Воспроизводство крупного рогатого скота

1. Berardinelli J, Joshi P. Влияние введения быков в стадо в разные дни после отёла на возобновление циклической активности яичников у первотёлок мясных пород. J Anim Sci 2005;83:2106–2110.

2. Roelofs J, Soede N, Dieleman S, Voskamp-Harkema W, Kemp B. Непосредственное влияние присутствия быка на динамику концентрации лютеинизирующего гормона в плазме крови молочных коров с послеродовым анэструсом. Theriogenology 2007;68:902–907.

3. Wright I, Rhind S, Smith A, Whyte T. Влияние самок друг на друга в отношении продолжительности послеродового анэструса у коров мясных пород. Anim Prod 1994;59:49–53.

4. Pleasants A, McCall D. Взаимосвязь продолжительности анэструса после отёла, эстральных циклов, частоты зачатия и даты отёла у коров ангусской породы и помесей герефордской и фризской пород, телившихся в течение шести последовательных лет. Anim Prod 1993;56:187–192.

5. Richards M, Wettemann R, Schoenemann H. Алиментарный анэструс у коров мясных пород: изменение массы тела, упитанность, содержание лютеинизирующего гормона в сыворотке крови и активность яичников. J Anim Sci 1989;67:1520–1526.

6. Wright I, Rhind S, Russel A, Whyte T, McBean A, McMillen S. Влияние упитанности, потребления корма и временного отделения телёнка на продолжительность послеродового анэструса и связанные с ним концентрации LH, FSH и пролактина у коров мясных пород. Anim Prod 1987;45:395–402.

7. Moreira F, Orlandi C, Risco C, Mattos R, Lopes F, Thatcher W. Влияние предварительной синхронизации половых циклов и бычьего соматотропина на частоту наступления стельности при искусственном осеменении лактирующих молочных коров в установленное время. J Dairy Sci 2001;84:1646–1659.

8. Kim I, Suh G. Влияние степени снижения упитанности от сухостойного периода до периода непосредственно перед отёлом на последующее изменение упитанности, возникновение послеродовых заболеваний, метаболические показатели и воспроизводительную способность молочных коров голштинской породы. Theriogenology 2003;60:1445–1456.

9. Gümen A, Rastani R, Grummer R, Wiltbank M. Сокращение сухостойного периода и изменение рациона перед отёлом влияют на послеродовую овуляцию и показатели воспроизводства. J Dairy Sci 2005;88: 2401–2411.

10. Overton T. Кормление и содержание молочных коров для более раннего восстановления половой цикличности. В кн.: Материалы конференции по воспроизводству молочного крупного рогатого скота, Сакраменто, Калифорния, 8–9 ноября 2012 г. . Шампейн, Иллинойс: Совет по воспроизводству молочного крупного рогатого скота, 2012, с. 32–40. Доступно по адресу http://www.dcrcouncil.org/resources/ proceedingspresentations/2012-november-8-9,-sacramento,-california.aspx

11. Bauman D, Currie W. Распределение питательных веществ во время беременности и лактации: обзор механизмов, связанных с гомеостазом и гомеорезом. J Dairy Sci 1980;63:1514–1529.

12. Huszenicza G, Fodor M, Gacs M и соавт. . Бактериологическое состояние матки, возобновление циклической активности яичников и плодовитость коров после отёла в крупных молочных стадах. Reprod Domest Anim 1999;34:237–245.

13. Dourey A, Colazo M, Patricio P, Ambrose D. Связь результатов цитологического исследования эндометрия с интервалом до первой овуляции и наступлением стельности у молочных коров после отёла в одном стаде. Res Vet Sci 2011;91:e149–e153.

14. Bulman D, Lamming G. Случаи длительной активности жёлтого тела у нестельных молочных коров. Vet Rec 1977;100:550–552.

15. Kinsel M, Etherington W. Факторы, влияющие на воспроизводительные показатели молочных стад в Онтарио. Theriogenology 1998;50:1221–1238.

16. Hamilton S, Garverick H, Keisler D и др. Характеристика фолликулярных кист яичников и связанных с ними эндокринных профилей у молочных коров. Biol Reprod 1995;53:890–898.

17. Garbarino E, Hernandez J, Shearer J, Risco C, Thatcher W. Влияние хромоты на активность яичников у коров голштинской породы после отёла. J Dairy Sci 2004;87:4123–4131.

18. Peake K, Biggs A, Argo C и др. Влияние хромоты, субклинического мастита и снижения упитанности на воспроизводительные показатели молочных коров. Vet Rec 2011;168:301–306.

19. Smith J, Payne E, Tervit H и др. Влияние сосания телятами на эндокринные изменения, связанные с анэструсом, у молочных коров — однояйцевых близнецов. J Reprod Fert Suppl 1981;30:241–249.

20. Carruthers T, Convey E, Kesner J, Hafs H, Cheng K. Гипоталамо-гипофизарная гонадотропная система у молочных коров после отёла при наличии и отсутствии сосания телятами. J Anim Sci 1980;51:949–957.

21. Lucy M. Фертильность высокопродуктивных молочных коров: причины снижения и меры для её устойчивого повышения. Soc Reprod Fertil Suppl 2007;64:237–254.

22. Kyle S, Callahan C, Allrich R. Влияние прогестерона на проявление половой охоты при первой овуляции после отёла у молочных коров. J Dairy Sci 1992;75:1456–1460.

23. Morrow D, Roberts S, McEntee K, Gray H. Активность яичников и инволюция матки после отёла у молочных коров. J Am Vet Med Assoc 1966;149:1596–1609.

24. Lucy M, Billings H, Butler W и др. Эффективность интравагинального прогестеронового вкладыша и инъекции PGF2α для синхронизации половой охоты и сокращения периода до наступления стельности у мясных коров после отёла, тёлок мясных пород в период полового созревания и тёлок молочных пород. J Anim Sci 2001;79:982–995.

25. Gümen A, Guenther J, Wiltbank M. Размер фолликулов и ответ на протокол Ovsynch по сравнению с выявлением половой охоты у лактирующих молочных коров с отсутствием и наличием овуляции. J Dairy Sci 2003;86:3184–3194.

26. Rajamahendran R, Ambrose D, Burton B. Применение ультразвукового исследования в реальном времени в клинической практике и исследованиях воспроизводства крупного рогатого скота: обзор. Can Vet J 1994;35:563–572.

27. Colazo M, Ambrose D, Kastelic J. Практическое применение трансректального ультразвукового исследования в управлении воспроизводством крупного рогатого скота. В кн.: Wittwer F и др. (ред.) Современные вопросы продуктивности и ветеринарии жвачных животных: XXVI Всемирный конгресс по буиатрии, 14–18 ноября 2010 г., Сантьяго, Чили. Будапешт: Всемирная ассоциация буиатров, 2010, с. 146–156.

28. Yilmazbas-Mecitoglu G, Karakaya E, Keskin A, Alkan A, Okut H, Gümen A. Влияние предварительной синхронизации с помощью гонадотропин-рилизинг-гормона и простагландина F2α либо прогестерона перед применением протокола Ovsynch у молочных коров без половых циклов. J Dairy Sci 2012;95: 7186–7194.

29. Stevenson J, Tenhouse D, Krisher R и др. Выявление отсутствия овуляции с помощью детекторов садок и трансректального ультразвукового исследования перед применением прогестерона в протоколе осеменения в установленное время. J Dairy Sci 2008;91:2901–2915.

30. Mazeris F. DeLaval Herd Navigator®: проактивное управление стадом. В сб.: Материалы Первой Североамериканской конференции по точному управлению молочным стадом, 2010, с. 25–26.

31. Chagas L, Bass J, Blache D и др. Новые взгляды на роль питания и метаболических приоритетов в снижении плодовитости высокопродуктивных молочных коров. J Dairy Sci 2007;90:4022–4032.

32. Gong J, Lee W, Garnsworthy P, Webb R. Влияние обусловленного рационом повышения концентрации инсулина в крови в ранний период после отёла на воспроизводительную функцию молочных коров. Reproduction 2002;123:419–427.

33. Dyck B, Colazo M, Ambrose D, Dyck M, Doepel L. Источник и содержание крахмала в рационах молочных коров после отёла: влияние на метаболиты плазмы крови и репродуктивные процессы. J Dairy Sci 2007;94:4636–4646.

34. Chagas L, Gore P, Meier S, Macdonald K, Verkerk G. Влияние монопропиленгликоля на лютеинизирующий гормон, метаболиты и продолжительность ановуляторного периода после отёла у первотёлок молочных пород. J Dairy Sci 2007;90:1168–1175.

35. Gardner N, Reynolds C, Phipps R, Jones A, Beever D. Влияние различных кормовых добавок в рационе до и после отёла на воспроизводительные показатели молочных коров. В кн.: Фертильность высокопродуктивных молочных коров. Специальное издание Британского общества зоотехнии № 26, 2001, с. 313–321.

36. Colazo M, Hayirli A, Doepel L, Ambrose D. На воспроизводительные показатели молочных коров влияют ограничение кормления перед отёлом и источник жирных кислот в рационе. J Dairy Sci 2009;92:2562–2571.

1. Douglas G, Overton T, Bateman II H, Dann H, Drackley J. Уровень кормления до отёла, независимо от источника энергии в рационе, влияет на обмен веществ в околородовой период и потребление сухого вещества у коров голштинской породы. J Dairy Sci 2006;89:2141–2157.

2. Grimard B, Laumonnier G, Ponsart C и др. Послеродовой субэструс у молочных коров: сравнение лечения простагландином F2α и схемой ГнРГ + простагландин F2α + ГнРГ. В кн.: Фертильность высокопродуктивных молочных коров . Нерегулярное издание Британского общества зоотехнии № 26, 2001, с. 347–352.

3. López-Gatius F, Mirzaei A, Santolaria P и др. Факторы, влияющие на результат специфического лечения различных форм клинической анэструсии у высокопродуктивных молочных коров. Theriogenology 2008;69:1095–1103.

4. Rhodes F, McDougall S, Burke C, Verkerk G, Macmillan K. Лечение коров с продолжительным периодом послеродовой анэструсии. J Dairy Sci 2003;86:1876–1894.

5. Центр ветеринарной медицины. Препарат для регуляции воспроизводства крупного рогатого скота — ципионат эстрадиола (ECP) — запрещён, напоминает отрасли Центр ветеринарной медицины. Бюллетень FDA Veterinarian за ноябрь/декабрь 2005 г., т. XX, № VI. http://www.fda.gov/AnimalVeterinary/NewsEvents/ FDAVeterinarianNewsletter/ucm092836.htm

6. Pursley R, Mee M, Wiltbank M. Синхронизация овуляции у молочных коров с применением PGF2α и ГнРГ. Theriogenology 1995;44:915–923.

7. Moreira F, Risco C, Pires M, Ambrose D, Drost M, Thatcher W. Применение бычьего соматотропина у лактирующих молочных коров при искусственном осеменении в назначенное время. J Dairy Sci 2000;83:1237–1247.

8. Colazo M, Gordon M, Rajamahendran R, Mapletoft R, Ambrose D. Частота наступления беременности после искусственного осеменения в назначенное время у молочных коров, получавших гонадотропин-рилизинг-гормон или свиной лютеинизирующий гормон. Theriogenology 2009;72: 262–270.

9. Colazo M, Dourey A, Rajamahendran R, Ambrose D. Введение прогестерона перед искусственным осеменением в назначенное время повышало

синхронность овуляции и частоту наступления беременности на одно осеменение, а введение после такого осеменения снижало частоту потерь беременности у лактирующих молочных коров. Theriogenology 2013;79:833–841.

1. Cerri R, Rutigliano H, Bruno R, Santos J. Концентрация прогестерона, развитие фолликулов и индукция половой цикличности у молочных коров при использовании интравагинальных прогестеронсодержащих устройств. Anim Reprod Sci 2009;110:56–70.

2. Öztürk Ö, Cirit Ü, Baran A, Ak K. Является ли протокол Doublesynch новой альтернативой для искусственного осеменения в назначенное время у молочных коров с анэструсией? Theriogenology 2010;73:568–576.

3. McDougall S. Влияние лечения молочных коров с анэструсией гонадотропин-рилизинг-гормоном, простагландином и прогестероном. J Dairy Sci 2010;93:1944–1959.

4. McDougall S. Сравнение методов диагностики и анализ затрат и выгод при применении различных методов диагностики и лечения молочных коров с анэструсией. NZ Vet J 2010;58:81–89.

5. Ambrose D, Colazo M. Коровам с диагностированными кистами яичников введение прогестерона не приносит пользы, однако после искусственного осеменения в назначенное время по протоколу на основе ГнРГ беременность у них наступает с нормальной частотой. Reprod Domest Anim 2012;47(доп. 4):424–425.

6. Bryan M, Bo G, Mapletoft R, Emslie F. Применение хорионического гонадотропина лошадей при лечении молочных коров с анэструсией по протоколам с гонадотропин-рилизинг-гормоном и прогестероном продолжительностью 6 или 7 дней. J Dairy Sci 2013;96:122–131.

7. Garcia-Ispierto I, López-Helguera I, Martino A, López-Gatius F. Добавление хорионического гонадотропина лошадей к протоколу синхронизации эструса на основе прогестерона улучшило показатели воспроизводства у высокопродуктивных молочных коров с анэструсией. Reprod Domest Anim 2012;47:752–758.

8. Sterry R, Welle M, Fricke P. Введение гонадотропин-рилизинг-гормона после первого искусственного осеменения в назначенное время повышает фертильность у лактирующих молочных коров с отсутствием половой цикличности. J Dairy Sci 2006;89:4237–4245.

Хирургическое восстановление фертильности

Richard M. Hopper

Кафедра патобиологии и популяционной медицины, Колледж ветеринарной медицины, Университет штата Миссисипи, Старквилл, Миссисипи, США

Введение

Для коров с генетической ценностью или считающихся высоко ценными урогенитальные процедуры обычно проводятся с целью восстановления фертильности. Однако, желание продлить жизнь коровы, чтобы можно было вырастить теленка, завершить лактацию или просто добавить статус до продажи, также часто оправдывает попытки хирургической коррекции. Процедуры, которые будут описаны, могут быть выполнены на стоячем животном с местной анальгезией и седацией.

Исправление травм, возникающих из-за дистоции

Роды, несомненно, являются одним из самых опасных событий в жизни животного, как для матери, так и для потомства. Типичные травмы включают травмы и разрывы матки и каудальной части мочеполовой системы. Разрыв матки, будь то спонтанный или ятрогенный, может быть опасным для жизни. По крайней мере, возникающий в результате фиброз и нарушение структуры промежности, шейки матки и влагалища обычно приводят к бесплодию. Определение серьезности случая и предоставление реалистичного прогноза имеют решающее значение для производителя, так что может быть принято обоснованное решение в пользу лечения вместо выбраковки или даже немедленного спасения.

Исправление разрывов матки

Большинство повреждений матки являются ятрогенными и возникают при попытках родовспоможения в случаях дистоции. За редким исключением они встречаются на дорсальной стороне матки (краниальнее к шейке матки), когда акушер пытается развернуть теленка при ягодичном предлежании или во время принудительного извлечения большого плода. В первом случае исправление является вторичным по отношению к извлечению теленка. Если выполняется кесарево сечение, дефект матки может быть устранен после извлечения теленка. КС почти всегда имеет место в случае разрывов, возникших при отталкивании плода в ягодичном положении. Если теленка все же можно вытащить вагинально после разрыва такого типа или, как во втором случае, когда разрыв происходит во время родов, можно выполнить «слепое» наложение швов через влагалище.

Вначале я рассмотрю, как происходят эти разрывы. В случае разрыва, вызванного приложением «чрезмерной» силы при попытке акушера оттолкнуть теленка, стенка матки, вероятно, была ослаблена некоторым уровнем сдавливающего (ишемического) некроза. Это происходит, когда задняя часть плода в ягодичном положении прижимается в течение нескольких часов к дорсальной стенке матки. Во второй ситуации «сухой» родовой канал, крупный теленок и его принудительное вытягивание в комбинации создают наслоение стенки матки и последующий ее сдвиг. Эти разрывы обычно имеют длину 5–30 см, а некоторые распространяются почти по всей окружности.

Независимо от этиологии разрыва, операция может не потребоваться, если он маленький и дорсальный. Из-за быстрой инволюции матки разрывы меньше ширины кисти, обычно заживают без вмешательства со стороны. Лечение для них может быть ограничено повторными инъекциями окситоцина в течение первых 24–48 часов и курс антибиотиков в течение 7–10 дней. Если разрыв больше, его можно закрыть при помощи наложения шва «слепым» методом.¹

Чтобы выполнить слепое закрытие маточного разрыва одной рукой, сначала проденьте в атравматическую иглу (размер и форма по желанию) 150-миллиметровый кетгут №2 или №3. Удерживая иглу на середине шовной нити (вдвое), сделайте узел на конце (узел 1) и примерно в 25 см от конца (узел 2). Затем введите иглу во влагалище и продвигайте через него, прикрывая острие пальцами, пока не достигнете разрыва. Начинайте закрытие с одного конца раны. После прокалывания стенки матки (около 1 см латеральнее разрыва) пропустите иглу между двойной шовной нитью и зацепите за узел 2 (единственная цель узла 1 - удерживать два свободных конца вместе). Затем закройте разрыв непрерывным швом, пока последний прокол не будет сделан на 1 см латерально к другому концу. Важно затягивать шов с каждым стежком. Затем повторите закрытие в обратном направлении до исходной точки и привяжите к хвостику шовной нити. Инволюция матки покрывает небольшие аппозиционные (накладывающиеся) проблемы. Рекомендуемое лечение включает антибиотики, нестероидные противовоспалительные препараты (НПВП) и окситоцин (рисунки 53.1, 53.2, 53.3 и 53.4). В качестве альтернативы, можно допустить пролапс матки, чтобы облегчить наложение шва. Для выпадения матки шейка матки должна быть полностью раскрыта.