Воспроизводство крупного рогатого скота

1. Givens M, Marley M. Иммунология хронических инфекций BVDV. Biologicals 2013;41:26–30.

2. Voges H, Horner G, Rowe S, Wellenberg G. Персистирующая пестивирусная инфекция крупного рогатого скота, локализованная в семенниках иммунокомпетентного быка без виремии. Vet Microbiol 1998;61: 165–175.

3. Niskanen R, Alenius S, Belak K и др. Осеменение восприимчивых тёлок спермой быка без виремии с персистирующей инфекцией, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота и локализованной в семенниках. Reprod Domest Anim 2002;37:171–175.

4. Givens M, Heath A, Brock K, Brodersen B, Carson R, Stringfellow DA. Выявление вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в сперме, полученной после заражения серонегативных половозрелых быков. Am J Vet Res 2003;64:428–434.

5. Givens M, Riddell K, Walz P и др. Не цитопатогенный вирус вирусной диареи крупного рогатого скота может сохраняться в ткани семенников после вакцинации быков в период полового созревания, однако вакцинация предотвращает последующее заражение. Vaccine 2007;25:867–876.

6. Givens M, Riddell K, Edmondson M и др. Эпидемиология длительно сохраняющихся инфекций семенников, вызванных вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота. Vet Microbiol 2009;139:42–51.

7. Gard J, Givens M, Stringfellow D. Вирус вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV): эпидемиологические аспекты, связанные со спермой и эмбрионами. Theriogenology 2007;68:434–442.

8. Международное эпизоотическое бюро. Вирусная диарея крупного рогатого скота. В кн.: Руководство МЭБ по диагностическим тестам и вакцинам для наземных животных, 6-е изд. Париж: OIE, 2008, с. 698–711.

9. Givens M, Waldrop J. Вирус вирусной диареи крупного рогатого скота в системах получения эмбрионов и спермы. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2004;20:21–38.

10. Vanroose G, Nauwynck H, Soom A и др. Структурные особенности блестящей оболочки эмбрионов крупного рогатого скота, полученных in vitro: исследование методами сканирующей электронной и конфокальной лазерной сканирующей микроскопии. Biol Reprod 2000;62:463–469.

11. Walz P, Grooms D, Passler T и др. Борьба с вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота у жвачных животных. J Vet Intern Med 2010;24:476–486.

12. Saliki J, Dubovi E. Лабораторная диагностика инфекций, вызванных вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2004;20:69–83.

13. Bruschke C, Weerdmeester K, Van Oirschot J, Van Rijn P. Распределение вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в тканях и лейкоцитах в период острой инфекции. Vet Microbiol 1998;64:23–32.

14. Makoschey B, van Gelder P, Keijsers V, Goovaerts D. Антиген вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в партиях сыворотки крови плодов телят и последствия такого загрязнения для производства вакцин. Biologicals 2003;31:203–208.

15. Rossi C, Bridgman C, Kiesel G. Вирусное загрязнение культур клеток лёгких плодов крупного рогатого скота и сыворотки крови плодов крупного рогатого скота. Am J Vet Res 1980;41:1680–1681.

16. Wessman S, Levings R. Преимущества и риски использования сыворотки крови животных при получении клеточных культур. Dev Biol Stand 1999;99:3–8.

17. Saliki J, Fulton R, Hull S, Dubovi E. Выделение вируса и иммуноферментные анализы в микропланшетах для выявления вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в сыворотке крови. J Clin Microbiol 1997;35: 803–807.

18. Smith G, Collins J, Carman J, Minocha H. Выявление цитопатогенного и нецитопатогенного вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в клеточной культуре с помощью иммунопероксидазного теста. J Virol Methods 1988;19:319–324.

19. Deregt D, Prins S. Иммунопероксидазный анализ монослоя клеток (микровыделение) с использованием моноклональных антител для выявления вирусов вирусной диареи крупного рогатого скота типа 1 и типа 2. Can J Vet Res 1998;62:152–155.

20. Grooms D, Kaiser L, Walz P, Baker J. Исследование крупного рогатого скота с персистирующей инфекцией, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, у которого вирус не обнаруживается в сыворотке крови. J Am Vet Med Assoc 2001;219: 629–631.

21. Njaa B, Clark E, Janzen E, Ellis J, Haines D. Диагностика персистирующей инфекции, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, путём иммуногистохимического окрашивания фиксированных формалином биоптатов кожи. J Vet Diagn Invest 2000;12:393–399.

22. Edmondson M, Givens M, Walz P, Gard J, Stringfellow D, Carson R. Сравнение тестов для выявления вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в диагностических образцах. J Vet Diagn Invest 2007;19:376–381.

23. Fulton R, Hessman B, Ridpath J и др. Применение нескольких диагностических тестов для выявления крупного рогатого скота, инфицированного вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, и продолжительность периода положительных результатов тестирования у животных с персистирующей инфекцией. Can J Vet Res 2009;73:117–124.

24. Hilbe M, Arquint A, Schaller P и др. Иммуногистохимическая диагностика персистирующей инфекции, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV), по биоптатам кожи. Schweiz Arch Tierheilkd 2007;149:337–344.

25. Thur B, Zlinszky K, Ehrensperger F. Иммуногистохимическое выявление вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в биоптатах кожи: надёжный и быстрый метод диагностики. Zbl Vet Med B 1996;43:163–166.

26. Brodersen B. Иммуногистохимия как скрининговый метод выявления персистентной инфекции, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2004;20:85–93.

27. Анонимный автор. Тест SNAP BVDV, 2012. http://www.idexx. com/view/xhtml/en_us/livestock-poultry/ruminant/ bvdv.jsf

28. Driskell E, Ridpath J. Обзор тестирования на вирус вирусной диареи крупного рогатого скота в диагностических лабораториях США за период с 2004 по 2005 год. J Vet Diagn Invest 2006;18:600–605.

29. Drew T, Yapp F, Paton D. Выявление вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в пробах сборного молока с помощью однопробирочной ОТ-ПЦР. Vet Microbiol 1999;64:145–154.

30. Givens M, Galik P, Riddell K и соавт. Валидация гнездовой полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (RT-nPCR) для выявления вируса вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV), связанного с эмбрионами крупного рогатого скота, полученными in vitro, и совместно культивируемыми клетками. Theriogenology 2001;56:787–799.

31. Hamel A, Wasylyshen M, Nayar G. Быстрое выявление вируса вирусной диареи крупного рогатого скота с использованием РНК, выделенной непосредственно из различных образцов, и однопробирочного анализа методом ОТ-ПЦР. J Clin Microbiol 1995;33:287–291.

32. Kennedy J, Mortimer R, Powers B. Выявление вируса вирусной диареи крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией в объединенных пробах с использованием свежих супернатантов образцов ушных выщипов. J Vet Diagn Invest 2006;18:89–93.

33. Kim S, Dubovi E. Новый простой одностадийный однопробирочный метод дуплексной ОТ-ПЦР с внутренним контролем для выявления вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в пробах сборного молока, крови и фолликулярной жидкости. Biologicals 2003;31:103–106.

34. Tajima M, Ohsaki T, Okazawa M, Yasutomi I. Возможность использования мазков из ротовой полости для выявления гена вируса вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) у животных с персистентной BVDV-инфекцией. Jpn J Vet Res 2008;56:3–8.

35. Finke J, Fritzen R, Ternes P, Lange W, Dolken G. Усовершенствованная стратегия и подходящий референсный ген для анализа РНК методом ПЦР в тканях, фиксированных формалином и залитых парафином. Biotechniques 1993;14:448–453.

36. Weinstock D, Bhudevi B, Castro A. Однопробирочный анализ методом ОТ-ПЦР с использованием одного фермента для выявления вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в объединенных пробах сыворотки крови. J Clin Microbiol 2001;39:343–346.

37. Radwan G, Brock K, Hogan J, Smith K. Разработка ПЦР-анализа в качестве скринингового теста проб сборного молока для выявления молочных стад, инфицированных вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота. Vet Microbiol 1995;44:77–91.

38. Kennedy J. Диагностическая эффективность анализа методом полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией при скрининге крупного рогатого скота на персистентную инфекцию, вызванную вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота. J Am Vet Med Assoc 2006;229:1472–1474.

1. Smith R, Sanderson M, Walz P, Givens M. Чувствительность полимеразной цепной реакции при выявлении вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в объединенных пробах сыворотки крови и применение ПЦР объединенных проб для определения распространенности вируса вирусной диареи крупного рогатого скота среди животных, продаваемых на аукционах. J Vet Diagn Invest 2008;20:75–78.

2. Munoz-Zanzi C, Johnson W, Thurmond M, Hietala S. Тестирование объединенных проб как инструмент скрининга стад для выявления животных с персистентной инфекцией, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота. J Vet Diagn Invest 2000;12:195–203.

3. Muvavarirwa P, Mudenge D, Moyo D, Javangwe S. Выявление антител к вирусу вирусной диареи крупного рогатого скота методом иммуноферментного анализа. Onderstepoort J Vet Res 1995;62:241–244.

4. Raue R, Harmeyer S, Nanjiani I. Оценка антительного ответа на инактивированные вакцины и естественную инфекцию у крупного рогатого скота с помощью наборов для ИФА на вирус вирусной диареи крупного рогатого скота: оценка возможности различать инфицированных и вакцинированных животных. Vet J 2011;187:330–334.

5. Pillars R, Grooms D. Серологическое исследование пяти невакцинированных телок для выявления стад, в которых имеются животные с персистентной инфекцией, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота. Am J Vet Res 2002;63:499–505.

6. Waldner C, Campbell J. Использование серологического исследования на антитела к вирусу вирусной диареи крупного рогатого скота для выявления телят с персистентной инфекцией в стадах мясного крупного рогатого скота. Am J Vet Res 2005;66:825–834.

7. Rauff Y, Moore D, Sischo W. Оценка результатов опроса производителей молока о биобезопасности молочных стад и вакцинации против вирусной диареи крупного рогатого скота. J Am Vet Med Assoc 1996;209:1618–1622.

8. Ridpath J. Иммунологические аспекты вакцин против BVDV. Biologicals 2013; 41:14–19.

9. Dean H, Leyh R. Перекрестная защитная эффективность вакцины против вируса вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) типа 1 при контрольном заражении BVDV типа 2. Vaccine 1999;17:1117–1124.

10. Fairbanks K, Schnackel J, Chase C. Оценка модифицированной живой вакцины против вируса вирусной диареи крупного рогатого скота типа -1a (штамм Singer) при контрольном заражении вирусом типа -2 (штамм 890). Vet Therapeut 2003;4:24–34.

11. Hamers C, Couvreur B, Dehan P и соавт. Оценка клинической и вирусологической защиты, обеспечиваемой коммерческой инактивированной вакциной против вируса вирусной диареи крупного рогатого скота генотипа 1 при контрольном заражении BVDV генотипа 2. Vet Rec 2003;153:236–240.

12. Fulton R, Cook B, Blood K и соавт. Иммунный ответ на иммуногены вакцины против респираторных заболеваний крупного рогатого скота у телят при поступлении на откормочную площадку и его влияние на результаты откорма. Bov Pract 2011;45:1–12.

13. Fulton R, Cook B, Step D и соавт. Оценка состояния здоровья телят и его влияния на результаты откорма: анализ программы, при которой право собственности на телят после отъема сохраняется за прежним владельцем. Can J Vet Res 2002;66:173–180.

14. Fulton R, Johnson B, Briggs R и др. Заражение вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота при контакте с телятами с персистентной инфекцией: защита благодаря вакцинации и отрицательные результаты тестирования на антиген у невакцинированных телят с острой инфекцией. Can J Vet Res 2006;70:121–127.

15. Brock K, Widel P, Walz P, Walz H. Формирование защиты от экспериментального заражения вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота типа 2 после вакцинации живой модифицированной вакциной. Vet Therapeut 2007;8:88–96.

16. Fulton R, Briggs R, Ridpath J и др. Передача вируса вирусной диареи крупного рогатого скота 1b восприимчивым и вакцинированным телятам при контакте с телятами с персистентной инфекцией. Can J Vet Res 2005;69:161–169.

17. Kelling C. Эволюция вакцин против вирусной диареи крупного рогатого скота. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2004;20:115–129.

18. Ellis J, West K, Cortese V, Konoby C, Weigel D. Влияние материнских антител на формирование и сохранение

иммунного ответа, вызванного вакцинацией против вируса вирусной диареи крупного рогатого скота типа II, у телят раннего возраста. J Am Vet Med Assoc 2001;219:351–356.

1. Fulton R, Briggs R, Payton M и др. Гуморальный иммунитет материнского происхождения к вирусу вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) 1a, BVDV1b, BVDV2, герпесвирусу крупного рогатого скота -1, вирусу парагриппа -3, респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота, Mannheimia haemolytica и Pasteurella multocida у телят мясных пород: изучение снижения уровня антител по периоду полувыведения и влияния материнского иммунитета на ответ на вакцинацию. Vaccine 2004;22:643–649.

2. Munoz-Zanzi C, Thurmond M, Johnson W, Hietala S. Прогнозируемый возраст телят молочных пород, в котором полученные с молозивом антитела к вирусу вирусной диареи крупного рогатого скота перестают обеспечивать защиту от заболевания или препятствовать вакцинации. J Am Vet Med Assoc 2002;221:678–685.

3. Endsley J, Roth J, Ridpath J, Neill J. Материнские антитела блокируют гуморальный, но не Т-клеточный ответ на BVDV. Biologicals 2003;31:123–125.

4. Woolums A. Вакцинация телят: новые данные о влиянии материнского иммунитета. В кн.: 40-я ежегодная конференция Американской ассоциации ветеринарных врачей, специализирующихся на крупном рогатом скоте, Ванкувер, Британская Колумбия , 2007, с. 10–17.

5. Platt R, Widel P, Kesl L, Roth J. Сравнение гуморального и клеточного иммунного ответа на пятивалентную живую модифицированную вирусную вакцину у телят трех возрастных групп с материнскими антителами до и после контрольного заражения BVDV типа 2. Vaccine 2009;27:4508–4519.

6. Cortese V, Grooms D, Ellis J, Bolin S, Ridpath J, Brock K. Защита стельных коров и их плодов от заражения вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота типа 1 при использовании живой модифицированной вирусной вакцины. Am J Vet Res 1998;59:1409–1413.

7. Fairbanks K, Rinehart C, Ohnesorge W, Loughin M, Chase C. Оценка защиты плода от экспериментального заражения вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота типов 1 и 2 после вакцинации матери двухвалентной живой модифицированной вирусной вакциной. J Am Vet Med Assoc 2004;225:1898–1904.

8. Ficken M, Ellsworth M, Tucker C. Оценка эффективности комбинированной живой модифицированной вакцины против контрольного заражения вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота типов 1 и 2 в исследовании защиты плода при продолжительности иммунитета один год. Vet Therapeut 2006;7:283–294.

9. Meyer G, Deplanche M, Roux D и др. Защита плода от заражения вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота типа 1 после однократного введения живой аттенуированной вакцины. Vet J 2012;192:242–245.

10. Xue W, Mattick D, Smith L, Maxwell J. Защита плода от вируса вирусной диареи крупного рогатого скота типов 1 и 2 после применения живой модифицированной вирусной вакцины. Can J Vet Res 2009;73:292–297.

11. Ellsworth M, Fairbanks K, Behan S и др. Защита плода при контакте с телятами, персистентно инфицированными вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота типа 2, через шестнадцать месяцев после первичной вакцинации матерей. Vet Therapeut 2006;7:295–304.

12. Givens M, Marley M, Jones C и др. Защита от абортов и инфицирования плода после контакта с вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота и герпесвирусом крупного рогатого скота 1 во время стельности у телок мясных пород, получивших две дозы поливалентной живой модифицированной вирусной вакцины до случки. J Am Vet Med Assoc 2012;241:484–495.

13. Grooms D, Bolin S, Coe P, Borges R, Coutu C. Защита плода при постоянном контакте с вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота после введения коровам вакцины, содержащей инактивированный компонент вируса вирусной диареи крупного рогатого скота. Am J Vet Res 2007;68:1417–1422.

14. Leyh R, Fulton R, Stegner J и др. Защита плода у телок, вакцинированных живой модифицированной вирусной вакциной, содержащей вирус вирусной диареи крупного рогатого скота подтипов 1a и 2a, и контактировавших во время стельности с животными, персистентно инфицированными вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота подтипа 1b. Am J Vet Res 2011;72:367–375.

Инфекционные агенты: Эпизоотический аборт (Предгорный аборт)

Jeffrey L. Stott, Myra T. Blanchard и Mark L. Anderson

Школа ветеринарной медицины Калифорнийского университета, Дейвис, Калифорния, США

Вступление

Эпизоотический аборт крупного рогатого скота (ЭА), обычно называемый «предгорным абортом», впервые был признан в начале 1950-х годов в Калифорнии. Для ЭА характерны аборты на позднем сроке или рождение слабых телят от маток, которые паслись в предгорных районах Калифорнии, Невады и южного Орегона¹ в течение первого и второго триместров беременности. Заболевание было и остается основной причиной абортов у мясного скота в штате Калифорния; статистика по штатам Орегона и Невада отсутствует.^1–4

Применение методов молекулярной биологии к аутопсийным тканям больного плода в конечном итоге идентифицировало агент в 2005 году как дельта-протеобактерию. Последовательности 16S рРНК, полученные из патогена, установили 89,4% гомологию с Polyangium cellulosum, представителем отряда Myxococcales.⁶ Единственным другим патогеном млекопитающих в этом классе прокариот является Lawsonia intracellularis - дельта-протеобактерия, в основном связанная с энтеритом у свиней. Бактериальному агенту ЭА (баЭА) присвоят род и вид после завершения дальнейших исследований его характеристик.

Диагностика

Этиологический агент

Многочисленные поиски по выявлению этиологического агента ЭА охватывают по меньшей мере 50 лет. Эти усилия привели к выявлению ряда микроорганизмов-кандидатов на роль возбудителя заболевания, включая хламидиоз, неспецифический вирус (частицы типа С), Borrelia coriaceae и неспецифическую спирохету.⁵ Разработка в 2000 г. воспроизводимого метода передачи экспериментального заболевания облегчила усилия по выявлению этиологического агента. Инокуляция наивных стельных телок (срок стельности ~ 100 дней) криоконсервированными гомогенатами тимуса плода, полученными из отобранных ЭА-плодов, обеспечивала надежный механизм предсказуемой передачи возбудителя развивающемуся плоду с сопутствующим развитием классического ЭА. Исследования чувствительности к антибиотикам проводились с использованием экспериментов по передаче заболевания стельным телкам; агрессивное лечение пенициллином и/или тетрациклином во время заражения телки предотвращает последующее развитие заболевания у плода, предоставляя убедительные доказательства того, что этиологическим агентом был прокариот.⁵

Исторически ЭА диагностировали по комбинации данных, включающих уникальные патологии плода, повышенный уровень иммуноглобулина в сыворотке плода и анамнезу маток, пасущихся в областях, которые считались эндемичными для заболевания во время беременности.^2,3 Макро- и микроскопическая патология, связанная с ЭА, обычно хорошо выражена. Абортированные плоды, как правило, находятся в отличном состоянии (не аутолизированы), но имеют множество грубых аномалий, которые могут включать обширный асцит с избыточным количеством фибрина (рис. 61.1а), приводящий к вздутию живота, разбуханию печени, увеличению селезенки и лимфатических узлов (рис. 61.1b)), поражениям кожи (рис. 61.1c) и петехиальным кровоизлияниям на слизистых оболочках (полость рта, язык и веки) (рис. 61.1d) и в тимусе (рис. 61.2a). Микроскопически поражения широко распространены и имеют сосудистую ориентацию, характеризующуюся инфильтрацией лимфоцитами и мононуклеарными фагоцитами.^2,3 Очаговые некротические поражения могут присутствовать в организованных лимфоидных тканях, а в тимусе возникают патогномоничные (свойственные данной болезни) поражения, характеризующиеся истощением корковых тимоцитов и инфильтрацией макрофагами³ (рис. 61.2b).