Воспроизводство крупного рогатого скота

1. Noakes D, Wallace L, Smith G. Бактериальная флора матки коров после отёла на двух фермах с различными санитарно-гигиеническими условиями. Vet Rec 1991;128:440–442.

2. Herath S, Dobson H, Bryant C, Sheldon I. Использование коровы в качестве модели крупного животного для изучения инфекции матки и иммунитета. J Reprod Immunol 2006;69:13–22.

3. Lewis G. Проблемы со здоровьем у коров после отёла: состояние матки и её заболевания. J Dairy Sci 1997;80:984–994.

4. Sheldon I, Rycroft A, Zhou C. Связь между повышением температуры после отёла и бактериальной инфекцией матки у молочного крупного рогатого скота. Vet Rec 2004;154:289–293.

5. Noakes D, Parkinson T, England G, Arthur G. Ветеринарное акушерство и репродукция по Артуру , 8-е изд. Elsevier Science, 2002, с. 399–408.

6. Sheldon I, Cronin J, Goetze L, Donofrio G, Schuberth H. Определение послеродовых заболеваний матки и механизмы инфекции и иммунитета в половых путях самок крупного рогатого скота. Biol Reprod 2009;81:1025–1032.

7. Santos T, Gilbert R, Bicalho R. Метагеномный анализ бактериальной микробиоты матки у здоровых молочных коров после отёла и у коров с метритом. J Dairy Sci 2011;94:291–302.

8. Dohmen M, Joop K, Sturk A, Bols P, Lohuis J. Связь между бактериальным загрязнением матки, уровнем эндотоксинов и развитием эндометрита у коров после отёла при затруднённых родах или задержании последа. Theriogenology 2000;54:1019–1032.

9. Gilbert R, Santos N, Galvão K, Brittin S, Roman H. Связь между бактериями в матке после отёла и субклиническим эндометритом. J Dairy Sci 2007;90(прил. 1):469 (аннотация).

10. Williams E, Fischer D, Noakes D и др. . Связь между интенсивностью роста патогенных микроорганизмов в матке и функцией яичников у молочных коров после отёла. Theriogenology 2007;68:549–559.

11. Bicalho R, Machado V, Bicalho M и др. . Молекулярная и эпидемиологическая характеристика выделенной из матки крупного рогатого скота Escherichia coli . J Dairy Sci 2010;93:5818–5830.

12. Hill J, Gilbert R. Снижение качества эмбрионов крупного рогатого скота при культивировании в средах, предварительно контактировавших с воспалённым эндометрием. Aust Vet J 2008;86:312–316.

13. Peter A, Bosu W. Влияние внутриматочной инфекции на функцию жёлтых тел, сформировавшихся после первых овуляций у молочных коров после отёла. Theriogenology 1987;27:593–609.

14. Peter A, Bosu W. Связь инфекций матки с фолликулогенезом у молочных коров в ранний послеродовой период. Theriogenology 1988;30:1045–1051.

15. Sheldon I, Noakes D, Rycroft A, Pfeiffer D, Dobson H. Влияние бактериальной контаминации матки после отёла на отбор доминантного фолликула, рост и функцию фолликулов у крупного рогатого скота. Reproduction 2002;123:837–845.

16. Mateus L, Lopes da Costa L, Bernardo F, Robalo Silva J. Влияние инфекции матки в послеродовой период на инволюцию матки и активность яичников после отёла у молочных коров. Reprod Domest Anim 2002;37:31–35.

17. Sheldon I, Lewis G, LeBlanc S, Gilbert R. Определение заболеваний матки у крупного рогатого скота после отёла. Theriogenology 2006;65:1516–1530.

18. Chenault J, McAllister J, Chester T, Dame K. Эффективность парентерального введения стерильной суспензии цефтиофура гидрохлорида при лечении острого послеродового метрита у молочных коров. J Am Vet Med Assoc 2004;224:1634–1639.

19. Melendez P, McHale J, Bartolome J, Archbald L, Donovan G. Инволюция матки и фертильность голштинских коров после лечения PGF2α в ранний послеродовой период по поводу острого послеродового метрита J Dairy Sci 2004;87:3238–3246.

20. Østergaard S, Gröhn Y. Влияние заболеваний на суточный удой в контрольный день и массу тела молочных коров из датских исследовательских стад. J Dairy Sci 1999;82:1188–1201.

21. Wittrock J, Proudfoot K, Weary D, von Keyserlingk M. Метрит по-разному влияет на молочную продуктивность и долю выбраковки голштинских молочных коров после нескольких и после первого отёла. J Dairy Sci 2011;94: 2408–2412.

22. Sheldon I, Williams E, Miller A, Nash D, Herath S. Заболевания матки у крупного рогатого скота после отёла. Vet J 2008;176:115–121.

23. BonDurant R. Воспаление репродуктивного тракта крупного рогатого скота. J Dairy Sci 1999;82(прил. 2):101–110.

24. LeBlanc S, Duffield T, Leslie K и др. . Определение и диагностика послеродового клинического эндометрита и его влияние на воспроизводительные показатели молочных коров. J Dairy Sci 2002;85:2223–2236.

25. Ott R, Gustafsson B. Применение простагландинов для лечения пиометры и послеродовых инфекций у крупного рогатого скота: обзор. Comp Cont Educ Pract Vet 1981;3:S184–S187.

26. Manns J, Nkuuhe J, Bristol F. Концентрации простагландинов в маточной жидкости коров с пиометрой. Can J Comp Med 1985;49: 436–438.

27. Noakes D, Wallace L, Smith G. Пиометра у тёлки фризской породы: бактериологические изменения и изменения эндометрия. Vet Rec 1990;126:509.

28. Mortimer R, Farin P, Stevens R. Исследование репродуктивной системы нестельной коровы. В кн.: Youngquist RS (ред.) Современная терапия в териогенологии крупных животных . Филадельфия: WB Saunders, 1997, с. 268–275.

29. Williams E, Fischer D, Pfeiffer D и др. . Клиническая оценка влагалищной слизи после отёла отражает бактериальную инфекцию матки и иммунный ответ у крупного рогатого скота. Theriogenology 2005;63: 102–117.

30. Sheldon I, Noakes D, Rycroft A, Dobson H. Влияние ручного исследования влагалища после отёла на бактериальную контаминацию у коров. Vet Rec 2002;15:531–534.

31. MacDougall S, Macaulay R, Compton C. Связь между диагностикой эндометрита с помощью нового интравагинального устройства и воспроизводительными показателями молочного крупного рогатого скота. Anim Reprod Sci 2007;99:9–23.

32. Gilbert R, Shin S, Guard C, Erb H, Frajblat M. Распространённость эндометрита и его влияние на воспроизводительные показатели молочных коров. Theriogenology 2005;64:1879–1888.

33. Kasimanickam R, Duffield T, Foster R и др. Сравнение методов цитощётки и промывания матки для оценки цитологии эндометрия у клинически здоровых молочных коров после отёла. Can Vet J 2005;46:255–259.

34. Barlund C, Carruthers T, Waldner C, Palmer C. Сравнение методов диагностики послеродового эндометрита у молочных коров. Theriogenology 2008;69:1516–1530.

35. Kasimanickam R, Duffield T, Foster R и др. Цитологическое исследование эндометрия и ультразвуковое исследование для выявления субклинического эндометрита у молочных коров после отёла. Theriogenology 2004;62:9–23.

36. Ghasemi F, Gonzalez-Cano P, Griebel P, Palmer C. Экспрессия генов провоспалительных цитокинов в образцах эндометрия, взятых с помощью цитощётки у коров с субклиническим эндометритом и без него. Theriogenology 2012;78:1538–1547.

37. Machado V, Knauer W, Bicalho M, Oikonomou G, Gilbert R, Bicalho R. Новый метод диагностики состояния матки у коров голштинской породы через 35 дней после отёла. J Dairy Sci 2012;95:1349–1357.

38. Pugh D, Lowder M, Wenzel, J. Ретроспективный анализ ведения 78 случаев послеродового метрита у коров. Theriogenology 1994;42:455–463.

39. Smith B, Risco C. Возможности лечения и ведения молочных коров с послеродовым метритом. Comp Cont Educ Pract Vet 2002;24:S92–S100.

40. Paisley L, Micklesen W, Anderson P. Механизмы задержания плодных оболочек и инфекций матки у коров и их лечение: обзор. Theriogenology 1986;25:353–381.

41. Okker H, Schmitt E, Vos P, Scherpenisse P, Bergwerff A, Jonker F. Фармакокинетика цефтиофура в плазме крови, маточных выделениях и тканях матки после подкожного введения молочным коровам в послеродовой период. J Vet Pharmacol Ther 2002;25:33–38.

42. Bretzlaff K, Ott R, Koritz G, Bevill R, Gustafsson B, Davis L. Распределение окситетрациклина в тканях половых путей коров после отёла при внутривенном и внутриматочном введении препарата. Am J Vet Res 1983;44:764–769.

1. Nakao T, Moriyoshi M, Kawata K. Влияние послеродовой внутриматочной обработки раствором поливинилпирролидон-йода концентрации 2% на воспроизводительную эффективность коров. Theriogenology 1988;30:1033–1043.

2. Risco C, Youngquist R, Shore M. Послеродовые инфекции матки. В кн.: Youngquist RS, Threlfall WR (ред.) Современные методы лечения в териогенологии крупных животных, 2-е изд. Филадельфия: WB Saunders, 2007, с. 339–344.

3. Cohen R, Bernstein M, Ziv G. Выделение бактерий и чувствительность к противомикробным препаратам Actinomyces pyogenes, выделенных из матки молочных коров с задержанием плодных оболочек и послеродовым эндометритом. Theriogenology 1995;43:1389–1397.

4. Frazer G. Гормональная терапия коров в период с 1-го по 10-й день после отёла. Факт или вымысел? В кн.: Материалы ежегодного собрания Общества териогенологии, 2001, с. 161–183.

5. Burton M, Dziuk H, Fahning M, Zemjanis R. Влияние эстрадиола ципионата на спонтанную и стимулированную окситоцином сократительную активность миометрия у коров после отёла. Br Vet J 1990;146:309–315.

6. Overton M, Sischo W, Reynolds J. Оценка эффекта профилактического введения эстрадиола ципионата молочным коровам после отёла с высоким риском метрита. J Am Vet Med Assoc 2003;223:846–851.

7. Olson J, Bretzlaff K, Mortimer R, Ball L. Комплекс «метрит — пиометра». В кн.: Morrow DA (ред.) Современные методы лечения в териогенологии, 2-е изд. Филадельфия: WB Saunders, 1986, с. 227–236.

8. Peters A, Laven R. Лечение задержания последа у коров и его последствия. Vet Rec 1996;139:535–539.

9. Kasimanickam R, Cornwell J, Nebel R. Влияние наличия клинического и субклинического эндометрита на момент начала программы Presynch–Ovsynch на наступление стельности после первого осеменения у молочных коров. Anim Reprod Sci 2006;95:214–223.

10. Hendricks K, Bartolome J, Melendez P, Risco C, Archbald L. Влияние повторного введения PGF2α в ранний послеродовой

период на распространённость клинического эндометрита и вероятность наступления стельности после первого осеменения у лактирующих молочных коров. Theriogenology 2006;65:1454–1464.

1. Kasimanickam R, Duffield T, Foster R и др. Влияние однократного введения цефапирина или клопростенола на воспроизводительные показатели молочных коров с субклиническим эндометритом. Theriogenology 2005;63:818–830.

2. Sheldon I, Noakes D. Сравнение трёх методов лечения эндометрита у коров. Vet Rec 1998;142:575–591.

3. LeBlanc S, Duffield T, Leslie K и др. Влияние лечения клинического эндометрита на воспроизводительные показатели молочных коров. J Dairy Sci 2002;85:2237–2249.

4. Dubuc J, Duffield T, Leslie K, Walton J, LeBlanc S. Рандомизированное клиническое исследование применения антибиотиков и простагландинов для улучшения состояния матки и репродуктивных показателей молочных коров. J Dairy Sci 2011;94:1325–1338.

5. Galvão K, Frajblat M, Brittin S, Butler W, Guard C, Gilbert R. Влияние простагландина F2α на субклинический эндометрит и фертильность молочных коров. J Dairy Sci 2009;92:4906–4913.

6. Black W, MacKay A, Doig P, Claxton M. Исследование остатков лекарственных препаратов в молоке после внутриматочного введения антибактериальных средств лактирующим коровам. Can Vet J 1979;20:354–357.

7. Gilbert R, Schwark W. Фармакологические аспекты лечения заболеваний у коров в околородовой период. Vet Clin North Am Food Anim Pract 1992;8:29–56.

8. Dohoo I. Ретроспективная оценка внутриматочных введений препаратов после осеменения у молочного крупного рогатого скота. Can J Comp Med 1984;48:6–9.

9. Galvão K, Greco L, Vilela J, Sá Filho M, Santos J. Влияние внутриматочного введения цефтиофура на состояние матки и фертильность молочных коров. J Dairy Sci 2009;92:1532–1542.

10. Gustafsson B, Ott R. Современные тенденции в лечении инфекций половых органов у крупных животных. Comp Cont Educ Pract Vet 1981; 3:S147–S151.

Овариальные кисты

Jack D. Smith

Кафедра патобиологии и популяционной медицины, Колледж ветеринарной медицины Университета штата Миссисипи, Старквилл, штат Миссисипи, США

Введение

Кистозные фолликулы яичников (COF) были признаны частой причиной субфертильности и снижения эффективности воспроизводства крупного рогатого скота на протяжении более 100 лет. Отмечено, что это состояние ановуляции встречается у ряда видов млекопитающих. Это заболевание крупного рогатого скота приводит к серьезным экономическим потерям во всем мире, в первую очередь для молочной промышленности, но его экономические последствия наблюдаются и в некоторых секторах мясной промышленности. Основными причинами экономических потерь являются увеличение числа открытых дней (сервис-периода) в послеродовом периоде, что приводит к увеличению интервалов между отелами, затратам на лекарства на лечение, увеличению затрат на сперму из-за увеличения количества осеменений в расчете на одну стельность, и к более высокому уровню выбраковки пораженных животных.^1,2 Было показано, что дойным коровам с COF требуется до первого осеменения на 6–11 дней больше и до оплодотворения на 20–30 дней больше, чем контрольным.³

Терминология

Были использованы многочисленные термины и определения для описания ановуляторного состояния крупного рогатого скота, которое чаще всего называют кистозной болезнью яичников (COD). Термины, которые использовались в прошлом для описания одного и того же клинического состояния, включают в себя надпочечниковую вирилизацию, нимфоманию, кисты яичников, кистозную дегенерацию яичников и кистозные яичники.² Классическим определением, предложенным Робертсом,⁴ было наличие на яичнике ановуляторной структуры диаметром более 2,5 см, который сохраняется в течение не менее 10 дней при отсутствии желтого тела (ЖТ). Некоторые варианты предыдущих определений относительно произвольны и не отражают наше текущее понимание этого заболевания. У коров обычно овулирует доминирующий фолликул при среднем диаметре 1,6–1,9 см. Использование ограничения размера 2,5 см, таким образом, исключает из внимания все кистозные фолликулы, которые меньше, чем этот произвольный размер.⁵ Кроме того, во многих предыдущих определениях указывалось требование, чтобы кистозная структура присутствовала не менее 10 дней. Это требование также следует поставить под сомнение, поскольку теперь известно, что эти структуры являются динамическими и могут значительно измениться за этот период и даже быть заменены новыми кистозными структурами.

Кроме того, существующие системы управления часто не позволяют пересматривать корову, чтобы определить 10-дневную персистенцию кисты. В более старых определениях также требовалось отсутствие ЖТ. Необходимость в отсутствии ЖТ также не является универсальной, поскольку практика ясно показывает, что некоторые кисты не являются стероидогенными и, следовательно, гормонально неактивны и не обязательно влияют на эстральный цикл. Такие кистозные структуры могут быть обнаружены в присутствии ЖТ.

Более поздний термин, предложенный Vanholder и соавт.⁵ для более точного определения и описания этого ановуляторного состояния у коров и его влияния на репродукцию, называется «кистозные фолликулы яичника» (COF). COF определяется как наличие фолликула(ов) с диаметром не менее 20 мм, присутствующего на одном или обоих яичниках в отсутствие какой-либо активной лютеиновой ткани, который явно нарушает нормальную цикличность яичников.

Дальнейшая подклассификация состояния COF на фолликулярную или лютеиновую кисту основана на степени лютеинизации и уровнях прогестерона в крови или молоке. Фолликулярные кисты обычно представляют собой тонкостенные структуры, которые выделяют различные количества эстрадиола. Толщина слоев гранулезных клеток диктует количество эстрадиола, присутствующего во внутрифолликулярной жидкости. Оба типа кисты считаются различными формами одного и того же состояния, причем лютеиновые кисты представляют собой фолликулярную кисту, в которой клетки теки и гранулезы претерпели некоторую лютеинизацию и продуцируют прогестерон.² Фолликулярные кисты не секретируют прогестерон, тогда как лютеиновые кисты выделяют различные количества прогестерона в зависимости от степени лютеинизации. Однако, определение порогового уровня прогестерона, который можно было бы использовать для разграничения фолликулярных кист от лютеиновых, не проводилось в

исследованиях этого состояния.⁵ Таким образом, классификация каждой кисты как фолликулярной или лютеиноой остается предметом личной интерпретации по результатам клинического исследования и изучения анамнеза в дополнение к результатам ультразвукового исследования яичников и уровням прогестерона в сыворотке.

Распространенность заболевания

Частота возникновения COF у коров сильно зависит от их продуктивной направленности и соответствующей системы управления. Заболеваемость COF намного выше у молочных коров по сравнению с мясным скотом и молочными телками, заболеваемость среди которых относительно низкая.