Воспроизводство крупного рогатого скота

Возможность объединения образцов, таких как молоко, сыворотка или цельная кровь, компенсирует изначально более высокую стоимость анализа и позволяет проводить экономичный скрининг для ПИживотных. Практика объединения таких образцов, как биопсия кожи или пробы крови, в отличие от использования сборного молока, не отменяет необходимости взятия образцов от каждого животного в стаде.²²⁹ В молоке BVDV выявляли методом ОТ-ПЦР в пробах, которые серийно разводили до 1:640.²³⁴ Количество проб, которое является оптимальным для объединения, оставалось спорным, но в итоге было рекомендовано объединять от 30 до 100 образцов сыворотки.^235,236 Экономические преимущества от объединения образцов уменьшаются, когда в популяциях существуют более высокие показатели распространенности, а конкурентные преимущества объединения уменьшаются, когда показатели распространенности превышают 3%.²³⁷

Серология

Выявление сывороточных антител против BVDV может быть выполнено с помощью различных тестов, но ELISA и анализ реакции нейтрализации сыворотки преобладают и заменили непрямой иммунопероксидазный или непрямой иммунофлюоресценцентный методы.²³⁸ При соответствующем применении серологические тесты позволяют оценить эффективность вакцины и соблюдение установленных протоколов вакцинации, определить подверженность стада BVDV и связь клинических признаков с этой инфекцией. Существуют трудности при определении этиологии обнаруженных антител, поскольку сероконверсия может быть результатом острых инфекций, вакцинации или передачи материнского иммунитета через молозиво. Коммерческие блокирующие анализы ELISA, которые выявляют антитела, направленные против белка NS3 BVDV, не способны дифференцировать антитела, полученные в результате естественной инфекции или вакцинации, а маркерные вакцины с BVDV в настоящее время недоступны.²³⁹ Серологическое тестирование ранее не подвергавшихся воздействию вируса сентинельных ( безмикробных) животных может быть использовано для обнаружения присутствия ПИкоров в стадах.²⁴⁰ Тем не менее, анализ и сравнение серологических титров не позволяют провести четкое различие между стадами без ПИ и ПИ-крс.²⁴¹

Вакцинация

В Соединенных Штатах широко доступны модифицированные живые и инактивированные вакцины против BVDV, чаще всего в форме поливалентных вакцин, содержащих другие респираторные и репродуктивные патогены. В то время как модифицированные живые вакцины стимулируют более обширный иммунный ответ у вакцинированных животных, являются менее дорогостоящими и обеспечивают некоторую защиту после введения однократной дозы, инактивированные вакцины используются, когда существуют проблемы безопасности. Однако, если по какой-либо причине не будет введена необходимая вторая бустерная доза при начальной иммунизации, это может привести к срыву программ контроля BVDV с использованием инактивированных вакцин.²⁴²

Из-за антигенного разнообразия штаммов BVDV и неспособности некоторых животных адекватно реагировать на иммунизацию, эффективность вакцинации не может быть 100%. Следовательно, программы вакцинации должны быть частью стратегии контроля, которая включает удаление из стада животных с ПИ и меры биобезопасности.²⁴³ Традиционно, при производстве вакцин использовались только штаммы BVDV-1, но антигенное разнообразие между обоими видами BVDV побудило включить в большинство вакцин и BVDV-2.

Исследования документировали защиту от BVDV-2-индуцированного заболевания у крупного рогатого скота, вакцинированного модифицированными живыми или аттенуированными вакцинами, содержащими BVDV-1,^244–246 но антигенная разнородность BVDV и, как следствие, неспособность к перекрестной защите продолжают вызывать беспокойство.

Хотя целью программ вакцинациии является защита от BVDVиндуцированного заболевания каждого отдельного животного, повышение иммунитета стада и предотвращение распространения вируса после случайного его внедрения являются более разумными целями в борьбе с BVDV. Вакцинация против BVDV-индуцированного заболевания в основном направлена на достижение двух целей: 1) защита от клинического заболевания и 2) профилактика внутриутробной инфекции и рождение ПИ-потомства. Несмотря на то, что для достижения любой из этих целей стимулируются одни и те же иммунные механизмы, для предотвращения внутриутробной инфекции необходим гораздо более высокий уровень иммунной защиты с привлечением Т- и В-клеточных реакций, приближающих иммунитет у стерилизующему.²⁴³ Программы вакцинации должны разрабатываться с акцентом на любую из двух целей, диктующую оптимальные сроки вакцинации и выбор типа вакцины.

Защита от клинического заболевания является желательной целью вакцинации против BVDV у телят, при этом наивысшие уровни гуморального и клеточно-опосредованного иммунитета должны присутствовать во время наивысшего риска, как, например, при группировке, прибытии на стокерные фермы или перевозке на откормочную площадку.²⁴⁷ У телят, прибывающих на откормочную площадку с низкими титрами антител против BVDV и других респираторных патогенов, наблюдались снижение экономической отдачи, повышение риска заболеваемости и увеличение затрат на лечение.^247,248 Увеличение уровня заболеваемости и затрат на лечение было связано с неподходящими сроками вакцинации перед отелом или отсутствием ревакцинации в программах с использованием инактивированных вакцин, что подчеркивает ценность адекватных программ предварительной обработки.²⁴⁸ Как правило, программы предварительной обработки, реализуемые в стадах коров-телят, требуют отъема телят за 45 дней до отгрузки и включают в себя декорнуацию (удаление рогов) , кастрацию, приучение к кормушке и применение антигельминтиков и вакцин. Телята, вакцинированные за 30 и 17 дней до отправки на откормочную площадку многовалентной модифицированной живой вакциной, не становились виремическими и не выделяли BVDV при контакте с ПИ-сородичами.²⁴⁹ Несмотря на то, что модифицированные живые вакцины способны быстро обеспечивать клиническую защиту и защищать телят от экспериментального заражения уже через 3–5 дней после вакцинации в полевых условиях, не следует ожидать полной защиты в короткие сроки.^250,251

При планировании протокола вакцинации против BVDV для телят следует учитывать блокирование защитных иммунных реакций присутствием материнских антител, особенно у телят раннего отъема.²⁵² Двухнедельные телята, вакцинированные модифицированной вакциной в присутствии высоких титров колостральных антител, не были защищены от BVDV-индуцированного заболевания в возрасте 4 месяцев, в отличие от телят BVDV-серонегативных при вакцинации.²⁵³ Кроме того, существует большая разница между индивидуальными титрами материнских антител, что затрудняет оценку идеального времени первичной вакцинации телят.^254,255 Тем не менее, в последнее время разные исследователи продемонстрировали, что ранняя вакцинация телят на фоне материнских антител может привести к клеточно-опосредованному анамнестическому (вторичному, после повторного заражения) иммунному ответу и защите от BVDV-индуцированного заболевания, особенно при двукратном введении модифицированных живых вакцин.^256,257 Несмотря на то, что после вакцинации однократной дозой модифицированной живой вакцины наблюдалось снижение титров антител в трех возрастных группах телят, все группы были клинически защищены от BVDV-индуцированного заболевания и проявляли анамнестические реакции Т-клеток, что указывает на то, что вакцинация на фоне материнского иммунитета может быть эффективной в случае воздействия вируса (живой вакцины) в более раннем возрасте.²⁵⁸

В маточных стадах (стада "коров-телят", производящие телят на продажу стокерам) вакцинация против BVDV должна предотвращать внутриутробную инфекцию и рождение ПИ-потомства, таким образом прерывая эндемический цикл BVDV. Защитный иммунитет должен быть сформирован, по крайней мере, за 30 дней до осеменения, а вакцинация не должна проводиться непосредственно перед началом случного сезона, чтобы избежать неблагоприятного воздействия вакцинных штаммов на фертильность.¹⁴² В различных исследованиях экспериментальное интраназальное заражение вакцинированных маток приводило к защите плода от инфекции вплоть до 100%; однако, полная защита часто не демонстрировалась.^259–263 Меньшая степень защиты наблюдалась в других исследованиях, в которых вакцинированные стельные коровы контактировали с ПИ-коровами, что считается более точной и реалистичной моделью передачи инфекции.^264–267 Хотя длительная и полная защита от развития ПИ у телят и была продемонстрирована в исследовании с использованием ПИ-скота в качестве контрольной модели,²⁶⁴ в полевых условиях успех вакцинации для предотвращения внутриутробной инфекции зависит от различных факторов, включая время вакцинации, питательный и иммунный статус животных, перекрестная защита от вакцинных и полевых штаммов, а также количество прививок, сделанных до осеменения.

Ссылки

1. Childs T. Болезнь X у крупного рогатого скота: Саскачеван. Can J Comp Med 1946;10:316–319.

2. Olafson P, MacCallum A, Fox F. По-видимому, новое инфекционное заболевание крупного рогатого скота. Cornell Vet 1946;36:205–213.

3. Ames T. Возбудитель BVD: его эпидемиология и патогенез. Vet Med 1986;81:848–869.

4. Carman S, van Dreumel T, Ridpath J и др.Тяжёлая острая вирусная диарея крупного рогатого скота в Онтарио, 1993–1995.J Vet Diagn Invest 1998;10:27– 35.

5. Pellerin C, van den Hurk J, Lecomte J, Tussen P. Выявление новой группы штаммов вируса вирусной диареи крупного рогатого скота, связанных с тяжёлыми вспышками и высокой смертностью.Virology 1994;203:260–268.

6. Ridpath J. Классификация и молекулярная биология. В кн.: Goyal S, Ridpath J (ред.)Вирус вирусной диареи крупного рогатого скота: диагностика, управление и контроль. Эймс, Айова: Blackwell Publishing, 2005, с. 65–89.

7. Avalos-Ramirez R, Orlich M, Thiel H, Becher P. Данные о существовании двух новых видов пестивирусов.Virology 2001;286:456–465.

8. Becher P, Avalos Ramirez R, Orlich Mи др.Генетическая и антигенная характеристика новых генотипов пестивирусов: значение для классификации.Virology 2003;311:96–104.

9. Dekker A, Wensvoort G, Terpstra C. Шесть антигенных групп внутри рода Pestivirus, выявленных с помощью реакций перекрёстной нейтрализации.Vet Microbiol 1995;47:317–329.

10. Schirrmeier H, Strebelow G, Depner K, Hoffmann B, Beer M. Генетическая и антигенная характеристика атипичного изолята пестивируса — предполагаемого представителя нового вида пестивирусов.J Gen Virol 2004;85:3647–3652.

11. Vilcek S. Расхождения в результатах генетического типирования изолятов вируса вирусной диареи крупного рогатого скота.Vet Microbiol 2005;106:153–154.

12. Giangaspero M, Harasawa R. Численная таксономия рода Pestivirus на основе палиндромных нуклеотидных замен в 5′-нетранслируемой области.J Virol Methods 2007;146:375–388.

13. Harasawa R. Филогенетический анализ пестивирусов на основе 5′-нетранслируемой области.Acta Virol 1996;40:49–54.

14. Hofmann M, Brechtbuhl K, Stauber N. Быстрая характеристика новых штаммов пестивирусов путём прямого секвенирования кДНК, амплифицированной методом ПЦР из 5′-некодирующей области.Arch Virol 1994;139: 217–229.

15. Ridpath J, Bolin S, Dubovi E. Разделение вируса вирусной диареи крупного рогатого скота на генотипы.Virology 1994;205:66–74.

16. Vilcek S, Durkovic B, Kolesarova M, Paton D. Генетическое разнообразие BVDV: последствия для классификации и молекулярной эпидемиологии.Prev Vet Med2005;72:31–35; обсуждение 215–219.

17. Harasawa R, Mizusawa H. Обнаружение и генотипирование РНК пестивирусов в клеточных линиях млекопитающих.Microbiol Immunol 1995;39:979–985.

18. Ridpath J, Bolin S. Сравнение полной геномной последовательности вируса пограничной болезни BD31 с последовательностями других пестивирусов.Virus Res 1997;50:237–243.

19. Colett M, Larson R, Gold C, Strick D, Anderson D, Purchio A. Молекулярное клонирование и нуклеотидная последовательность пестивируса — вируса вирусной диареи крупного рогатого скота.Virology 1988;165:191–199.

20. Bolin S, Grooms D. Происхождение и последствия разнообразия вируса вирусной диареи крупного рогатого скота.Vet Clin North Am Food Anim Pract 2004;20:51–68.

21. Drake JW, Holland JJ. Частота мутаций у РНК-вирусов.Proc Natl Acad Sci USA 1999;96:13910–13913.

22. Figlerowicz M, Alejska M, Kurzynska-Kokorniak A, Figlerowicz M. Генетическая изменчивость — ключевая проблема профилактики и лечения инфекций, вызываемых РНК-вирусами.Med Res Rev 2003;23:488–518.

23. Saiz J, Domingo E. Вирулентность как благоприятное свойство для персистенции вируса.J Virol 1996;70:6410–6413.

24. Lee K, Gillespie J. Размножение вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в культуре тканей.Am J Vet Res 1957;18:952–953.

25. Underdahl N, Grace O, Hoerlein A. Культивирование в культуре тканей цитопатогенного агента, выделенного при болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота.Proc Soc Exp Biol Med 1957;94:795–797.

26. Fulton R, Ridpath J, Ore Sи др.Субгенотипы вируса вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) среди образцов, поступивших в диагностическую лабораторию: распространённость субгенотипов BVDV1a, 1b и 2a.Vet Microbiol 2005;111:35–40.

27. Fulton R, Saliki J, Confer Aи др.Цитопатогенный и нецитопатогенный биотипы, а также генотипы типа 1 и 2 вируса вирусной диареи крупного рогатого скота среди образцов, поступивших в диагностическую лабораторию: клинические и патологоанатомические образцы крупного рогатого скота.J Vet Diagn Invest 2000;12:33–38.

28. Ridpath J, Bendfeldt S, Neill J, Liebler-Tenorio E. Лимфоцитопатогенная активность in vitro коррелирует с высокой вирулентностью in vivo у штаммов BVDV типа 2: критерии выделения третьего биотипа BVDV.Virus Res 2006;118:62–69.

29. Houe H, Baker J, Maes Rи др. Распространённость персистентной инфекции вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота в 20 молочных стадах двух округов центральной части штата Мичиган и сравнение доли животных с антителами в стадах с разным инфекционным и вакцинальным статусом. J Vet Diagn Invest 1995;7:321–326.

30. Houe H. Эпидемиология вируса вирусной диареи крупного рогатого скота. Vet Clin North Am Food Anim Pract 1995;11:521–547.

31. Durham P, Hassard L. Распространённость антител к вирусам инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота, парагриппа 3, респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота и вирусной диареи крупного рогатого скота у животных в Саскачеване и Альберте. Can Vet J 1990;31:815–820.

32. Bolin S, McClurkin A, Coria M. Частота персистентной инфекции вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота в отдельных стадах. Am J Vet Res 1985;46:2385–2387.

33. Scott H, Sorensen O, Wu J, Chow E, Manninen K, VanLeeuwen JA. Серопревалентность инфекции, вызванной Mycobacterium avium подвидом paratuberculosis, Neospora caninum , вирусом лейкоза крупного рогатого скота и вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота среди молочного скота и молочных стад в Альберте, а также агроэкологические факторы риска, связанные с серопозитивностью. Can Vet J 2006;47:981–991.

34. Taylor L, Van Donkersgoed J, Dubovi E и др. Распространённость инфекции вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота среди телят на откормочных площадках в западной части Канады. Can J Vet Res 1995;59:87–93.

35. Martin S, Bateman K, Shewen P, Rosendal S, Bohac J. Частота и распределение антител к семи предполагаемым возбудителям респираторных инфекций, а также влияние этих антител на заболеваемость респираторными болезнями и прирост массы тела у телят на откормочных площадках Онтарио. Can J Vet Res 1989;53:355–362.

1. Brulisauer F, Lewis F, Ganser A, McKendrick I, Gunn G. Распространённость инфекции вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота в мясных стадах с подсосным содержанием телят в Шотландии. Vet J 2010;186:226–231.

2. Duong M, Alenius S, Huong L, Bjorkman C. Распространённость Neospora caninum и вируса вирусной диареи крупного рогатого скота у молочных коров в Южном Вьетнаме. Vet J 2008;175:390–394.

3. Niza-Ribeiro J, Pereira A, Souza J, Madeira H, Barbosa A, Afonso C. Оценка распространённости BVDV, контактов с вирусом и применения вакцин в молочных стадах Северной Португалии. Prev Vet Med 2005;72:81– 85; обсуждение 215–219.

4. Solis-Calderon J, Segura-Correa V, Segura-Correa J. Вирус вирусной диареи крупного рогатого скота в стадах мясного скота Юкатана, Мексика: серопревалентность и факторы риска. Prev Vet Med 2005;72:253–262.

5. Kampa J, Stahl K, Moreno-Lopez J, Chanlun A, Aiumlamai S, Alenius S. Инфекции BVDV и BHV-1 в молочных стадах северного и северо-восточного Таиланда. Acta Vet Scand 2004;45:181–192.

6. Vilcek S, Mojzisova J, Bajova V и др. Обследование хозяйств по разведению крупного рогатого скота в Словакии на наличие антител к BVDV и генетическое типирование изолятов BVDV, полученных от импортированных животных. Acta Vet Hung 2003;51:229–236.

7. Stahl K, Rivera H, Vagsholm I, Moreno-Lopez J. Исследование сборного молока для оценки распространённости антител к BVDV и BHV-1 в сельском районе Перу. Prev Vet Med 2002;56:193–202.

8. Mainar-Jaime R, Berzal-Herranz B, Arias P, Rojo-Vazquez F. Эпидемиологическая картина и факторы риска инфекции вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) в невакцинированной популяции молочного скота региона Астурия, Испания. Prev Vet Med 2001;52:63–73.

9. Obando C, Baule C, Pedrique C и др. Серологическая и молекулярная диагностика вирусной диареи крупного рогатого скота и признаки других вирусных инфекций у молочных телят с респираторными заболеваниями в Венесуэле. Acta Vet Scand 1999;40:253–262.

10. Sudharshana K, Suresh K, Rajasekhar M. Распространённость антител к вирусу вирусной диареи крупного рогатого скота в Индии. Rev Sci Tech 1999;18:667–671.

11. Obando R, Hidalgo M, Merza M, Montoya A, Klingeborn B, Moreno-Lopez J. Серопревалентность антител к вирусу вирусной диареи крупного рогатого скота и другим вирусам респираторного комплекса крупного рогатого скота в Венесуэле (штат Апуре). Prev Vet Med 1999;41:271–278.

12. Grom J, Barlic-Maganja D. Вирусная диарея крупного рогатого скота (BVD): программа контроля и ликвидации инфекции в племенных стадах Словении. Vet Microbiol 1999;64:259–264.

13. Luzzago C, Piccinini R, Zepponi A, Zecconi A. Исследование распространённости антител к вирусу вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) в 29 молочных стадах Италии с нарушениями воспроизводства. Vet Microbiol 1999;64:247–252.

14. Ferrari G, Scicluna MT, Bonvicini D и др. Программа борьбы с вирусной диареей крупного рогатого скота (BVD) в одном из районов провинции Рим (Италия). Vet Microbiol 1999;64:237–245.

15. Nuotio L, Juvonen M, Neuvonen E, Sihvonen L, Husu-Kallio J. Распространённость и географическое распределение инфекции вирусной диареи крупного рогатого скота (BVD) в Финляндии 1993–1997. Vet Microbiol 1999;64:231–235.

16. Houe H. Эпидемиологические особенности и экономическое значение инфекций, вызываемых вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV). Vet Microbiol 1999;64:89–107.

17. Rossmanith W, Deinhofer M. Распространённость инфекций, вызванных вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, на молочных фермах Нижней Австрии [на немецком языке]. Dtsch Tierarztl Wochenschr 1998;105:346–349.

18. Houe H. Возрастное распределение животных с персистентной инфекцией, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, в двадцати двух молочных стадах Дании. Can J Vet Res 1992;56:194–198.

19. Loneragan G, Thomson D, Montgomery D, Mason G, Larson R. Распространённость, исходы и последствия для здоровья персистентной инфекции, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, у скота на откормочных площадках. J Am Vet Med Assoc 2005;226:595–601.

20. O’Connor A, Sorden S, Apley M. Связь между наличием телят с персистентной инфекцией, вызванной вирусом вирусной

диареи крупного рогатого скота, и смешанным содержанием животных и заболеваемостью в загонах откормочных площадок. Am J Vet Res 2005;66:2130–2134.

1. Wittum T, Grotelueschen D, Brock K и др. Персистентная инфекция, вызванная вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, в стадах мясного крупного рогатого скота США. Prev Vet Med 2001;49:83–94.

2. Vilcek S, Nettleton P. Пестивирусы у диких животных. Vet Microbiol 2006;116:1–12.

3. Passler T, Walz P. Инфекции, вызванные вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, у животных других видов. Anim Health Res Rev 2010;11:191–205.

4. Evermann J. Пестивирусная инфекция у лам и альпак. Small Ruminant Res 2006;61:201–206.

5. Graham D, Calvert V, German A, McCullough S. Пестивирусные инфекции у овец и свиней в Северной Ирландии. Vet Rec 2001;148:69–72.

6. Krametter-Frotscher R, Loitsch A, Kohler H и др. Серологическое обследование овец в Австрии на наличие антител к пестивирусам. Vet Rec 2007;160:726–730.

7. Konig M, Cedillo Rosales S, Becher P, Thiel H. Неоднородность пестивирусов жвачных: предмет академического интереса или важная основа для разработки вакцин и методов диагностики? [На немецком языке] Berl Munch Tierarztl Wochenschr 2003;116:216–221.

8. Taylor W, Okeke A, Shidali N. Экспериментальное заражение нигерийских овец и коз вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота. Trop Anim Health Prod 1977;9:249–251.

9. Meehan J, Lehmkuhl H, Cutlip R, Bolin S. Острые поражения лёгких у овец, экспериментально заражённых вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота. J Comp Pathol 1998;119:277–292.

10. Loken T, Bjerkas I. Экспериментальные пестивирусные инфекции у беременных коз. J Comp Pathol 1991;105:123–140.

11. Hewicker-Trautwein M, Trautwein G, Frey H, Liess B. Различия в нейропатогенности нецитопатогенного и цитопатогенного биотипов вируса вирусной диареи крупного рогатого скота при трансплацентарном заражении плодов овец. Zbl Vet Med B 1995;42:557–567.

12. Carlsson U. Пограничная болезнь овец, вызванная передачей вируса от крупного рогатого скота с персистентной инфекцией вирусной диареи крупного рогатого скота. Vet Rec 1991;128:145–147.

13. Scherer C, Flores E, Weiblen R и др. Экспериментальное заражение суягных овец вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота типа-2 (BVDV2): влияние на течение беременности и плод. Vet Microbiol 2001;79:285–299.

14. Broaddus C, Lamm C, Kapil S, Dawson L, Holyoak G. Аборты у коз, содержавшихся вместе с крупным рогатым скотом с персистентной инфекцией, вызванные вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота. Vet Pathol 2009;46:45–53.

15. de Smit A, Eble P, de Kluijver E, Bloemraad M, Bouma A. Принятие решений в лаборатории во время эпидемии классической чумы свиней 1997–1998 в Нидерландах. Prev Vet Med 1999;42:185–199.

16. Liess B, Moennig V. Пестивирусная инфекция жвачных у свиней. Rev Sci Tech 1990;9:151–161.

17. Loeffen W, van Beuningen A, Quak S, Elbers A. Серопревалентность и факторы риска присутствия пестивирусов жвачных в поголовье свиней Нидерландов. Vet Microbiol 2009;136:240–245.

18. Vannier P, Leforban Y, Carnero R, Cariolet R. Контаминация живой вирусной вакцины против псевдобешенства (болезни Ауески) овечьим пестивирусом, патогенным для свиней. Ann Rech Vet 1988;19:283–290.

19. Beckenhauer W, Brown A, Lidolph A, Norden C. Иммунизация свиней против классической чумы свиней с помощью бычьего энтеровируса. Vet Med 1961;56:108–112.

20. Walz P, Baker J, Mullaney T, Kaneene J, Maes R. Сравнение инфекции, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота типа I и типа II, у свиней. Can J Vet Res 1999;63:119–123.

21. Stewart W, Miller L, Kresse J, Snyder M. Инфекция, вызванная вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, у супоросных свиней. Am J Vet Res 1980;41:459–462.

22. Terpstra C, Wensvoort G. Врождённая персистентная инфекция, вызванная вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, у свиней: клинические, вирусологические и иммунологические наблюдения. Vet Quart 1997;19:97–101.