования, правильности решений по отношению к отдельным входным данным и важности индивидуальных входных данных для принятия решения.

Эти расчеты могут затем использоваться для оценки альтернативных диагностических стратегий тестирования и для определения контрольных точек, которые будут отслеживаться на предмет изменений, способных вызвать переоценку решения.

Чувствительность и специфичность диагностических тестов

Чувствительность и специфичность - это свойства диагностического теста, которые определяются путем сравнения теста с «золотым стандартом». Золотой стандарт считается истинным диагнозом и может быть поставлен с использованием разнообразной информации, такой как клиническое обследование, лабораторные результаты или данные, полученные посмертно. Чувствительность - это доля истинно положительных (золотой стандарт-положительных) образцов, которые в данном тесте определяются как положительные. Специфичность - это доля истинно отрицательных образцов, которые тест определяет как отрицательные. Другими словами, чувствительность отвечает на вопрос «Насколько эффективен тест при идентификации животных с состоянием/заболеванием?», А специфичность отвечает на вопрос «Насколько эффективен тест при идентификации животных без состояния/заболевания?» Диагностические тесты разделяют две группы животных. Одна из них ненормальная, больная или имеет нежелательное состояние, а другая - нормальная или имеет желаемое состояние. В большинстве случаев, представляющих интерес для ветеринаров, пораженные и нормальные группы перекрываются на основе имеющихся диагностических тестов; следовательно, как в лабораторных, так и в клинических тестах должна использоваться произвольная отсечка ( пороговое значение нормы) , разделяющая тест-положительную и тестотрицательную группы. То, где именно установлена отсечка в диагностических тестах очень важно при принятии решения, в какое из двух категорий результатов отнести конкретное животное или стадо. Поскольку диагностические измерения пораженных и непораженных групп животных в некоторой степени пересекаются, чувствительность и специфичность обратно пропорциональны, и установление отсечки всегда является компромиссом между количеством ложноотрицательных и ложноположительных результатов (рис. 39.1). Если отсечки теста не установлены вет.врачом (то есть, установлены производителем теста или в диагностической лаборатории), важно, чтобы практикующий врач был проинформирован о чувствительности и специфичности теста.