Воспроизводство крупного рогатого скота

1. Timoney J, Gillespie J, Scott F, Barlough J. Род Brucella . В кн.: Микробиология и инфекционные болезни домашних животных Хагана и Брунера , 8-е изд. Нью-Йорк: Cornell University Press, 1988, с. 135–152.

2. Bellaire B, Roop R, Cardelli J. Опсонизированная вирулентная Brucella abortus размножается в некислых фагосомах моноцитов человека, отрицательных по маркерам эндоплазматического ретикулума и положительных по LAMP-1. Infect Immun 2005;73:3702–3710.

3. Arenas G, Staskevich A, Aballay A, Mayorga L. Внутриклеточный транспорт Brucella abortus в макрофагах J774. Infect Immun 2000;68:4255–4263.

4. Abbas AK, Lichtman AHH, Pillai S. Иммунитет к микроорганизмам. В кн.: Клеточная и молекулярная иммунология , 7-е изд. Филадельфия: Elsevier Saunders, 2012, с. 345–365.

5. Barquero-Calvo E, Chaves-Olarte E, Weiss D и др. Brucella abortus использует скрытную стратегию, позволяющую избежать активации врождённой иммунной системы на начальном этапе инфекции. PLoS One 2007;2:e631.

6. Duhon LE. Оценка предполагаемого гемагглютинина Brucella in vitro и in vivo . Диссертация, Louisiana State University, 2010.

7. Forestier C, Deleuil F, Lapaque N, Moreno E, Gorvel J. Brucella abortus: её липополисахарид в перитонеальных макрофагах мышей подавляет активацию Т-клеток. J Immunol 2000;165:5202–5210.

8. Araya L, Elzer P, Rowe G, Enright F, Winter A. Динамика формирования защитного клеточного и гуморального иммунитета у мышей BALB/c, инфицированных Brucella abortus . J Immunol 1989;143:3330–3337.

9. Baldwin CL, Winter AJ. Макрофаги и Brucell a. Immunol Ser 1994;60:363–380.

10. Atluri V, Xavier M, de Jong M, den Hartigh A, Tsolis R. Взаимодействие патогенных для человека видов рода Brucella с организмами их хозяев. Annu Rev Microbiol 2011;65:523–541.

11. Nicoletti P. Вакцинация. В кн.: Nielsen K, Duncan JR (ред.) Бруцеллёз животных . Бока-Ратон, Флорида: CRC Press, 1990, с. 283–299.

12. Nicoletti P. Вакцинация против Brucella . Adv Biotechnol Processes 1990;13:147–168.

13. Adams L. Разработка живых Brucella вакцин. В кн.: Adams L (ред.) Достижения в исследовании бруцеллёза . Колледж-Стейшен, Техас: издательство Техасского университета A&M, 1990, с. 250–276.

14. Costa Oliveira S, Costa Macedo G, de Almeida L и др. Последние достижения в понимании иммунитета к бруцеллёзу: применение при разработке вакцин. Open Vet Sci J 2010;4: 102–108.

15. Служба инспекции здоровья животных и растений Министерства сельского хозяйства США. Brucella abortus штамма RB51: вакцина, разрешённая к применению у крупного рогатого скота. Доступно по адресу http://www.aphis.usda. gov/animal_health/animal_dis_spec/cattle/downloads/ rb51_vaccine.pdf

16. Moriyon I, Grillo M, Monreal D и др. Вакцины на основе штаммов с шероховатой морфологией колоний против бруцеллёза животных: структурные и генетические основы и современное состояние. Vet Res 2004;35:1–38.

17. Avila-Calderón E, Lopez-Merino A, Sriranganathan N, Boyle S, Contreras-Rodríguez A. История разработки вакцин против Brucella. Biomed Res Int 2013;2013:743509.

18. Seleem M, Boyle S, Sriranganathan N. Brucella: вновь распространяющийся зооноз. Vet Microbiol 2010;140:392–398.

19. Samartino L. Вакцины против бруцеллёза. В: 58-я конференция по бруцеллёзу, Мерида, Юкатан, Мексика, 2005, с. 31–41.

20. Confer A, Hall S, Faulkner C и др. Влияние заражающей дозы на клинические и иммунные реакции крупного рогатого скота, вакцинированного сниженными дозами штамма Brucella abortus 19. Vet Microbiol 1985;10:561–575.

21. Nicoletti P. Вакцинация крупного рогатого скота штаммом Brucella abortus 19 при различных способах введения и дозах. Vaccine 1984;2:133–135.

22. Jacob J, Hort G, Overhoff P, Mielke M. Характеристика in vitro и in vivo гладких мелкоколониальных вариантов Brucella abortus S19. Microbes Infect 2006;8:363–371.

23. Poester F, Goncalves V, Paixao T и др. Эффективность вакцины на основе штамма RB51 для защиты тёлок от экспериментального бруцеллёза. Vaccine 2006;24:5327–5334.

24. Schurig GG, Roop II RM, Bagchi T, Boyle S, Buhrman D, Sriranganathan N. Биологические свойства RB51, стабильного штамма с шероховатой морфологией колоний Brucella abortus . Vet Microbiol 1991;8:171–188.

25. Vemulapalli R, Contreras A, Sanakkayala N, Sriranganathan N, Boyle S, Schurig G. Повышенная эффективность рекомбинантных вакцин на основе Brucella abortus RB51 против инфекции, вызванной B. melitensis, у мышей. Vet Microbiol 2004;10:237–245.

26. Stevens M, Olsen S, Cheville N. Сравнительный анализ иммунных ответов у крупного рогатого скота, вакцинированного штаммом Brucella abortus 19 или штаммом RB51. Infect Immun 1995;44:223–235.

27. Olsen S. Иммунные ответы и эффективность после введения крупному рогатому скоту коммерческой вакцины на основе штамма Brucella abortus RB51.Vet Ther 2000;1:183–191.

28. Cheville N, Jensen A, Halling S и др. Выживаемость бактерий, изменения в лимфатических узлах и иммунологические реакции у крупного рогатого скота, вакцинированного стандартными и мутантными штаммами Brucella abortus . Am J Vet Res 1992;53:1881–1888.

29. Cheville N, Stevens M, Jensen A, Tatum F, Halling S. Иммунные реакции и защита от инфекции и аборта у крупного рогатого скота, экспериментально вакцинированного мутантными штаммами Brucella abortus . Am J Vet Res 1993;57:1153–1156.

30. Blasco J, Diaz R. Brucella melitensis Вакцина Rev-1 как причина бруцеллёза у человека. Lancet 1993;342:805.

31. Blasco J. Существующие и будущие вакцины против бруцеллёза мелких жвачных животных. Small Ruminant Res 2006;62:33–37.

32. Blasco J. Обзор применения вакцины на основе B. melitensis Rev 1 у взрослых овец и коз. Prev Vet Med 1997;31:275–283.

33. Harris H, Kemple C. Хронический бруцеллёз и психоневроз. Psychosom Med 1954;16:414–425.

34. Alapin B. Психосоматические и соматопсихические аспекты бруцеллёза. J Psychosom Res 1976;20:339–350.

35. Franco M, Mulder M, Gilman R, Smits H. Бруцеллёз человека. Lancet Infect Dis 2007;7:775–786.

36. Park K, Kim D, Park C и др. Смертельная системная инфекция с множественными узлами в печени и лёгких, вызванная Brucella abortus . Am J Trop Med Hyg 2007;77:1120–1123.

37. Центры по контролю и профилактике заболеваний. Передача бруцеллёза. Доступно по адресу: http://www.cdc.gov/brucellosis/ transmission/index.html

38. Solera J, Martinez-Alfaro E, Espinosa A. Выявление бруцеллёза и его оптимальное лечение. Drugs 1997;53:245–256.

39. Объединённый комитет экспертов ФАО/ВОЗ по бруцеллёзу. Шестой доклад. Серия технических докладов Всемирной организации здравоохранения, № 740. Женева: Всемирная организация здравоохранения, 1986.

40. Pappas G, Papadimitriou P, Akritidis N, Christou L, Tsianos EV. Новая карта распространения бруцеллёза человека в мире. Lancet Infect Dis 2006;6:91–99.

41. Chosewood LC, Wilson DE (ред.) Биологическая безопасность в микробиологических и биомедицинских лабораториях , 5-е изд. Вашингтон, округ Колумбия: Типография правительства США, 2007. Доступно по адресу: http://www. cdc.gov/biosafety/publications/bmbl5/index.htm

42. Al Dahouk S, Tomaso H, Prenger-Berninghoff E, Splettstoesser W, Scholz H, Neubauer H. Идентификация Brucella видов и биотипов с помощью анализа полиморфизма длин рестрикционных фрагментов на основе полимеразной цепной реакции (PCR-RFLP). Crit Rev Microbiol 2005;31:191–196.

43. Verger J, Grayon M, Tibor A, Wansard V, Letesson J, Cloeckaert A. Дифференциация штаммов B. melitensis , B. ovis и B. suis биовара 2 с помощью генных зондов, специфичных к мембранным или цитоплазматическим белкам. Res Microbiol 1998;149: 509–517.

44. Bricker B, Ewalt D, Halling S. Brucella Типирование штаммов методом HOOF-prints на основе анализа нескольких локусов с переменным числом тандемных повторов (VNTR). BMC Microbiol 2003;3:1–15

1. Le Flèche P, Jacques I, Grayon M и др. Оценка и отбор локусов с тандемными повторами для типирования Brucella методом MLVA. BMC Microbiol 2006;6:1–14.

2. Marianelli C, Ciuchini F, Tarantino M, Pasquali P, Adone R. Молекулярная характеристика гена rpoB у видов рода Brucella: новые потенциальные молекулярные маркеры для генотипирования. Microbes Infect 2006;8:860–865.

3. Sayan M, Yumuk Z, Bilenoglu O, Erdenlig S, Willke A. Генотипирование Brucella melitensis путём анализа гена rpoB и повторная оценка традиционного метода серотипирования. Jpn J Infect Dis 2009;62:160–163.

4. Hensel M, Holden D. Молекулярно-генетические подходы к изучению вирулентности патогенных бактерий и грибов. Microbiology 1996;142:1049–1058.

5. O’Callaghan D, Cazevieille C, Allardet-Serven A и др. Гомолог систем секреции IV типа VirB у Agrobacterium tumefaciens и Ptl у Bordetella pertussis необходим для внутриклеточного выживания Brucella suis. Mol Microbiol 1999;33:1210–1220.

6. Hong P, Tsolis R, Ficht T. Выявление генов, необходимых для длительной персистенции Brucella abortus у мышей. Infect Immun 2000;68:4102–4107.

7. Lestrate P, Delrue RM, Danese I и др. Выявление и характеристика in vivo аттенуированных мутантов Brucella melitensis. Mol Microbiol 2000;38:543–551.

8. Kahl-McDonagh M, Ficht T. Оценка защиты, обеспечиваемой Brucella abortus и Brucella melitensis — немаркированными делеционными мутантами с различной скоростью элиминации у мышей BALB/c. Infect Immun 2006;74:4048–4057.

9. Wu Q, Pei J, Turse C, Ficht T. Мутагенез Brucella melitensis с использованием транспозона Mariner выявляет гены, роль которых в вирулентности и выживании ранее не была охарактеризована. BMC Microbiol 2006;6:102.

10. Zygmunt M, Hagius S, Walker J, Elzer P. Выявление у Brucella melitensis генов 16 M, необходимых для выживания бактерии в организме козы. Microbes Infect 2006;8:2849–2854.

Глава 59

Инфекционные агенты: Инфекционный бычий ринотрахеит

Ahmed Tibary

Кафедра клинических наук, Колледж ветеринарной медицины, Вашингтонский государственный университет, Пулман, штат Вашингтон, США

Вступление

Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота (IBR), вызванный бычьим герпесвирусом типа 1 (BHV-1 или BoHV-1), является распространенным заболеванием крупного рогатого скота и является причиной значительных экономических потерь во всем мире. Инфекция BHV-1 связана с умеренными или тяжелыми респираторными заболеваниями и представляет высокий риск развития респираторного комплекса крупного рогатого скота (BRDC - термин, применяемый к полимикробным респираторным заболеваниям) . Инфекции с этим агентом могут также проявляться в виде глазных, неонатальных, желудочно-кишечных и неврологических заболеваний, а также репродуктивной недостаточности из-за аборта и других симптомов в половом тракте (инфекционный пустулезный вульвовагинит или ИПВ и инфекционный пустулезный баланопостит или ИПБ).^1,2 BHV-1 является одним из наиболее важных патогенов, вовлеченных в синдром респираторного заболевания судорожной лихорадки.

Этиология

Заболевание вызывается вирусом герпеса-1 крупного рогатого скота (BHV-1), который принадлежит к отряду Herpesvirales, семейству Herpesviridae, подсемейству Alphaherpesvirinae, роду Varicellovirus. Вирусный геном состоит из двухцепочечной ДНК. Три подтипа (генотипа) BHV-1 (BHV-1.1, BHV-1.2 подразделяются на BHV-1.2a и BHV-1.2b и BHV-1.3) были описаны и охарактеризованы.³ BHV-1.1 и BHV-1.2a ответственны главным образом за респираторный синдром и аборт; BHV-1.2b вызывает главным образом генитальный синдром, а BHV-1.3 является нейропатогенным подтипом, вызывающим энцефалит. Изоляты BHV-1.1 являются более вирулентными, чем изоляты BHV-1.2b. Недавно BHV-1.3, нейропатогенный агент, был переименован в вирус бычьего герпеса 5 типа (BHV-5). BHV-5 был впервые выделен от телят и взрослого крупного рогатого скота с энцефалитом, а также от абортированных плодов. Также вирус был выделен из спермы здорового быка.^4,5 Недавно BHV-5 был выделен из спермы, используемой для искусственного осеменения (ИО) небольшой группы коров, у которых была вспышка венерически передаваемого генитального синдрома (вульвовагинит и снижение оплодотворяемости).⁶ BHV-4 был связан с маститом.

BHV-1 очень чувствителен к факторам окружающей среды. Инактивация BHV-1 зависит от нескольких факторов, включая температуру, pH, свет, влажность и тип ткани. Вирус может выживать в течение 1 месяца при 4 °С и до 10 дней при температуре тела. Вирус чувствителен к органическим растворителям и многим дезинфицирующим средствам.

Эпидемиология

Заболевание, вызываемое BHV-1, давно признано в скотоводческих странах по всему миру. Крупный рогатый скот более чувствителен к вирусу, чем буйволы, и существует некоторая вариабельность чувствительности среди пород или генотипов крупного рогатого скота. Однако, эта генетическая вариабельность чувствительности полностью не исследована. Серопревалентность BHV-1 колеблется от 10 до 70% в зависимости от страны. В Африке серопревалентность варьирует от 14 до 60%, в то время как в Центральной и Южной Америке распространенность составляет 36–50%. Большинство стран с крупномасштабными системами скотоводства имеют национальные программы контроля. Страны Европейского Союза предьявляли жесткие требования при разработке программ контроля и ликвидации заболевания. BHV-1 был успешно ликвидирован в Австрии, Дании, Финляндии, Италии (провинция Больцано-Бозен), Швеции и Швейцарии.^1,7

Латентное состояние и аборты являются основными факторами распространения заболевания. Носители генитальной формы имеют важное значение в сохранении венерического BHV в стаде и возникновении спорадических ИПВ и ИПБ. Хотя эти клинические проявления значительно уменьшились с внедрением вакцинации и использованием ИО, они остаются распространенным клиническим синдромом в некоторых странах. В Австралии до 96% быков и 52% коров являются серопозитивными, вероятно, из-за венерической передачи. Серопревалентность, вероятно, отражает стратегии вакцинации и степень смешения с другими стадами. О вспышках ИПВ и ИПБ в молочных стадах свидетельствуют до 80% коров с респираторными и генитальными симптомами.⁸ Латентность может быть результатом первичной инфекции полевым штаммом или вакцинации ослабленным или модифицированным штаммом живого вируса (МЖВ).