Воспроизводство крупного рогатого скота

• фолликулярной фазы полового цикла коров. Biol Reprod 1995;52:288–296.

• Kesner J, Convey E, Anderson C. Данные о том, что эстрадиол вызывает предовуляторный выброс лютеинизирующего гормона у крупного рогатого скота, сначала повышая чувствительность гипофиза к рилизинг-гормону лютеинизирующего гормона (LHRH), а затем усиливая высвобождение LHRH. Endocrinology 1981;108:1386–1391.

• Evans N, Richter T, Skinner D, Robinson J. Нейроэндокринные механизмы, лежащие в основе влияния прогестерона на вызванный эстрадиолом выброс GnRH и лютеинизирующего гормона. Reprod Suppl 2002;59:57–66.

• Caraty A, Fabre-Nys C, Delaleu B и др. . Данные о том, что медиобазальный гипоталамус является основным местом действия эстрадиола при индукции предовуляторного выброса гонадотропин-рилизинг-гормона у овец. Endocrinology 1998;139:1752–1760.

• Clarke I, Pompolo S, Scott C и др. . Клетки дугообразного и вентромедиального ядер гипоталамуса овец после удаления яичников, реагирующие на эстроген: исследование с применением иммуногистохимического выявления белка Fos. J Neuroendocrinol 2001;13:934–941.

• Schoenemann H, Humphrey W, Crowder M, Nett T, Reeves J. Рецепторы рилизинг-гормона лютеинизирующего гормона в гипофизе коров после удаления яичников и воздействия стероидных гормонов яичников. Biol Reprod 1985;32:574–583.

• Caraty A, Skinner D. Предварительное воздействие прогестерона необходимо для полного проявления положительной обратной связи эстрадиола при индукции предовуляторного выброса гонадотропин-рилизинг-гормона у овец. Endocrinology 1999;140:165–170.

• Clarke I, Cummins J. Прямое влияние эстрогена и прогестерона на секрецию гонадотропинов гипофизом у овец после удаления яичников. Neuroendocrinology 1984;39:267–274.

• Williams G, Petersen B, Tilton J. Реакция гипофиза и яичников коров после отёла на предварительное воздействие прогестерона и одно- или двукратное введение гонадотропин-рилизинг-гормона. Theriogenology 1982;18:561–572.

• Gümen A, Wiltbank M. Изменение действия эстрадиола на гипоталамус вследствие отсутствия воздействия прогестерона может вызывать фолликулярные кисты у крупного рогатого скота. Biol Reprod 2002;66:1689–1695.

• Padmanabhan V, Brown M, Dahl G и др. . Нейроэндокринная регуляция секреции фолликулостимулирующего гормона (FSH): III. Существует ли у овариэктомированных овец и овец в лютеиновой фазе компонент эпизодической секреции FSH, не зависящий от гонадотропин-рилизинг-гормона? Endocrinology 2003;144:1380–1392.

• Dhariwal A, Nallar R, Batt M, McCann S. Разделение фактора высвобождения фолликулостимулирующего гормона и фактора высвобождения лютеинизирующего гормона. Endocrinology 1965;76:290–294.

• Williams G, Talavera F, Petersen B, Tilton J. Одновременная секреция фолликулостимулирующего и лютеинизирующего гормонов у мясных коров в ранний послеродовой период: влияние сосания телёнком и небольшого повышения системного уровня прогестерона. Biol Reprod 1983;29:362–373.

• Walters D, Schams D, Schallenberger E. Пульсирующая секреция гонадотропинов, яичниковых стероидов и яичникового окситоцина в лютеиновую фазу полового цикла у коровы. J Reprod Fertil 1984;71:479–491.

• Bolt D, Rollins R. Разработка и применение радиоиммунологического метода определения фолликулостимулирующего гормона крупного рогатого скота. J Anim Sci 1983;56:146–154.

• Miller K, Bolt D. Введение фолликулярной жидкости крупного рогатого скота овариэктомированным овцам снижает секрецию FSH, не изменяя секрецию LH. Theriogenology 1985;24:211–216.

• Gross D, Turgeon J, Waring D. Туберальная часть гипофиза овцы: естественный источник частично очищенных гонадотропных клеток, секретирующих лютеинизирующий гормон in vitro. Endocrinology 1984;114:2084–2091.

• Bastings E, Beckers A, Reznik M, Beckers J. Иммуноцитохимические данные о выработке лютеинизирующего и фолликулостимулирующего гормонов в разных клетках у крупного рогатого скота. Biol Reprod 1991;45:788–796.

• Amstalden M, Zieba D, Garcia M и др. . Данные, свидетельствующие о том, что GnRH-III миноги не вызывает избирательного высвобождения FSH у крупного рогатого скота. Reproduction 2004;127:35–43.

• Walters D, Schallenberger E. Пульсирующая секреция гонадотропинов, яичниковых стероидов и яичникового окситоцина в периовуляторный период полового цикла у коровы. J Reprod Fertil 1984;71:503–512.

• Turzillo A, Fortune J. Подавление вторичного подъёма уровня FSH фолликулярной жидкостью крупного рогатого скота связано с задержкой развития фолликулов яичника у тёлок. J Reprod Fertil 1990;89:643–653.

• Lussier J, Carruthers T, Murphy B. Влияние фолликулярной жидкости крупного рогатого скота и частично очищенного ингибина крупного рогатого скота на высвобождение FSH и LH культивируемыми клетками гипофиза крупного рогатого скота. Reprod Nutr Dev 1993;33:109–119.

• Findlay J, Doughton B, Robertson D, Forage R. Влияние иммунизации против рекомбинантной альфа-субъединицы ингибина крупного рогатого скота на концентрации гонадотропинов в крови овец. J Endocrinol 1989;120:59–65.

• Medan M, Akagi S, Kaneko H, Watanabe G, Tsonis C, Taya K. Влияние повторной иммунизации тёлок против ингибина на гормональные профили и частоту овуляции. Reproduction 2004;128:475–482.

• Kaneko H, Nakanishi Y, Taya K и др. . Данные о том, что ингибин является важным фактором регуляции секреции FSH в середине лютеиновой фазы у коров. J Endocrinol 1993;136:35–41.

• Tilbrook A, de Kretser D, Clarke I. Рекомбинантный ингибин A человека и тестостерон действуют непосредственно на гипофиз, снижая концентрацию FSH в плазме крови кастрированных баранов. J Endocrinol 1993;138:181–189.

• Sharma T, Nett T, Karsch F и др. . Нейроэндокринная регуляция секреции FSH: IV. Гипоталамическая регуляция белков гипофиза, регулирующих FSH, и её связь с изменениями синтеза и секреции FSH. Biol Reprod 2012;86:171.

• Cupp A, Kojima F, Roberson M и др. . Повышение концентрации 17 бета-эстрадиола по-разному влияет на секрецию лютеинизирующего и фолликулостимулирующего гормонов и количество мРНК субъединиц гонадотропинов в фолликулярную фазу полового цикла у крупного рогатого скота. Biol Reprod 1995;52:288–296.

• Martin G, Price C, Thiéry J, Webb R. Взаимодействие ингибина, эстрадиола и прогестерона в регуляции секреции гонадотропинов у овец. J Reprod Fertil 1988;82:319–328.

• Bilezikjian L, Corrigan A, Blount A, Vale W. Уровни матричной рибонуклеиновой кислоты фоллистатина и субъединиц ингибина в гипофизе по-разному регулируются местными и гормональными факторами. Endocrinology 1996;137:4277–4284.

• Padmanabhan V, Sharma T. Нейроэндокринная и паракринная регуляция фолликулостимулирующего гормона. Arch Med Res 2001;32:533–543.

• Lumpkin M, McCann S. Влияние разрушения дорсальной части переднего гипоталамуса на секрецию фолликулостимулирующего гормона у крысы. Endocrinology 1984;115:2473–2480.

• Lumpkin M, McDonald J, Samson W, McCann S. Разрушение дорсальной области переднего гипоталамуса подавляет пульсирующее высвобождение фолликулостимулирующего гормона, но не лютеинизирующего гормона. Neuroendocrinology 1989;50:229–235.

• Padmanabhan V, McFadden K, Mauger D, Karsch F, Midgley A. Нейроэндокринная регуляция секреции фолликулостимулирующего гормона (FSH). I. Прямые доказательства существования отдельных эпизодического и базального компонентов секреции FSH. Endocrinology 1997;138:424–432.

• Day M, Imakawa K, Zalesky D, Kittok R, Kinder J. Влияние ограничения энергетической ценности рациона в препубертатный период на секрецию лютеинизирующего гормона и реакцию гипофиза на гонадотропин-рилизинг-гормон у тёлок. J Anim Sci 1986;62:1641–1648.

• McCann J, Hansel W. Взаимосвязь метаболизма инсулина и глюкозы с функциями гипофиза и яичников у голодавших тёлок. Biol Reprod 1986;34:630–641.

• Kadokawa H, Yamada Y. Усиливающее влияние кратковременного голодания на подавление этанолом пульсирующего высвобождения лютеинизирующего гормона посредством эстрогензависимого механизма у тёлок голштинской породы. Theriogenology 1999;51:673–680.

• Amstalden M, Garcia M, Stanko R и др. . Центральное введение рекомбинантного овечьего лептина нормализует уровень инсулина в плазме и стимулирует

ранее не описанную гиперсекрецию лютеинизирующего гормона после кратковременного голодания у взрослых коров мясных пород. Biol Reprod 2002;66:1555–1561.

1. Amstalden M, Garcia M, Williams S и др. . Экспрессия гена лептина, уровень циркулирующего лептина и пульсирующая секреция лютеинизирующего гормона быстро реагируют на кратковременное голодание у тёлок в препубертатный период: связь с уровнями циркулирующего инсулина и инсулиноподобного фактора роста I(1). Biol Reprod 2000;63:127–133.

2. Maciel M, Zieba D, Amstalden M, Keisler D, Neves J, Williams G. Лептин предотвращает вызванное голоданием снижение пульсирующей секреции лютеинизирующего гормона и усиливает его высвобождение под действием гонадотропин-рилизинг-гормона у тёлок. Biol Reprod 2004;70:229–235.

3. Cagampang F, Maeda K, Tsukamura H, Ohkura S, Ota K. Участие яичниковых стероидов и эндогенных опиоидов в вызванном голоданием подавлении пульсирующего высвобождения LH у крыс с удалёнными яичниками. J Endocrinol 1991;129:321–328.

4. I’Anson H, Manning J, Herbosa C и др. . Центральное торможение секреции гонадотропин-рилизинг-гормона у самок овец с задержкой роста и гипогонадотропным состоянием. Endocrinology 2000;141:520–527.

5. Leonhardt S, Shahab M, Luft H, Wuttke W, Jarry H. Снижение секреции лютеинизирующего гормона, вызванное длительным ограничением кормления у самцов крыс, связано с повышенной экспрессией ферментов синтеза ГАМК без изменения экспрессии гена GnRH. J Neuroendocrinol 1999;11:613–619.

6. Kile J, Alexander B, Moss G, Hallford D, Nett T. Гонадотропин-рилизинг-гормон устраняет отрицательное влияние снижения энергетической ценности рациона на синтез и секрецию гонадотропинов у овцематок. Endocrinology 1991;128:843–849.

7. Kaiser U, Jakubowiak A, Steinberger A, Chin W. Различное влияние частоты импульсов гонадотропин-рилизинг-гормона (GnRH) на уровни матричной рибонуклеиновой кислоты субъединиц гонадотропинов и рецептора GnRH in vitro. Endocrinology 1997;138:1224–1231.

8. Clarke I, Cummins J. Значение небольших импульсов гонадотропин-рилизинг-гормона. J Endocrinol 1987;113:413–418.

9. Wade G, Jones J. Нейроэндокринология бесплодия, обусловленного питанием. Am J Physiol 2004;287:R1277–R1296.

10. Levin B. Нейроны, воспринимающие метаболические сигналы, и регуляция энергетического гомеостаза. Physiol Behav 2006;89:486–489.

11. Migrenne S, Le Foll C, Levin B, Magnan C. Восприятие липидных сигналов головным мозгом и нервная регуляция энергетического баланса. Diabetes Metab 2011;37:83–88.

12. Clarke I, Horton R, Doughton B. Исследование механизма, посредством которого вызванная инсулином гипогликемия снижает секрецию лютеинизирующего гормона у овцематок с удалёнными яичниками. Endocrinology 1990;127:1470–1476.

13. Bucholtz D, Vidwans N, Herbosa C, Schillo K, Foster D. Метаболические связи между ростом и размножением. V. Пульсирующая секреция лютеинизирующего гормона зависит от доступности глюкозы. Endocrinology 1996;137:601–607.

14. Rutter L, Manns J. Секреция гонадотропинов в фолликулярную фазу у циклирующих коров мясных пород после отёла при гипогликемии, вызванной флоризином. J Anim Sci 1988;66:1194–1200.

15. Schreihofer D, Renda F, Cameron J. Стимуляция секреции лютеинизирующего гормона кормлением у самцов макак-резусов не зависит от повышения концентрации глюкозы в крови. Endocrinology 1996;137:3770–3776.

16. Smith M, Jennes L. Нервные сигналы, непосредственно регулирующие нейроны GnRH в течение эстрального цикла. Reproduction 2001;122:1–10.

17. Clarkson J, Herbison A. Развитие ГАМК- и глутаматной передачи сигналов в нейронах GnRH в связи с половым созреванием. Mol Cell Endocrinol 2006;254–255:32–38.

18. Crown A, Clifton D, Steiner R. Передача сигналов нейропептидами в координации обмена веществ и размножения. Neuroendocrinology 2007;86:175–182.

19. Zieba D, Amstalden M, Williams G. Регуляторная роль лептина в размножении и обмене веществ: сравнительный обзор. Domest Anim Endocrinol 2005;29:166–185.

20. Ehrhardt R, Slepetis R, Siegal-Willott J, Van Amburgh M, Bell A, Boisclair Y. Разработка специфического радиоиммунологического метода для измерения физиологических изменений уровня циркулирующего лептина у крупного рогатого скота и овец. J Endocrinol 2000;166:519–528.

21. Garcia M, Amstalden M, Williams S и др. . Уровень лептина в сыворотке крови и экспрессия его гена в жировой ткани в период полового созревания, в течение эстрального цикла и в разные сезоны у крупного рогатого скота. J Anim Sci 2002;80:2158–2167.

22. Zieba D, Amstalden M, Morton S, Maciel M, Keisler D, Williams G. Регуляторная роль лептина на уровне гипоталамо-гипофизарной системы до и после полового созревания у крупного рогатого скота. Biol Reprod 2004;71:804–812.

23. Amstalden M, Zieba D, Edwards J и др.Лептин действует на аденогипофиз крупного рогатого скота, усиливая базальную и опосредованную гонадотропин-рилизинг-гормоном секрецию лютеинизирующего гормона; различия в эффекте зависят от предшествующего питания.Biol Reprod 2003;69:1539–1544.

24. Cheung C, Clifton D, Steiner R. Нейроны, вырабатывающие проопиомеланокортин, являются непосредственными мишенями лептина в гипоталамусе.Endocrinology 1997;138:4489–4492.

25. Schwartz M, Seeley R, Campfield L, Burn P, Baskin D. Выявление мишеней действия лептина в гипоталамусе крыс.J Clin Invest 1996;98:1101–1106.

26. McShane T, Petersen S, McCrone S, Keisler D. Влияние ограничения кормления на экспрессию генов нейропептида Y, проопиомеланокортина и гонадотропин-рилизинг-гормона в гипоталамусе овец.Biol Reprod 1993;49:831–839.

27. Schwartz M, Seeley R, Woods S и др.Лептин повышает экспрессию мРНК проопиомеланокортина в ростральной части дугообразного ядра гипоталамуса.Diabetes 1997;46:2119–2123.

28. Roa J, Herbison A. Непосредственная регуляция возбудимости нейронов, вырабатывающих гонадотропин-рилизинг-гормон, нейропептидами POMC- и NPY-нейронов дугообразного ядра у самок мышей.Endocrinology 2012;153:5587–5599.

29. Kinder J, Day M, Kittok R. Эндокринная регуляция полового созревания у коров и овец.J Reprod Fertil Suppl 1987;34:167–186.

30. Foster D, Jackson L. Половое созревание у овец. В кн.: Neill JD (ред.)Физиология репродукции Кнобила и Нейла, 3-е изд. Нью-Йорк: Academic Press, 2006, с. 2127–2176.

31. Foster D, Karsch F. Развитие механизма регуляции предовуляторного пика лютеинизирующего гормона у овец.Endocrinology 1975;97:1205–1209.

32. Schillo K, Dierschke D, Hauser E. Вызванная эстрогеном секреция лютеинизирующего гормона у тёлок до и после полового созревания.Theriogenology 1983;19:727–738.

33. Day M, Imakawa K, Garcia-Winder M и др.Эндокринные механизмы полового созревания у тёлок: регуляция секреции лютеинизирующего гормона эстрадиолом по механизму отрицательной обратной связи.Biol Reprod 1984;31:332–341.

34. Day M, Imakawa K, Wolfe P, Kittok R, Kinder J. Эндокринные механизмы полового созревания у тёлок. Роль рецепторов эстрадиола в гипоталамусе и гипофизе в отрицательном влиянии эстрадиола на секрецию лютеинизирующего гормона по механизму обратной связи.Biol Reprod 1987;37:1054–1065.

35. Smith J. Контроль экспрессии Kiss1 половыми стероидами у овец и грызунов: сравнительные аспекты.Peptides 2009;30:94–102.

36. García-Galiano D, Pinilla L, Tena-Sempere M. Половые стероиды и регуляция системы Kiss1: роль в развитии и основные регуляторные эффекты.J Neuroendocrinol 2012;24:22–33.

37. Clarkson J. Влияние эстрадиола на нейроны, вырабатывающие кисспептин, в период полового созревания.Front Neuroendocrinol 2013;34:120–131.

38. Messager S, Chatzidaki E, Ma D и др.Кисспептин непосредственно стимулирует секрецию гонадотропин-рилизинг-гормона через рецептор 54, сопряжённый с G-белком.Proc Natl Acad Sci USA 2005;102:1761–1766.

39. Kadokawa H, Matsui M, Hayashi K и др.Периферическое введение кисспептина-10 повышает концентрацию в плазме как GH, так и LH у тёлок голштинской породы до полового созревания.J Endocrinol 2008;196:331–334.

40. Chenoweth P. Некоторые аспекты воспроизводства у самок Bos indicus крупного рогатого скота: обзор.Aust Vet J 1994;71:422–426.

1. Nogueira G. Половое созревание у южноамериканского Bos indicus (зебу).Anim Reprod Sci 2004;82–83:361–372.

2. Short R, Bellows R. Взаимосвязь между приростом массы тела, возрастом полового созревания и воспроизводительными показателями тёлок.J Anim Sci 1971;32:127–131.

3. Arije G, Wiltbank J. Возраст и масса тела при половом созревании у тёлок герефордской породы.J Anim Sci 1971;33:401–406.

4. Marston T, Lusby K, Wettemann R. Влияние рациона после отъёма на возраст и массу тела при половом созревании и умеренную продуктивность тёлок.J Anim Sci 1995;73:63–68.

5. Gasser C, Behlke E, Grum D, Day M. Влияние сроков начала кормления высококонцентратным рационом на рост и наступление половой зрелости у рано отнятых тёлок. J Anim Sci 2006;84:3118–3122.

6. Gasser C, Bridges G, Mussard M, Grum D, Kinder J, Day M. Стимуляция раннего полового созревания у тёлок. III. Ускоренное ослабление отрицательной обратной связи, посредством которой эстрадиол регулирует секрецию лютеинизирующего гормона. J Anim Sci 2006;84:2050–2056.

7. Maciel M, Zieba D, Amstalden M, Keisler D, Neves J, Williams G. Длительное введение рекомбинантного овечьего лептина растущим тёлкам мясных пород: влияние на секрецию LH, уровень метаболических гормонов и сроки наступления половой зрелости. J Anim Sci 2004;82:2930–2936.

8. Casida L. Послеродовой период и его связь с плодовитостью коров, свиноматок и овцематок. J Anim Sci 1971;32(доп. 1):66–72.

9. McNeilly A. Сосание и регуляция секреции гонадотропинов. В кн.: Knobil E, Neill JD (ред.) Физиология размножения . Нью-Йорк: Raven Press, 1988, с. 2323–2349.

10. Short R, Bellows R, Staigmiller R, Berardinelli J, Custer E. Физиологические механизмы, определяющие анэструс и бесплодие у коров мясных пород после отёла. J Anim Sci 1990;68:799–816.

11. Williams G. Сосание как фактор, регулирующий возобновление репродуктивной функции у коров после отёла: обзор. J Anim Sci 1990;68:831–852.

12. Williams G, Griffith M. Сенсорная и поведенческая регуляция ановуляции, обусловленной сосанием, у коров. J Reprod Fert Suppl 1995;49:463–475.

13. Nett T. Функция гипоталамо-гипофизарной системы в послеродовой период у овцематок и коров. J Reprod Fert Suppl 1987;34:201–213.

14. Nett T, Flores J, Carnevali F, Kile J. Доказательства прямого отрицательного действия эстрадиола на уровне гипофиза у овец. Biol Reprod 1990;43:554–558.

15. Herring R, Hamernik D, Kile J, Sousa M, Nett T. Длительное введение эстрадиола оказывает трёхфазное действие на концентрации гонадотропинов и матричной рибонуклеиновой кислоты субъединиц гонадотропинов в сыворотке крови, но не на содержание гонадотропинов в гипофизе у овариэктомированных овцематок. Biol Reprod 1991;45:151–156.

16. Nett T, Cermak D, Braden T, Manns J, Niswender G. Рецепторы GnRH и эстрадиола в гипофизе и содержание гонадотропинов в гипофизе у коров мясных пород. II. Изменения в послеродовой период. Domest Anim Endocrinol 1988;5:81–89.

17. Di Gregorio G, Kile J, Herring R, Nett T. Более быстрое восстановление содержания фолликулостимулирующего гормона, чем лютеинизирующего гормона, в гипофизе овцематок после истощения их запасов под действием эстрадиола-17 бета. J Reprod Fertil 1991;93:347–354.

18. Moss G, Parfet J, Marvin C, Allrich R, Diekman M. Концентрации гонадотропинов и рецепторов GnRH в гипофизе у подсосных коров мясных пород в разные сроки после отёла. J Anim Sci 1985;60:285–293.

19. Humphrey W, Kaltenbach C, Dunn T, Koritnik D, Niswender G. Характеристика гормональных профилей у коров мясных пород в период послеродового анэструса. J Anim Sci 1983;56:445–453.

20. Williams G, Ray D. Гормональные и репродуктивные профили тёлок мясных пород в ранний послеродовой период после подавления секреции пролактина или индукции функции жёлтого тела стероидами. J Anim Sci 1980;50:906–918.

21. Garverick H, Smith M. Механизмы, связанные с пониженной функцией жёлтого тела. J Anim Sci 1986;62(доп. 2):92–105.

22. Silvia W, Lewis G, McCracken J, Thatcher W, Wilson L. Гормональная регуляция секреции маткой простагландина

23. F2-альфа во время лютеолиза у жвачных животных. Biol Reprod 1991;45:655–663.

24. Ramirez-Godinez J, Kiracofe J, McKee R, Schalles R, Kittock R. Снижение частоты коротких эстральных циклов у коров мясных пород с помощью норгестомета. Theriogenology 1981;15:613–623.

25. Pratt B, Berardinelli J, Stevens L, Inskeep E. Индуцированные жёлтые тела у коров мясных пород после отёла. I. Сравнение гонадотропин-рилизинг-гормона и хорионического гонадотропина человека и влияние прогестагена и эстрогена. J Anim Sci 1982; 54:822–829.

26. Sheffel C, Pratt B, Ferrell W, Inskeep E. Индуцированные жёлтые тела у коров мясных пород после отёла. II. Влияние применения прогестагена и гонадотропинов. J Anim Sci 1982;54:830–836.

27. Burd L, Lemons J, Makowski E, Meschia G, Niswender G. Кровоток в молочной железе и эндокринные изменения во время родов у овцематок. Endocrinology 1976;98:748–754.

28. Kesler D, Garverick H, Youngquist R, Elmore R, Bierschwal C. Влияние срока после отёла и эндогенных репродуктивных гормонов на высвобождение LH, вызванное GNRH, у молочных коров. J Anim Sci 1977;45:797–803.

29. Carruthers T, Convey E, Kesner J, Hafs H, Cheng K. Гипоталамо-гипофизарная гонадотропная система у молочных коров после отёла при наличии и отсутствии сосания. J Anim Sci 1980;51:949–957.

30. Peters A, Lamming G, Fisher M. Сравнение концентраций LH в плазме крови у доеных и подсосных коров после отёла. J Reprod Fertil 1981;62:567–573.

31. Zalesky D, Forrest D, McArthur N, Wilson J, Morris D, Harms P. Сосание подавляет высвобождение гонадотропин-рилизинг-гормона из срединного возвышения гипоталамуса у коров после овариэктомии. J Anim Sci 1990;68:444–448.

32. Randel R. Влияние однократного сосания в сутки на продолжительность послеродового периода и продуктивность пар «корова — телёнок» у первотёлок — помесей брамана и герефорда. J Anim Sci 1981;53:755–757.

33. Lamb G, Miller B, Lynch J и др. . Сосание телёнком два раза в день, но не доение в присутствии телёнка, продлевает послеродовую ановуляцию. J Anim Sci 1999;77:2207–2218.

34. Shively T, Williams G. Характер тонической секреции лютеинизирующего гормона и частота овуляции у подсосных коров мясных пород в состоянии анэструса после временного отъёма телят различной продолжительности. Domest Anim Endocrinol 1989;6:379–387.

35. Silveira P, Spoon R, Ryan D, Williams G. Материнское поведение как необходимое звено в развитии ановуляции, обусловленной сосанием телёнком, у коров. Biol Reprod 1993;49:1338–1346.

36. Wettemann R. Послеродовая эндокринная функция у крупного рогатого скота, овец и свиней. J Anim Sci 1980;51(прил. 2):2–15.

37. Tauck S, Berardinelli J, Geary T, Johnson N. Возобновление послеродовой функции жёлтого тела у первотёлок мясных пород на подсосе при постоянном воздействии мочи быка. J Anim Sci 2006; 84:2708–2713.

38. Berardinelli J, Tauck S. Интенсивность биостимулирующего воздействия быков на возобновление овуляторной активности у первотёлок мясных пород на подсосе. Anim Reprod Sci 2007;99:24–33.

39. Clapp H. Фактор, влияющий на эффективность воспроизводства молочного скота. J Anim Sci 1937;(1937):259–265.

40. Short R, Bellows R, Moody E, Howland B. Влияние сосания телёнком и мастэктомии на послеродовую репродуктивную функцию коров. J Anim Sci 1972;34:70–74.

41. Forrest D, Fleeger J, Long C, Sorensen A, Harms P. Влияние экзогенного пролактина на уровень лютеинизирующего гормона в периферической крови у коров после овариэктомии. Biol Reprod 1980;22:197–201.

42. Williams G, Kirsch J, Post G, Tilton J, Slanger W. Данные против того, что длительная стимуляция сосков сама по себе вызывает снижение секреции гонадотропинов у коров мясных пород. J Anim Sci 1984;59:1060–1069.

43. Li P, Wagner W. Исследования in vivo и in vitro влияния адренокортикотропного гормона или кортизола на реакцию гипофиза на гонадотропин-рилизинг-гормон. Biol Reprod 1983;29:25–37.