Воспроизводство крупного рогатого скота

Было показано, что ручное удаление последа отрицательно сказывается на будущей фертильности, особенно у коров с метритом⁶⁰ а внутриматочные антибиотики нарушают гнилостные процессы, необходимые для растворения мембран.⁵¹ Экболические (сокращающие) агенты, такие как PGF2α и его синтетические аналоги, производное спорыньи и окситоцин, не влияют на изгнание плаценты.^51,61 Лучший совет - игнорировать послед и сосредоточить усилия на лечении метрита.

Эндометрит

Лечение эндометрита в настоящее время основано на двух различных схемах: внутримышечном введении PGF2α и внутриматочной инфузии антибиотиков. Многие другие протоколы лечения были популяризированы, но не выдержали научных исследований. Адекватные размеры выборки, лучшее понимание инволюции матки и использование показателей воспроизводства при оценке результатов лечения являются требованиями достоверных исследований.

Основанием для лечения эндометрита с помощью PGF2α или синтетического аналога является стимуляция защитных механизмов матки путем разрушения желтого тела и удаления источника прогестерона.^62,63 Считается, что утеротонические эффекты в отсутствие желтого тела незначительны.⁹ Лечение субклинического эндометрита клопростенолом между 20 и 33 днями лактации привело к 70%-ному улучшению вероятности этих коров стать стельными по сравнению с неподверженными лечению аналогами.⁶⁴ О наличии или отсутствии функционирующего желтого тела не сообщалось; тем не менее, считается, что лечение PGF2α более эффективно при наличии лютеиновой ткани^65,66 , поэтому рекомендуется применять PGF2α для лечения заболеваний матки только после первого месяца после родов.⁹ Программы эстральной синхронизации, особенно те, в которых используют многократные инъекции PGF2α, показали положительный эффект у коров с диагнозом эндометрит;⁶² однако, в двух исследованиях лечение PGF2α через 35 дней и 49 дней после родов не показало никакой пользы для разрешения болезни матки.^67,68 Хотя, по-видимому, PGF2α не имеет прямой пользы при лечении заболеваний матки, наблюдался положительный эффект от лечения PGF2α на репродуктивную функцию у коров с плохой упитанностью.⁶⁸

Внутриматочная инфузия противомикробных препаратов направлена на получение более высоких концентраций лекарственного средства в месте заражения, чем при системном введении. Окситетрациклин был когда-то самым популярным средством, вводимым в матку коров, но он относительно неэффективен, так как он плохо всасывается в более глубокие слои матки.^53,65 Несмотря на это, некоторая абсорбция происходит, и поэтому следует соблюдать период ожидания по молоку и мясу.⁶⁹ Некоторые препараты могут также вызывать коагуляционный некроз эндометрия.⁷⁰ Так, было показано, что маточные вливания в день или на следующий день после осеменения, которые проводят исходя из предпосылки, что терапевтическая эффективность выше в течение фолликулярной фазы, оказывали пагубное влияние на беременность у большинства коров, предположительно вызванное воспалением эндометрия.⁷¹

Там, где это возможно, бензатин-цефапирин (Metricure, Merck Animal Health), цефалоспорин первого поколения, не выявляющийся в мясе или молоке, является препаратом для инфузии матки. В обширном полевом исследовании 316 коров в возрасте от 27 до 33 дней лактации с клиническим эндометритом разделили на группы, одна из которых получала инфузию цефапирина, вторая - PGF2α внутримышечно, а третья служила контролем и не получала лечения.

Животные, получавшие цефапирин, забеременели на 60% быстрее, чем контрольные; однако, интервал до беременности у животных, обработанных PGF2α, значительно не отличался от такового у контрольных животных.⁶⁶ Похоже, что не все препараты цефалоспорина одинаковы; внутриматочная инфузия 125 мг гидрохлорида цефтиофура (Spectramast LC, Pfizer Animal Health) через 44 дня после родов у коров с клиническим эндометритом снизила распространенность бактериальных инфекций, но не повлияла на индекс стельности.⁷²

Пиометра

Бесспорно, лучшим лечением пиометры является лютеолитическая (рекомендованная производителем доза) инъекция PGF2α или его синтетического аналога клопростенола. Эти рекомендации не менялись в течение десятилетий, большинство животных реагировали после одной инъекции. Эвакуация матки начинается уже через 24 часа после инъекции, а эстральное поведение часто проявляется через 3-4 дня. Инсеминацию следует откладывать до первого или даже второго эструса после индуцированного эструса, при этом более двух третей животных, по сообщениям, становятся стельными.⁷³ В редких случаях бывает некоторое повреждение шейки матки, что ухудшает очищение матки. В таких случаях может быть полезно промывание физиологическим раствором.

Ссылки

1. Sheldon I, Price S, Cronin J, Gilbert R, Gladsby J. Механизмы бесплодия, связанного с клиническим и субклиническим эндометритом у высокопродуктивного молочного крупного рогатого скота. Reprod Domest Anim 2009; 44(доп. вып. 3):1–9.

2. Markusfeld O. Особенности околородового периода в семи высокопродуктивных молочных стадах. Частота возникновения, связь с числом отёлов и взаимосвязи между признаками. J Dairy Sci 1987;70:158–166.

3. Gröhn Y, Erb H, McCulloch C, Saloniemi H. Эпидемиология нарушений воспроизводства у молочного крупного рогатого скота: взаимосвязи между характеристиками животных, заболеваниями и продуктивностью. Prev Vet Med 1990; 8:25–39.

4. Dubuc J, Duffield T, Leslie K, Walton J, LeBlanc S. Определения и диагностика послеродового эндометрита у молочных коров. J Dairy Sci 2010;93:5225–5233.

5. Cheong S, Nydam D, Galvão K, Crosier B, Gilbert R. Факторы риска субклинического эндометрита у лактирующих голштинских коров на уровне отдельных животных и стада. J Dairy Sci 2011;94:762–770.

6. Rutigliano H, Lima F, Cerri R и др. . Влияние метода предварительной синхронизации и источника селена на состояние матки и воспроизводство у молочных коров. J Dairy Sci 2008;91:3323–3336.

7. Huzzey J, Veira D, Weary D, von Kerserlingk M. Поведение до отёла и потребление сухого вещества позволяют выявить коров с риском метрита. J Dairy Sci 2007;90:3220–3233.

8. Urton G, von Keyserlingk M, Weary D. Кормовое поведение позволяет выявить молочных коров с риском метрита. J Dairy Sci 2005;88: 2843–2849.

9. LeBlanc S. Послеродовые заболевания матки и показатели воспроизводства молочного стада: обзор. Vet J 2008;176:102–114.

10. Hammon D, Evjen I, Dhiman T, Goff J, Walters J. Функция нейтрофилов и энергетический статус у голштинских коров с заболеваниями матки. Vet Immunol Immunopathol 2006;113:21–29.

11. Smith B, Risco C. Предрасполагающие факторы и возможные причины послеродового метрита у молочного крупного рогатого скота. Comp Cont Educ Pract Vet 2002;24:S74–S80.

1. Noakes D, Wallace L, Smith G. Бактериальная флора матки коров после отёла на двух фермах с различными санитарно-гигиеническими условиями. Vet Rec 1991;128:440–442.

2. Herath S, Dobson H, Bryant C, Sheldon I. Использование коровы в качестве модели крупного животного для изучения инфекции матки и иммунитета. J Reprod Immunol 2006;69:13–22.

3. Lewis G. Проблемы со здоровьем у коров после отёла: состояние матки и её заболевания. J Dairy Sci 1997;80:984–994.

4. Sheldon I, Rycroft A, Zhou C. Связь между повышением температуры после отёла и бактериальной инфекцией матки у молочного крупного рогатого скота. Vet Rec 2004;154:289–293.

5. Noakes D, Parkinson T, England G, Arthur G. Ветеринарное акушерство и репродукция по Артуру , 8-е изд. Elsevier Science, 2002, с. 399–408.

6. Sheldon I, Cronin J, Goetze L, Donofrio G, Schuberth H. Определение послеродовых заболеваний матки и механизмы инфекции и иммунитета в половых путях самок крупного рогатого скота. Biol Reprod 2009;81:1025–1032.

7. Santos T, Gilbert R, Bicalho R. Метагеномный анализ бактериальной микробиоты матки у здоровых молочных коров после отёла и у коров с метритом. J Dairy Sci 2011;94:291–302.

8. Dohmen M, Joop K, Sturk A, Bols P, Lohuis J. Связь между бактериальным загрязнением матки, уровнем эндотоксинов и развитием эндометрита у коров после отёла при затруднённых родах или задержании последа. Theriogenology 2000;54:1019–1032.

9. Gilbert R, Santos N, Galvão K, Brittin S, Roman H. Связь между бактериями в матке после отёла и субклиническим эндометритом. J Dairy Sci 2007;90(прил. 1):469 (аннотация).

10. Williams E, Fischer D, Noakes D и др. . Связь между интенсивностью роста патогенных микроорганизмов в матке и функцией яичников у молочных коров после отёла. Theriogenology 2007;68:549–559.

11. Bicalho R, Machado V, Bicalho M и др. . Молекулярная и эпидемиологическая характеристика выделенной из матки крупного рогатого скота Escherichia coli . J Dairy Sci 2010;93:5818–5830.

12. Hill J, Gilbert R. Снижение качества эмбрионов крупного рогатого скота при культивировании в средах, предварительно контактировавших с воспалённым эндометрием. Aust Vet J 2008;86:312–316.

13. Peter A, Bosu W. Влияние внутриматочной инфекции на функцию жёлтых тел, сформировавшихся после первых овуляций у молочных коров после отёла. Theriogenology 1987;27:593–609.

14. Peter A, Bosu W. Связь инфекций матки с фолликулогенезом у молочных коров в ранний послеродовой период. Theriogenology 1988;30:1045–1051.

15. Sheldon I, Noakes D, Rycroft A, Pfeiffer D, Dobson H. Влияние бактериальной контаминации матки после отёла на отбор доминантного фолликула, рост и функцию фолликулов у крупного рогатого скота. Reproduction 2002;123:837–845.

16. Mateus L, Lopes da Costa L, Bernardo F, Robalo Silva J. Влияние инфекции матки в послеродовой период на инволюцию матки и активность яичников после отёла у молочных коров. Reprod Domest Anim 2002;37:31–35.

17. Sheldon I, Lewis G, LeBlanc S, Gilbert R. Определение заболеваний матки у крупного рогатого скота после отёла. Theriogenology 2006;65:1516–1530.

18. Chenault J, McAllister J, Chester T, Dame K. Эффективность парентерального введения стерильной суспензии цефтиофура гидрохлорида при лечении острого послеродового метрита у молочных коров. J Am Vet Med Assoc 2004;224:1634–1639.

19. Melendez P, McHale J, Bartolome J, Archbald L, Donovan G. Инволюция матки и фертильность голштинских коров после лечения PGF2α в ранний послеродовой период по поводу острого послеродового метрита J Dairy Sci 2004;87:3238–3246.

20. Østergaard S, Gröhn Y. Влияние заболеваний на суточный удой в контрольный день и массу тела молочных коров из датских исследовательских стад. J Dairy Sci 1999;82:1188–1201.

21. Wittrock J, Proudfoot K, Weary D, von Keyserlingk M. Метрит по-разному влияет на молочную продуктивность и долю выбраковки голштинских молочных коров после нескольких и после первого отёла. J Dairy Sci 2011;94: 2408–2412.

22. Sheldon I, Williams E, Miller A, Nash D, Herath S. Заболевания матки у крупного рогатого скота после отёла. Vet J 2008;176:115–121.

23. BonDurant R. Воспаление репродуктивного тракта крупного рогатого скота. J Dairy Sci 1999;82(прил. 2):101–110.

24. LeBlanc S, Duffield T, Leslie K и др. . Определение и диагностика послеродового клинического эндометрита и его влияние на воспроизводительные показатели молочных коров. J Dairy Sci 2002;85:2223–2236.

25. Ott R, Gustafsson B. Применение простагландинов для лечения пиометры и послеродовых инфекций у крупного рогатого скота: обзор. Comp Cont Educ Pract Vet 1981;3:S184–S187.

26. Manns J, Nkuuhe J, Bristol F. Концентрации простагландинов в маточной жидкости коров с пиометрой. Can J Comp Med 1985;49: 436–438.

27. Noakes D, Wallace L, Smith G. Пиометра у тёлки фризской породы: бактериологические изменения и изменения эндометрия. Vet Rec 1990;126:509.

28. Mortimer R, Farin P, Stevens R. Исследование репродуктивной системы нестельной коровы. В кн.: Youngquist RS (ред.) Современная терапия в териогенологии крупных животных . Филадельфия: WB Saunders, 1997, с. 268–275.

29. Williams E, Fischer D, Pfeiffer D и др. . Клиническая оценка влагалищной слизи после отёла отражает бактериальную инфекцию матки и иммунный ответ у крупного рогатого скота. Theriogenology 2005;63: 102–117.

30. Sheldon I, Noakes D, Rycroft A, Dobson H. Влияние ручного исследования влагалища после отёла на бактериальную контаминацию у коров. Vet Rec 2002;15:531–534.

31. MacDougall S, Macaulay R, Compton C. Связь между диагностикой эндометрита с помощью нового интравагинального устройства и воспроизводительными показателями молочного крупного рогатого скота. Anim Reprod Sci 2007;99:9–23.

32. Gilbert R, Shin S, Guard C, Erb H, Frajblat M. Распространённость эндометрита и его влияние на воспроизводительные показатели молочных коров. Theriogenology 2005;64:1879–1888.

33. Kasimanickam R, Duffield T, Foster R и др. Сравнение методов цитощётки и промывания матки для оценки цитологии эндометрия у клинически здоровых молочных коров после отёла. Can Vet J 2005;46:255–259.

34. Barlund C, Carruthers T, Waldner C, Palmer C. Сравнение методов диагностики послеродового эндометрита у молочных коров. Theriogenology 2008;69:1516–1530.

35. Kasimanickam R, Duffield T, Foster R и др. Цитологическое исследование эндометрия и ультразвуковое исследование для выявления субклинического эндометрита у молочных коров после отёла. Theriogenology 2004;62:9–23.

36. Ghasemi F, Gonzalez-Cano P, Griebel P, Palmer C. Экспрессия генов провоспалительных цитокинов в образцах эндометрия, взятых с помощью цитощётки у коров с субклиническим эндометритом и без него. Theriogenology 2012;78:1538–1547.

37. Machado V, Knauer W, Bicalho M, Oikonomou G, Gilbert R, Bicalho R. Новый метод диагностики состояния матки у коров голштинской породы через 35 дней после отёла. J Dairy Sci 2012;95:1349–1357.

38. Pugh D, Lowder M, Wenzel, J. Ретроспективный анализ ведения 78 случаев послеродового метрита у коров. Theriogenology 1994;42:455–463.

39. Smith B, Risco C. Возможности лечения и ведения молочных коров с послеродовым метритом. Comp Cont Educ Pract Vet 2002;24:S92–S100.

40. Paisley L, Micklesen W, Anderson P. Механизмы задержания плодных оболочек и инфекций матки у коров и их лечение: обзор. Theriogenology 1986;25:353–381.

41. Okker H, Schmitt E, Vos P, Scherpenisse P, Bergwerff A, Jonker F. Фармакокинетика цефтиофура в плазме крови, маточных выделениях и тканях матки после подкожного введения молочным коровам в послеродовой период. J Vet Pharmacol Ther 2002;25:33–38.

42. Bretzlaff K, Ott R, Koritz G, Bevill R, Gustafsson B, Davis L. Распределение окситетрациклина в тканях половых путей коров после отёла при внутривенном и внутриматочном введении препарата. Am J Vet Res 1983;44:764–769.

1. Nakao T, Moriyoshi M, Kawata K. Влияние послеродовой внутриматочной обработки раствором поливинилпирролидон-йода концентрации 2% на воспроизводительную эффективность коров. Theriogenology 1988;30:1033–1043.

2. Risco C, Youngquist R, Shore M. Послеродовые инфекции матки. В кн.: Youngquist RS, Threlfall WR (ред.) Современные методы лечения в териогенологии крупных животных, 2-е изд. Филадельфия: WB Saunders, 2007, с. 339–344.

3. Cohen R, Bernstein M, Ziv G. Выделение бактерий и чувствительность к противомикробным препаратам Actinomyces pyogenes, выделенных из матки молочных коров с задержанием плодных оболочек и послеродовым эндометритом. Theriogenology 1995;43:1389–1397.

4. Frazer G. Гормональная терапия коров в период с 1-го по 10-й день после отёла. Факт или вымысел? В кн.: Материалы ежегодного собрания Общества териогенологии, 2001, с. 161–183.

5. Burton M, Dziuk H, Fahning M, Zemjanis R. Влияние эстрадиола ципионата на спонтанную и стимулированную окситоцином сократительную активность миометрия у коров после отёла. Br Vet J 1990;146:309–315.

6. Overton M, Sischo W, Reynolds J. Оценка эффекта профилактического введения эстрадиола ципионата молочным коровам после отёла с высоким риском метрита. J Am Vet Med Assoc 2003;223:846–851.

7. Olson J, Bretzlaff K, Mortimer R, Ball L. Комплекс «метрит — пиометра». В кн.: Morrow DA (ред.) Современные методы лечения в териогенологии, 2-е изд. Филадельфия: WB Saunders, 1986, с. 227–236.

8. Peters A, Laven R. Лечение задержания последа у коров и его последствия. Vet Rec 1996;139:535–539.

9. Kasimanickam R, Cornwell J, Nebel R. Влияние наличия клинического и субклинического эндометрита на момент начала программы Presynch–Ovsynch на наступление стельности после первого осеменения у молочных коров. Anim Reprod Sci 2006;95:214–223.

10. Hendricks K, Bartolome J, Melendez P, Risco C, Archbald L. Влияние повторного введения PGF2α в ранний послеродовой

период на распространённость клинического эндометрита и вероятность наступления стельности после первого осеменения у лактирующих молочных коров. Theriogenology 2006;65:1454–1464.

1. Kasimanickam R, Duffield T, Foster R и др. Влияние однократного введения цефапирина или клопростенола на воспроизводительные показатели молочных коров с субклиническим эндометритом. Theriogenology 2005;63:818–830.

2. Sheldon I, Noakes D. Сравнение трёх методов лечения эндометрита у коров. Vet Rec 1998;142:575–591.

3. LeBlanc S, Duffield T, Leslie K и др. Влияние лечения клинического эндометрита на воспроизводительные показатели молочных коров. J Dairy Sci 2002;85:2237–2249.

4. Dubuc J, Duffield T, Leslie K, Walton J, LeBlanc S. Рандомизированное клиническое исследование применения антибиотиков и простагландинов для улучшения состояния матки и репродуктивных показателей молочных коров. J Dairy Sci 2011;94:1325–1338.

5. Galvão K, Frajblat M, Brittin S, Butler W, Guard C, Gilbert R. Влияние простагландина F2α на субклинический эндометрит и фертильность молочных коров. J Dairy Sci 2009;92:4906–4913.

6. Black W, MacKay A, Doig P, Claxton M. Исследование остатков лекарственных препаратов в молоке после внутриматочного введения антибактериальных средств лактирующим коровам. Can Vet J 1979;20:354–357.

7. Gilbert R, Schwark W. Фармакологические аспекты лечения заболеваний у коров в околородовой период. Vet Clin North Am Food Anim Pract 1992;8:29–56.

8. Dohoo I. Ретроспективная оценка внутриматочных введений препаратов после осеменения у молочного крупного рогатого скота. Can J Comp Med 1984;48:6–9.

9. Galvão K, Greco L, Vilela J, Sá Filho M, Santos J. Влияние внутриматочного введения цефтиофура на состояние матки и фертильность молочных коров. J Dairy Sci 2009;92:1532–1542.

10. Gustafsson B, Ott R. Современные тенденции в лечении инфекций половых органов у крупных животных. Comp Cont Educ Pract Vet 1981; 3:S147–S151.