Воспроизводство крупного рогатого скота

В другом исследовании, проведенном в Испании, увеличение числа жарких событий на 11–20 или 0–40 дни гестации было связано с потерей стельности между 28–34 и 80–86 днями.⁷⁷ В исследовании в Калифорнии, напротив, не было никакой связи между возникновением теплового стресса до или после осеменения при потере стельности на сроке между 31 и 45 днями.⁷⁸ Аналогично, отсутствовали сезонные колебания в потере стельности между днями 40–50 и 70–80 или между днями 70–80 и окончанием срока у молочного скота во Флориде.⁷⁹

Во время поздней стельности тепловой стресс может нарушить функцию плаценты и рост плода.^80–83 В результате наблюдается снижение последующего удоя молока у матери^80,81,83,84 и постнатальной скорости роста и иммунной функции теленка.⁸²

Способы управления

Лучший способ уменьшить влияние теплового стресса - охладить коров, изменив условия содержания животных. Например, уровень фертильности в израильских молочных фермах летом напрямую связан с величиной охлаждения, которое получают коровы.⁸⁵ Однако, во многих случаях летнее снижение фертильности происходит, несмотря на попытки обеспечить охлаждение.^85,86 Понимание клеточной и физиологической основ эмбриональных потерь во время теплового стресса позволило сформировать некоторые стратегии управления репродуктивными процессами, которые можно было бы использовать в сочетании с охлаждением.

Эмбриотрансфер

Единственный метод репродуктивного управления, который устойчиво демонстрирует улучшение фертильности у крупного рогатого скота во время теплового стресса, - это перенос эмбрионов. Улучшения фертильности при использовании переноса эмбрионов во время теплового стресса были замечены при использовании эмбрионов, полученных в результате суперовуляции^87–89 или in vitro (ЭКО) .^90–92 На одной коммерческой молочной ферме в Бразилии сезонные колебания рождаемости были устранены с помощью эмбриотрансфера.⁸⁹

Удаление фолликула

Работа, проведенная в Израиле, показала, что ускорение вскрытия фолликулов в яичнике осенью может ускорить восстановление фертильности после теплового стресса. Благоприятное влияние на качество ооцитов наблюдалось путем "перелистывания" фолликулярного пула (волна роста группы фолликулов) путем фолликулярной аспирации³⁰ , либо путем введения фолликулостимулирующего гормона⁹³ или бычьего соматотропина.⁹³ Ожидается, что такие обработки не будут эффективны летом, потому что фолликулы, появляющиеся в новом растущем пуле, также будут повреждены тепловым стрессом. Лечение лактирующих коров по протоколу с трехкратным введением гонадотропин-рилизинг-гормона и простагландина PGF2α для ускорения смены фолликулов летом и осенью не улучшало оплодотворяемость при первом ИО у повторнородящих коров, хотя тенденция к улучшению оплодотворяемости наблюдалась у первотелок.⁹⁴ Возможно, было бы замечено больше ответных реакций, если бы исследование было ограничено поздним летом или осенью.

Антиоксиданты

Обработки с целью улучшения фертильности летом посредством введения антиоксидантов дали неоднозначные результаты. Отсутствовало улучшение фертильности, когда коровам вводили витамин Е при осеменении,⁹⁵ делали многократные инъекции витамина Е и селена до и после отела,⁹⁶ или инъекции β-каротина через –6, –3 и 0 дней относительно осеменения.⁹⁷

Напротив, скармливание добавок с β-каротином в течение не менее 90 дней, начиная примерно через 15 дней после отела, увеличило долю коров, которые были стельными через 120 дней после отела.⁹⁸ Кроме того, лечение коров с помощью мелатониновых имплантатов летом сокращает количество открытых дней.⁹⁹ Интерпретация результатов исследования с мелатонином затруднена, поскольку мелатонин обладает многими биологическими свойствами, в том числе выступает в качестве антиоксиданта¹⁰⁰ , но также является важным медиатором фотопериодической регуляции.¹⁰¹

Генетический контроль эмбриональной резистентности к повышенной температуре

Исследование, проведенное летом в Бразилии на лактирующих голштинах, показало, что количество стельностей на осеменение было выше, когда коров осеменяли спермой быков породы Гир, чем когда осеменяли спермой быков голштинской породы.¹⁰² Такой эффект может объясняться генетическими различиями в устойчивости эмбриона к тепловому шоку или эффектом гетерозиса у эмбриона.

Ссылки

1. Gwazdauskas F, Thatcher W, Wilcox C. Физиологические, средовые и гормональные факторы во время осеменения, которые могут влиять на зачатие. J Dairy Sci 1973;56:873–877.

2. Ulberg L, Burfening P. Гибель эмбрионов вследствие неблагоприятного воздействия среды на сперматозоиды или яйцеклетки. J Anim Sci 1967;26:571–577.

3. Torres-Júnior JR de S, de FA Pires M, de Sá WF и др. Влияние теплового стресса у матери на рост фолликулов и способность ооцитов к развитию у крупного рогатого скота Bos indicus. Theriogenology 2008;69:155–166.

4. Ealy A, Drost M, Hansen P. Изменение устойчивости эмбрионов к неблагоприятным последствиям теплового стресса у коров по мере развития эмбрионов. J Dairy Sci 1993;76:2899–2905.

5. Edwards J, Ealy A, Monterroso V, Hansen P. Становление регулируемого температурой синтеза белка теплового шока 70 у преимплантационных эмбрионов крупного рогатого скота. Mol Reprod Dev 1997;48:25–33.

6. Ju J, Parks J, Yang X. Термоустойчивость ооцитов крупного рогатого скота, созревших in vitro, и эмбрионов после кратковременного теплового шока. Mol Reprod Dev 1999;53:336–340.

7. Sakatani M, Kobayashi S, Takahashi M. Влияние теплового шока на развитие in vitro и внутриклеточное окислительное состояние преимплантационных эмбрионов крупного рогатого скота. Mol Reprod Dev 2004;67:77–82.

8. Eberhardt B, Satrapa R, Capinzaiki C, Trinca L, Barros C. Влияние породы быка ( Bos taurus indicus по сравнению с Bos taurus taurus ) и породы коровы ( Bos taurus indicus , Bos taurus taurus и помесной) на устойчивость эмбрионов крупного рогатого скота к нагреванию. Anim Reprod Sci 2009;114:54–61.

9. Fair T. Развитие ооцитов млекопитающих: контрольные этапы формирования способности к развитию. Reprod Fertil Dev 2010;22:13–20.

10. Rocha A, Randel R, Broussard J и др. Высокие температура и влажность окружающей среды снижают качество ооцитов у коров Bos taurus, но не у коров Bos indicus. Theriogenology 1998;49:657–665.

11. Al-Katanani Y, Paula-Lopes F, Hansen P. Влияние сезона и воздействия теплового стресса на способность ооцитов голштинских коров к развитию. J Dairy Sci 2002;85:390–396.

12. Ferreira R, Ayres H, Chiaratti M и др. Низкая фертильность коров с повторными безрезультатными осеменениями во время летнего теплового стресса связана с низкой способностью ооцитов развиваться до стадии бластоцисты. J Dairy Sci 2011;94:2383–2392.

13. Zeron Y, Ocheretny A, Kedar O, Borochov A, Sklan D, Arav A. Сезонные изменения фертильности крупного рогатого скота: связь со способностью ооцитов к развитию, свойствами мембран и жирнокислотным составом фолликулов.

• Способность ооцитов к развитию, свойства мембран и жирнокислотный состав фолликулов. Reproduction 2001;121:447–454.

• Gendelman M, Roth Z. Сезонное воздействие на ооциты крупного рогатого скота на стадии зародышевого пузырька также проявляется изменениями уровней транскриптов в развивающихся эмбрионах, связанными со сниженной способностью к развитию. Biol Reprod 2012;86:1–9.

• Kawarsky S, Basrur P, Stubbings R, Hansen P, King W. Хромосомные аномалии у эмбрионов крупного рогатого скота и их влияние на развитие. Biol Reprod 1996;54:53–59.

• Sirard M. Фолликулярная среда и качество ооцитов, созревших in vitro. J Assist Reprod Genet 2011;28:483–488.

• Pohler K, Geary T, Atkins J, Perry G, Jinks E, Smith M. Фолликулярные факторы установления и сохранения беременности. Cell Tissue Res 2012;349:649–664.

• Badinga L, Thatcher W, Diaz T, Drost M, Wolfenson D. Влияние теплового стресса, вызванного условиями окружающей среды, на развитие фолликулов и стероидогенез у лактирующих голштинских коров. Theriogenology 1993; 39:797–810.

• Wolfenson D, Thatcher W, Badinga L и др. Влияние теплового стресса на развитие фолликулов в течение эстрального цикла у лактирующих молочных коров. Biol Reprod 1995;52:1106–1113.

• Shehab-El-Deen M, Leroy J, Fadel M, Saleh S, Maes D, Van Soom A. Биохимические изменения в фолликулярной жидкости доминантного фолликула у высокопродуктивных молочных коров, подвергшихся тепловому стрессу в ранний послеродовой период. Anim Reprod Sci 2010;117:189–200.

• Wolfenson D, Lew B, Thatcher W, Graber Y, Meidan R. Влияние сезонного и острого теплового стресса на выработку стероидов доминантными фолликулами у коров. Anim Reprod Sci 1997;47:9–19.

• Wise M, Armstrong D, Huber J, Hunter R, Wiersma F. Гормональные изменения у лактирующих молочных коров в ответ на тепловой стресс. J Dairy Sci 1988;71:2480–2485.

• Gilad E, Meidan R, Berman A, Graber Y, Wolfenson D. Влияние тонической и индуцированной ГнРГ секреции гонадотропинов в связи с концентрацией эстрадиола в плазме у циклирующих коров. J Reprod Fertil 1993;99:315–321.

• Bridges P, Brusie M, Fortune J. Повышенная температура (тепловой стресс) in vitro снижает секрецию андростендиона и эстрадиола и повышает секрецию прогестерона фолликулярными клетками доминантных фолликулов крупного рогатого скота. Domest Anim Endocrinol 2005;29:508–522.

• Wolfenson D, Roth Z, Meidan R. Нарушение воспроизводства у крупного рогатого скота, подвергшегося тепловому стрессу: фундаментальные и прикладные аспекты. Anim Reprod Sci 2000;60–61:535–547.

• Bisinotto R, Chebel R, Santos J. На фертильность молочных коров влияет волна развития фолликулов, в ходе которой формируется овуляторный фолликул, а не циклический статус. J Dairy Sci 2010;93:3578–3587.

• Denicol A, Lopes G Jr, Mendonça L и др. Низкая концентрация прогестерона во время развития первой фолликулярной волны снижает частоту наступления беременности на одно осеменение у лактирующих молочных коров. J Dairy Sci 2012;95:1794–1806.

• Al-Katanani Y, Webb D, Hansen P. Факторы, влияющие на сезонные колебания 90-дневного показателя отсутствия повторной охоты после первого осеменения у лактирующих голштинских коров в жарком климате. J Dairy Sci 1999;82:2611–2615.

• Huang C, Tsuruta S, Bertrand J, Misztal I, Lawlor T, Clay J. Влияние условий окружающей среды на показатели зачатия у голштинских коров в штатах Нью-Йорк и Джорджия. J Dairy Sci 2008;91:818–825.

• Roth Z, Arav A, Bor A, Zeron Y, Braw-Tal R, Wolfenson D. Повышение качества ооцитов, полученных осенью, за счёт усиленного удаления повреждённых фолликулов у коров, ранее подвергшихся тепловому стрессу. Reproduction 2001;122:737–744.

• Webb R, Campbell B. Развитие доминантного фолликула: механизмы отбора и поддержания качества ооцитов. Soc Reprod Fertil Suppl 2007;64:141–163.

• Roth Z, Meidan R, Shaham-Albalancy A, Braw-Tal R, Wolfenson D. Отсроченное влияние теплового стресса на выработку стероидов в фолликулах крупного рогатого скота среднего размера и предовуляторных фолликулах. Reproduction 2001;121: 745–751.

• Putney D, Mullins S, Thatcher W, Drost M, Gross T. Эмбриональное развитие у молочных коров с индуцированной суперовуляцией, подвергшихся воздействию повышенной

температуры окружающей среды в период от начала течки до осеменения. Anim Reprod Sci 1989;19:37–51.

1. Gwazdauskas F, Thatcher W, Kiddy C, Paape M, Wilcox C. Характер гормональных изменений при тепловом стрессе после индуцированной солью PGF2α-трометамина регрессии жёлтого тела у тёлок. Theriogenology 1981; 16:271–285.

2. Payton R, Romar R, Coy P, Saxton A, Lawrence J, Edwards J. Восприимчивость ооцитов крупного рогатого скота на стадии зародышевого пузырька, полученных из антральных фолликулов, к прямому воздействию теплового стресса in vitro. Biol Reprod 2004;71:1303–1308.

3. Roth Z, Hansen PJ. Участие апоптоза в нарушении способности ооцитов к развитию под действием теплового шока у крупного рогатого скота. Biol Reprod 2004; 71:1898–1906.

4. Roth Z, Hansen PJ. Нарушение созревания ядра и перестройка элементов цитоскелета в ооцитах крупного рогатого скота, подвергнутых тепловому шоку во время созревания. Reproduction 2005;129:235–244.

5. Ju J, Jiang S, Tseng J, Parks J, Yang X. Тепловой шок снижает способность ооцитов крупного рогатого скота к развитию и изменяет конфигурацию веретена деления. Theriogenology 2005;64:1677–1689.

6. Soto P, Smith L. Пептид BH4, производный от Bcl-xL, и пептид — ингибитор Bax подавляют апоптотические изменения митохондрий в ооцитах крупного рогатого скота, подвергнутых тепловому стрессу. Mol Reprod Dev 2009;76:637–646.

7. Andreu-Vázquez C, López-Gatius F, García-Ispierto I, MayaSoriano MJ, Hunter RH, López-Béjar M. Вызывает ли тепловой стресс исчезновение сплошного слоя кортикальных гранул под плазматической мембраной во время созревания ооцита? Zygote 2010;18:293–299.

8. Roth Z, Hansen P. Сфингозин-1-фосфат защищает ооциты крупного рогатого скота от теплового шока во время созревания. Biol Reprod 2004;71:2072–2078.

9. Kalo D, Roth Z. Участие сфинголипида церамида в апоптозе ооцитов крупного рогатого скота, вызванном тепловым шоком. Reprod Fertil Dev 2011;23:876–888.

10. Edwards J, Saxton A, Lawrence J, Payton R, Dunlap J. Воздействие повышенной температуры, соответствующей физиологическим условиям, ускоряет созревание ооцитов крупного рогатого скота in vitro. J Dairy Sci 2005;88: 4326–4333.

11. Rispoli L, Lawrence J, Payton R и др. Различные последствия воздействия теплового стресса во время мейотического созревания: развитие эмбрионов после химической активации и после оплодотворения ооцитов крупного рогатого скота. Reproduction 2011;142:831–843.

12. Sartori R, Sartor-Bergfelt R, Mertens S, Guenther J, Parrish J, Wiltbank M. Оплодотворение и раннее эмбриональное развитие у тёлок и лактирующих коров летом, а также у лактирующих и сухостойных коров зимой. J Dairy Sci 2002;85:2803–2812.

13. Meyerhoeffer D, Wettemann R, Coleman S, Wells M. Показатели воспроизводства быков мясных пород во время и после воздействия повышенной температуры окружающей среды. J Anim Sci 1985;60:352–357.

14. Monterroso V, Drury K, Ealy A, Howell J, Hansen P. Влияние теплового шока на функцию сперматозоидов быка после замораживания и оттаивания. Theriogenology 1995;44:947–961.

15. Hendricks K, Martins L, Hansen P. Последствия для эмбриона крупного рогатого скота его происхождения от сперматозоида, подвергшегося старению после эякуляции и тепловому шоку: развитие до стадии бластоцисты и соотношение полов. J Reprod Dev 2009;55:69–74.

16. Burfening P, Ulberg L. Выживаемость эмбрионов после культивирования сперматозоидов кролика при 38° и 40 ° C. J Reprod Fertil 1968;15:87–92.

17. Howarth B Jr, Alliston C, Ulberg L. Значение среды матки для сперматозоидов кролика до оплодотворения. J Anim Sci 1965;24:1027–1032.

18. Sakatani M, Alvarez N, Takahashi M, Hansen P. Последствия физиологического теплового шока, начинающегося на стадии зиготы, для эмбрионального развития и экспрессии генов стрессового ответа у крупного рогатого скота. J Dairy Sci 2012;95:3080–3091.

19. Edwards J, Hansen P. Различия в реакции ооцитов и доимплантационных эмбрионов крупного рогатого скота на тепловой шок. Mol Reprod Dev 1997;46:138–145.

1. Rivera R, Kelley K, Erdos G, Hansen P. Изменения ультраструктурной морфологии двухклеточных эмбрионов крупного рогатого скота, полученных in vitro и in vivo, после теплового шока, соответствующего физиологическим условиям. Biol Reprod 2003;69:2068–2077.

2. Rivera R, Kelley K, Erdos G, Hansen P. Реорганизация микрофиламентов и микротрубочек под действием теплового стресса в двухклеточных эмбрионах крупного рогатого скота. Biol Reprod 2004;70:1852–1862.

3. Sakatani M, Kobayashi S, Takahashi M. Влияние теплового шока на развитие in vitro и внутриклеточное окислительное состояние доимплантационных эмбрионов крупного рогатого скота. Mol Reprod Dev 2004;67:77–82.

4. de Castro e Paula L, Hansen P. Изменение влияния теплового шока на развитие и апоптоз культивируемых доимплантационных эмбрионов крупного рогатого скота под действием концентрации кислорода и дитиотреитола. Mol Reprod Dev 2008;75:1338–1350.

5. Rivera R, Dahlgren G, De Castro E, Paula L, Kennedy R, Hansen P. Действие теплового стресса на двухклеточные эмбрионы крупного рогатого скота: метаболизм кислорода, содержание глутатиона и АТФ и динамика развития. Reproduction 2004;128:33–42.

6. Sakatani M, Suda I, Oki T, Kobayashi S, Kobayashi S, Takahashi M. Влияние антоцианов фиолетового батата на развитие и внутриклеточный окислительно-восстановительный статус доимплантационных эмбрионов крупного рогатого скота, подвергнутых тепловому шоку. J Reprod Dev 2007;53:605–614.

7. Paula-Lopes F, Al-Katanani Y, Majewski A, McDowell L, Hansen P. Изменение антиоксидантного статуса не улучшает фертильность лактирующих коров и выживаемость эмбрионов, подвергнутых тепловому шоку. J Dairy Sci 2003;86:2343–2351.

8. Ealy A, Howell J, Monterroso V, Aréchiga C, Hansen PJ. Изменения чувствительности эмбрионов крупного рогатого скота к тепловому шоку в ходе развития и использование антиоксидантов для защиты от теплового воздействия. J Anim Sci 1995;73:1401–1407.

9. Malayer J, Hansen P. Различия между коровами пород брахман и голштинская по изменениям синтеза и секреции белка в яйцеводах и эндометрии матки, вызванным тепловым шоком. J Anim Sci 1990;68:266–280.

10. Fear J, Hansen P. Изменения экспрессии генов, участвующих в регуляции апоптоза, в ходе развития доимплантационного эмбриона крупного рогатого скота. Biol Reprod 2011;84:43–51.

11. Chandolia R, Peltier M, Tian W, Hansen P. Транскрипционный контроль развития, синтеза белка и индуцированного нагреванием синтеза белка теплового шока 70 в 2-клеточных эмбрионах крупного рогатого скота. Biol Reprod 1999;61:1644–1648.

12. Sakatani M, Bonilla L, Dobbs K и др. Изменения транскриптома эмбрионов крупного рогатого скота на стадии морулы, вызванные тепловым шоком: связь с приобретением термотолерантности в ходе развития. Reprod Biol Endocrinol 2013;11:3.

13. Lim J, Liou S, Hansel W. Внутрицитоплазматическая концентрация глутатиона и роль β-меркаптоэтанола в преимплантационном развитии эмбрионов крупного рогатого скота. Theriogenology 1996; 46:429–439.

14. Brad A, Hendricks K, Hansen P. Блокирование апоптоза у двухклеточных эмбрионов крупного рогатого скота связано с подавлением активации каспазы-9 и опосредованного каспазами повреждения ДНК. Reproduction 2007;134:789–797.

15. Carambula S, Oliveira L, Hansen P. Подавление индуцированного апоптоза у 2-клеточного эмбриона крупного рогатого скота связано с метилированием ДНК и деацетилированием гистонов. Biochem Biophys Res Commun 2009; 388:418–421.

16. Paula-Lopes F, Hansen P. Апоптоз — адаптивная реакция преимплантационных эмбрионов крупного рогатого скота, способствующая их выживанию после теплового шока. Biochem Biophys Res Commun 2002;295:37–42.

17. Jousan F, Hansen P. Инсулиноподобный фактор роста I повышает устойчивость преимплантационных эмбрионов крупного рогатого скота к тепловому шоку посредством механизмов, не связанных с его антиапоптотическим действием, для которого необходима передача сигнала через PI3K. Mol Reprod Dev 2007;74:189–196.

18. Paula-Lopes F, Chase C Jr, Al-Katanani Y и др. Генетические различия в устойчивости клеток крупного рогатого скота к тепловому шоку: различия в реакции преимплантационных эмбрионов, тканей репродуктивного тракта

19. и лимфоцитов на повышение температуры культивирования между породами, выведенными в умеренном и жарком климате. Reproduction 2003;125:285–294.

20. Hernández-Cerón J, Chase C Jr, Hansen P. Различия в устойчивости к нагреванию между преимплантационными эмбрионами крупного рогатого скота пород брахман, ромосинуано и ангус. J Dairy Sci 2004;87:53–58.

21. Satrapa R, Nabhan T, Silva C и др. Влияние породы быка-производителя (Bos indicus в сравнении с Bos taurus) и интервала между убоем и аспирацией ооцитов на устойчивость эмбрионов крупного рогатого скота, полученных in vitro, к тепловому стрессу. Theriogenology 2011;76:1162–1167.

22. Silva C, Sartorelli E, Castilho A и др. Влияние теплового стресса на развитие, качество и выживаемость эмбрионов Bos indicus и Bos taurus, полученных in vitro. Theriogenology 2013;79:351–357.

23. Block J, Chase C Jr, Hansen P. Наследование устойчивости преимплантационных эмбрионов крупного рогатого скота к тепловому шоку: сравнительная значимость материнского и отцовского вклада. Mol Reprod Dev 2002; 63:32–37.

24. Maya-Soriano M, López-Gatius F, Andreu-Vázquez C, LópezBéjar M. Ооциты крупного рогатого скота обладают более высокой устойчивостью к тепловому шоку в тёплое время года, чем в холодное. Theriogenology 2013;79:299–305.

25. García-Ispierto I, López-Gatius F, Santolaria P и др. Связь между тепловым стрессом в периимплантационный период и ранней потерей плода у молочного скота. Theriogenology 2006;65:799–807.

26. Santolaria P, López-Gatius F, García-Ispierto I и др. Влияние накопленного воздействия стрессовых условий и эпизодов резких изменений микроклимата фермы на потерю эмбриона на поздней стадии развития или плода на ранней стадии развития у высокопродуктивных молочных коров. Int J Biometeorol 2010;54:93–98.

27. Chebel R, Santos J, Reynolds J, Cerri R, Juchem S, Overton M. Факторы, влияющие на частоту зачатия после искусственного осеменения и потерю беременности у лактирующих молочных коров. Anim Reprod Sci 2004;84:239–255.

28. Jousan F, Drost M, Hansen P. Факторы, связанные с потерей плода на ранних, средних и поздних сроках стельности у лактирующих и нелактирующих коров голштинской породы в жарком климате. J Anim Sci 2005;83:1017–1022.

29. Collier R, Doelger S, Head H, Thatcher W, Wilcox C. Влияние теплового стресса во время стельности на концентрацию гормонов у матери, массу телёнка при рождении и послеродовую молочную продуктивность коров голштинской породы. J Anim Sci 1982;54:309–319.

30. Wolfenson D, Flamenbaum I, Berman A. Влияние снижения теплового стресса в сухостойный период на концентрацию прогестерона перед отёлом, массу телёнка при рождении и молочную продуктивность. J Dairy Sci 1988;71:809–818.

31. Tao S, Monteiro A, Thompson I, Hayen M, Dahl G. Влияние теплового стресса у матери на поздних сроках стельности на рост и иммунную функцию телят молочных пород. J Dairy Sci 2012;95:7128–7136.

32. Thompson I, Tao S, Branen J, Ealy A, Dahl G. Влияние условий окружающей среды на концентрацию специфичного для беременности белка B на поздних сроках стельности у молочного скота. J Anim Sci 2013;91:168–173.

33. do Amaral B, Connor E, Tao S, Hayen J, Bubolz J, Dahl G. Снижение теплового стресса в сухостойный период: улучшает ли охлаждение переход к лактации? J Dairy Sci 2009;92:5988–5999.

34. Flamenbaum I, Galon N. Меры по снижению теплового стресса для повышения плодовитости молочных коров в Израиле. J Reprod Dev 2010;56(доп.): S36–S41.

35. Hansen P, Aréchiga C. Стратегии управления воспроизводством у молочных коров, испытывающих тепловой стресс. J Anim Sci 1999;77(доп. 2):36–50.

36. Putney D, Drost M, Thatcher W. Влияние летнего теплового стресса на частоту наступления стельности у лактирующих молочных коров после переноса эмбрионов или искусственного осеменения. Theriogenology 1989; 31:765–778.

37. Drost M, Ambrose J, Thatcher M и др. Частота зачатия после искусственного осеменения или переноса эмбрионов у лактирующих молочных коров летом во Флориде. Theriogenology 1999;52: 1161–1167.

38. Rodriques C, Ayres H, Reis E, Nichi M, Bo G, Baruselli P. Частота наступления стельности после искусственного осеменения и переноса эмбрионов у высокопродуктивных коров голштинской породы в тропических условиях. В кн.: Материалы 15-го Международного конгресса по репродукции животных , 2004, т. 2, с. 396 (аннотация).