Воспроизводство крупного рогатого скота

Овсинх/ИО по времени/ИО по времениИО по времени

Пресинхронизация Овсинх/ИО по времени/ИО по времениИО по времени
A. Протоколы Овсинх с прогестероном или без него
GnRH PGF GnRH ИО
A1 7 дней 2 дня 16–20 часов
GnRH PGF GnRH TAI
A2 7 дней 2 дня 16–20 часов
IVPD*

B. Предварительная синхронизация с ГнРГ + ПГФ, без прогестерона

GnRH PGF GnRH PGF GnRH TAI
B1 7 дней 7 дней 11 дней 7 дней 56 часов 16–20 часов
U/S U/S
PGF GnRH PGF GnRH TAI
B2
2 дня 7 дней 2 дня 16–20 часов

GnRH PGF GnRH TAI
C1
7 дней 7 дней 11 дней 7 дней 56 часов 16–20 часов
IVPD
U/S U/S
PGF PGF GnRH PGF GnRH TAI
C2
7 дней 7 дней 12 дней 7 дней 2 дня 16–20 часов
IVPD
U/S U/S

Рисунок 52.7 Протоколы фиксированного по времени осеменения (TAI) для анэстральных молочных коров. Протокол A1 является стандартным протоколом Овсинх.⁹⁶ A2 - это модифицированный протокол Овсинх, который включает интравагинальное устройство с прогестероном (IVPD) в течение первых 7-ми дней, когда устройство вводят при инъекции ГнРГ (GnRH) и удаляют при введении ПГФ2α (PGF). Протоколы B1 и B2 включают в себя этап предварительной синхронизации с ГнРГ и ПГФ; в B1 предварительная синхронизация ГнРГ и ПГФ в указанном порядке дается с интервалом в 7 дней, а протокол Овсинх начинается через 11 дней.⁸² В B2 ПГФ вводится за 2 дня до инициирования протокола Овсинх (Дабл-синх);¹⁰¹ по этому протоколу было получено 72% стельностей (18 из 25 анэстральных коров стали стельными), и авторы предположили, что предварительная обработка ПГФ могла увеличить выброс ЛГ в ответ на ГнРГ, что привело к более высокому проценту овуляций и стельностей. Для получения более подробной информации см. Öztürk и соавт.¹⁰¹ Протокол C1 включает в себя введение IVPD на 7 дней с последующим инициированием протокола Овсинх через 11 дней.⁸² Протокол C2¹⁰⁰ идентичен C1, за исключением того, что две инъекции ПГФ делаются с интервалом в 14 дней с IVPD, введенным через 7 дней после первой инъекции ПГФ; протокол Овсинх запускается через 12 дней. Хотя только протоколы B1, C1 и C2 предусматривают УЗИ (U/S), я рекомендую использовать УЗИ (дважды, с интервалом 7–14 дней) для оценки цикличности у коров до назначения любого из этих протоколов. Кроме того, использование УЗИ для подтверждения овуляции после первой инъекции ГнРГ по протоколу Овсинх у анэстральных коров будет иметь большое значение, поскольку анэстральные коровы, которые не способны овулировать в ответ на первую инъекцию ГнРГ, редко становятся стельными.⁹⁹

Таблица 52.3 Оплодотворяемость по схеме Овсинх/ИО по времени у анэстральных и циклирующих молочных коров, с или без введения интравагинального устройства с прогестероном (IVPD) в течение первых 7 дней протокола.

a,b - данные без общего верхнего индекса в строке рознятся(P <0,05). n/a - не применимо; циклирующие коровы не получали IVPD в этом исследовании.

Таблица 52.4 Реакции яичников на лечение ГнРГ, основанные на УЗИ, и процент стельных по схеме Овсинх среди коров с кистозными фолликулами яичников в двух исследованиях.

a Некоторые из меньших кистозных фолликулов (диапазон диаметра 25–30 мм) овулировали. b Только 17 коров были доступны для диагностики стельности.

Лошадиный хорионический гонадотропин

Новые данные^105,106 показали, что включение ЛХГ в протокол на основе прогестерона при лечении анэстральных коров является эффективным. У анэстральных коров, обработанных ГнРГ с введением на 6-7 дней внутривлагалищного устройства с прогестероном, которое извлекали при инъекции ПГФ2α и вводили еще 400 МЕ ЛХГ, оплодотворяемость по 1-му осеменению увеличилась на 5,4 процентов.¹⁰⁵ Необходимы дополнительные исследования, чтобы подтвердить эти выводы.

Пост-осеменительные процедуры

Из-за более высокого риска потери стельности у анэстральных молочных коров были предприняты попытки вмешательства после осеменения, направленные на повышение концентрации прогестерона на ранних стадиях эмбрионального развития. Введение PRID в течение 7 дней, начиная с 4,5 дня после ИО, у анэстральных молочных коров значительно сократило эмбриональные потери (5,6% против 33,3%) по сравнению с анэстральными коровами, которые не получали PRID после ИО,⁹⁹ хотя разница только имела тенденцию быть существенной (P = 0,10).

В другом исследовании, введение ГнРГ через 5 дней после синхронизированного ИО, увеличило оплодотворяемость у анэстральных молочных коров (45,5 против 31,1%) по сравнению с циклическими коровами.¹⁰⁷

Подытог

Лежащие в основе послеродового анэструса у молочного скота причины часто бывают многофакторными, но основным фактором является отрицательный энергетический баланс. Чтобы максимизировать эффективность воспроизводства, коров, которые считаются подверженными более высокому риску анэструса, следует выявить на ранних стадиях и принимать меры для увеличения потребления ими сухого вещества. Оценка состояния яичников с помощью ультрасонографии представляет большую диагностическую ценность. Повышение эффективности выявления охоты значительно уменьшит уровень анэструса из-за сокращения пропусков животных в охоте. Если в качестве меры управления анэструсом выбрано терапевтическое вмешательство, наилучшим вариантом является протокол Овсинх с прогестероном или протокол предварительной синхронизации на основе прогестерона, за которым следует Овсинх/ ИО по времени. Лечение анэстральных коров экономически более эффективно, чем отсутствие лечения.

Ссылки

1. Thatcher W, Wilcox C. Послеродовая течка как показатель репродуктивного состояния молочной коровы. J Dairy Sci 1973;56:608–610.

2. Kawashima C, Kaneko E, Amaya Montoya C и др. Связь первой овуляции в течение трёх недель после отёла с последующими овариальными циклами и фертильностью высокопродуктивных молочных коров. J Reprod Dev 2006;52:479–486.

3. Gautam G, Nakao T, Yamad K, Yoshida C. Определение задержки возобновления активности яичников после отёла и её влияния на последующие показатели воспроизводства у коров голштинской породы. Theriogenology 2010;73:180–189.

4. Kim I, Jeong J, Kang H. Полевое исследование связи формирования жёлтого тела в послеродовые недели 3–5 с последующими показателями воспроизводства молочных коров. J Reprod Dev 2012;58:552–556.

5. Short R, Bellows R, Staigmiller R, Berardinelli J, Custer E. Физиологические механизмы, определяющие анэструс и бесплодие после отёла у мясного крупного рогатого скота. J Anim Sci 1990;68:799–816.

6. Hammond J. Физиология размножения коровы. University Press, Кембридж, 1927. Цит. по: Short R, Bellows R, Staigmiller R, Berardinelli J, Custer E. Физиологические механизмы, определяющие анэструс и бесплодие после отёла у мясного крупного рогатого скота. J Anim Sci 1990;68:799–816.

7. Hansen P. Сезонная регуляция полового созревания и послеродового анэструса у крупного рогатого скота: обзор. Livestock Prod Sci 1985;12:309–327.

8. Opsomer G, Mijten P, Coryn M, de Kruif A. Послеродовой анэструс у молочных коров: обзор. Vet Quart 1996;18:68–75.

9. Mihm M. Задержка возобновления половой цикличности после отёла у молочных и мясных коров. Reprod Domest Anim 1999;34:277–284.

10. Mwaanga E, Janowski T. Анэструс у молочных коров: причины, распространённость и клинические формы. Reprod Domest Anim 2000;35:193–200.

11. Butler W. Связь энергетического баланса с развитием фолликулов, овуляцией и фертильностью у молочных коров после отёла. Livestock Prod Sci 2003;83:211–218.

12. Crowe M. Возобновление овариальной цикличности после отёла у мясных и молочных коров. Reprod Domest Anim 2008;43(доп. 5):20–28.

13. Peter A, Vos P, Ambrose D. Послеродовой анэструс у молочного крупного рогатого скота. Theriogenology 2009;71:1333–1342.

1. Macmillan K, Lean I, Westwood C. Влияние лактации на фертильность молочных коров. Aust Vet J 1996;73:141–147.

2. Royal M, Darwash A, Flint A, Webb R, Woolliams J, Lamming G. Снижение фертильности молочного скота: изменения традиционных и эндокринных показателей фертильности. Anim Sci 2000;70:487–501.

3. Lucy M. Репродуктивные потери у высокопродуктивного молочного скота: где предел? J Dairy Sci 2001;84:1277–1293.

4. Westwood C, Lean J, Garvin J. Факторы, влияющие на фертильность голштинских коров: многомерный анализ. J Dairy Sci 2002;85:3225–3237.

5. López-Gatius F. Снижается ли фертильность молочного скота? Ретроспективное исследование на северо-востоке Испании. Theriogenology 2003;60:89–99.

6. Ahlman T, Berglund B, Rydhmer L, Strandberg E. Причины выбраковки в органических и традиционных молочных стадах и взаимодействие генотипа со средой в отношении продолжительности продуктивной жизни. J Dairy Sci 2011;94:1568–1575.

7. CanWest DHI. 2011 Отчёт об улучшении стад в западном регионе. CanWest DHI 2012, с. 30.

8. Национальная система мониторинга здоровья животных. Молочное скотоводство 2007. Часть I. Справочные данные о состоянии здоровья молочного скота и методах управления стадом в Соединённых Штатах, 2007 . Форт-Коллинз, Колорадо: USDA, 2007.

9. Rajala-Schultz P, Gröhn Y. Выбраковка молочных коров. Часть II. Влияние заболеваний и репродуктивных показателей на выбраковку коров айрширской породы в Финляндии. Prev Vet Med 1999;41:279–294.

10. Francos G, Mayer E. Анализ показателей фертильности коров с длительным послеродовым анэструсом и другими репродуктивными нарушениями в сравнении с коровами без таких нарушений. Theriogenology 1988;29:399–412.

11. Darwash A, Lamming G, Woolliams J. Фенотипическая связь между сроком наступления послеродовой овуляции и традиционными показателями фертильности молочного скота. Anim Reprod Sci 1997;65:9–16.

12. Stevenson J, Pursley J, Garverick H и др. . Применение прогестерона в ходе протокола Ovsynch у лактирующих молочных коров с циклической активностью яичников и без неё. J Dairy Sci 2006;89:2567–2578.

13. Ambrose D, Kastelic J, Corbett R и др. . Снижение потерь беременности у лактирующих молочных коров при кормлении рационом, обогащённым α-линоленовой кислотой. J Dairy Sci 2006;89:3066–3079.

14. Walsh R, Kelton D, Duffield T, Leslie K, Walton J, LeBlanc S. Распространённость и факторы риска послеродовой ановуляции у молочных коров. J Dairy Sci 2007;90:315–324.

15. Ambrose D, Colazo M. Репродуктивное состояние молочных стад в Альберте: более подробный анализ. В: Достижения в технологии молочного производства: материалы Западноканадского семинара по молочному скотоводству , 2007, с. 227–244. Доступно по адресу http://www.wcds.ca/proc/2007/Manuscripts/Divakar.pdf

16. Nett T. Функция гипоталамо-гипофизарной системы в послеродовой период у овец и коров. J Reprod Fertil Suppl 1987;34:201–213.

17. Crowe M, Padmanabhan V, Mihm M, Beitins Z, Roche F. Возобновление волн роста фолликулов у мясных коров не связано с перипартальными изменениями неоднородности фолликулостимулирующего гормона, несмотря на значительные изменения концентраций стероидов и лютеинизирующего гормона. Biol Reprod 1998;58:1445–1450.

18. Mann G, Lamming G. Связь между эндокринным состоянием материнского организма, ранним развитием эмбриона и подавлением механизма лютеолиза у коров. Reproduction 2001;121:175–180.

19. Patel O, Takenouchi N, Takahashi T, Hirako M, Sasaki N, Domeki I. Концентрации эстрона и эстрадиола в плазме на протяжении беременности у крупного рогатого скота: связь со стадией беременности и числом плодов. Res Vet Sci 1999;66:129–133.

20. Ginther O, Kot K, Kulick L, Martin S, Wiltbank M. Связь между FSH и волнами роста фолликулов в яичниках в течение последних шести месяцев беременности у крупного рогатого скота. J Reprod Fertil 1996;108:271–278.

21. Savio J, Thatcher W, Badinga L, De la Sota R, Wolfeusun D. Регуляция смены доминантных фолликулов в течение эстрального цикла у коров. J Reprod Fertil 1993;97:197–203.

22. Gong J, Campbell B, Bramley T, Gutierrez C, Peters A, Webb R. Подавление секреции фолликулостимулирующего и лютеинизирующего гормонов и развития фолликулов в яичниках у тёлок при непрерывной инфузии агониста гонадотропин-рилизинг-гормона. Biol Reprod 1996;55:68–74.

23. Sakaguchi M. Проявление течки и повторное наступление анэструса после овуляций в ранний послеродовой период у фертильных молочных коров. Vet Rec 2010;167:446–450.

24. Savio J, Boland M, Hynes N, Roche J. Возобновление фолликулярной активности в ранний послеродовой период у молочных коров. J Reprod Fertil 1990;88:569–579.

25. Beam S, Butler W. Влияние энергетического баланса на развитие фолликулов и первую овуляцию у молочных коров после отёла. J Reprod Fertil 1999;54:411–424.

26. Wiltbank M, Gümen A, Sartori R. Физиологическая классификация ановуляторных состояний у крупного рогатого скота. Theriogenology 2002;57:21–52.

27. Markusfeld O. Неактивные яичники у высокопродуктивных молочных коров до осеменения: этиология и влияние на зачатие. Vet Rec 1987;121:149–153.

28. McDougall S, Burke C, MacMillan K, Williamson N. Характер развития фолликулов в периоды отсутствия овуляции у молочных коров пастбищного содержания после отёла. Res Vet Sci 1995;58: 212–216.

29. Vanholder T, Opsomer G, de Kruif A. Этиология и патогенез кистозных фолликулов яичников у молочного крупного рогатого скота: обзор. Reprod Nutr Dev 2006;46:105–119.

30. Cook D, Parfet J, Smith C, Moss G, Youngquist R, Garverick H. Характер секреции LH и FSH в процессе формирования индуцированных стероидами фолликулярных кист яичников у молочного крупного рогатого скота, а также характеристики гипоталамуса и гипофиза после их формирования. J Reprod Fertil 1991;91:19–28.

31. Ambrose D, Schmitt E, Lopes F, Mattos R, Thatcher W. Реакции яичников и эндокринной системы при лечении кистозных фолликулов яичников у молочных коров гонадотропин-рилизинг-гормоном и простагландином F2α с применением или без применения экзогенного прогестерона. Can Vet J 2004;45:931–937.

32. Opsomer G, Gröhn Y, Hertl J, Coryn M, Deluyker H, de Kruif A. Факторы риска послеродовых нарушений функции яичников у высокопродуктивных молочных коров в Бельгии: полевое исследование. Theriogenology 2000;53:841–857.

33. Williams G. Сосание как фактор, регулирующий возобновление воспроизводства у крупного рогатого скота после отёла: обзор. J Anim Sci 1990;68:831–852.

34. Ducrot C, Gröhn YT, Humblot P, Bugnard F, Sulpice P, Gilbert R. Послеродовой анэструс у мясного крупного рогатого скота во Франции: эпидемиологическое исследование. Theriogenology 1994;42:753–764.

35. Jolly P, McDougall S, Fitzpatrick L, MacMillan K, Entwistle K. Физиологическое влияние недостаточного питания на послеродовой анэструс у коров. J Reprod Fertil Suppl 1995;49:477–492.

36. Stevenson J, Lamb G, Hoffman D, Minton J. Взаимосвязь лактации и послеродового отсутствия овуляции у коров при подсосном содержании телят и при доении. Livestock Prod Sci 1997;50:57–74.

37. Montiel F, Ahuja C. Упитанность и сосание телёнком как факторы, влияющие на продолжительность послеродового анэструса у крупного рогатого скота: обзор. Anim Reprod Sci 2005;85:1–26.

38. Carruthers T, Hafs H. Сосание телёнком и четырёхкратное доение: влияние на овуляцию, эструс и сывороточные концентрации лютеинизирующего гормона, глюкокортикоидов и пролактина у коров голштинской породы после отёла. J Anim Sci 1980;50:919–925.

39. Santos J, Rutigliano H, Sá Filho M. Факторы риска, влияющие на возобновление эстральных циклов после отёла и выживаемость эмбрионов у лактирующих молочных коров. Anim Reprod Sci 2009;110:207–221.

40. Rajala P, Gröhn Y. Частота заболеваний и анализ факторов риска у коров финской айрширской породы. Acta Vet Scand 1998;39:1–13.

41. Kawashima C, Amaya Montoya C, Masuda Y и соавт. . Положительная связь между первой овуляцией после отёла и ростом удоя в начальный период лактации у молочных коров. J Dairy Sci 2007;90:2279–2282.